甘薯蛋白抗癌作用研究进展.ppt
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1、甘薯蛋白抗癌作用研究进展,汇报内容,立题依据,我国甘薯(Ipomoea batatas)产量世界第一(约1亿吨/年),其中约50%用于生产淀粉、粉丝等初级产品,附加值低,加工过程中产生大量废液、废渣。废液中含1%左右可溶性蛋白,直接排放不仅 浪费资源,而且污染水质,亟待解决。甘薯块根中特有的贮藏蛋白Sporamin占其蛋白 总量的60-80%,本实验室前期研究表明,Sporamin能显著抑制人结肠癌HCT-8细胞在裸鼠腹腔内的弥散性生长,并抑制皮下接种的Lewis肺癌细胞在C57黑鼠体内自发性的肺转移。因此,本课题继续对sporamin的抗癌作用及其细胞内分子作用机制进行了探索。,研究内容,细
2、胞实验:观察甘薯蛋白对3种癌细胞(人结肠癌HT-29细胞、HepG2肝癌细胞、Bcap-37乳腺癌细胞)增殖及转移扩散能力的抑制作用,并探索其相应的细胞内信号转导机制。临床试验:观察甘薯蛋白(SPP)与5-氟尿嘧啶(5-FU)联用治疗人结肠癌的安全性及有效性。,本研究意义在于:探索甘薯蛋白在防治恶性肿瘤方面的作用和应用价值,为开发新型抗癌药物奠定基础。提高甘薯加工的利用率和产品附加值。有助于解决我国甘薯淀粉加工业废水污染环境的问题。,研究意义,技术路线,目的:观察甘薯蛋白对3种恶性肿瘤细胞增殖及侵袭转移能力的抑制作用,探索其细胞内分子作用机制。实验内容:MTT结晶紫染色荧光染色划痕愈合实验,抗
3、粘附实验明胶酶谱试验uPA分泌量测定(ELISA)免疫印迹RT-PCR,细胞培养:从中国科学院细胞库购买各种肿瘤细胞株,按照推荐的方法采用合适的培养基和培养条件在二氧化碳培养箱(37 C,5%CO2)中培养。条件培养液(CM)的制备:肿瘤细胞株在培养板中长满后,换成1%小牛血清的培养液并移入可调节氧气浓度的CO2培养箱中继续培养24 时,24小时后取出培养板,吸出上清液冻干后备用。MTT法细胞生长分析:将肿瘤细胞接种于96孔板(10,000 cells/well),加含10%胎牛血清的完全培养基培养24 h,然后将培养基换成含有或不含有各种处理试剂的RPMI 1640培养基。分别在换液后的1、
4、3、5天测定细胞增殖情况,采用MTT法,加入20 g vital染料MTT(1 mg/ml)后继续培养4 h,被细胞吸收的蓝色染料用DMSO(100 l/well)溶解,测定其在490nm处的吸光度。正式实验前先做预实验检查吸光度和细胞数量之间是否成正比。,试验方法,划痕愈合实验:将细胞按1-5 x 105个/孔的密度接种于12 孔培养板;形成单层细胞后,用20-200 微量pipette管尖端刮一个宽1 mm的划痕;用新鲜培养基洗两次,然后换成含不同浓度甘薯蛋白的培养基,37 孵育20 h后用PBS冲洗,4 多聚甲醛固定,在刮伤0 h和20 h后分别照相(放大100 倍),用ImageJ图像
5、软件计算刮口的平均距离。细胞愈合划痕的能力用它们的运动距离表示,计算方式如下:(0 h时划痕的平均距离-20 小时后划痕的平均距离/0 h时划痕的平均距离)100。抗粘附试验:将细胞接种到24孔板或6孔板,形成单层细胞后脱血清过夜培养,换含不同浓度甘薯蛋白和PMA的培养基处理24 h,然后用PBS冲洗2遍,加入200 或500 L 0.25%trypsin/0.1 mM EDTA,室温,100 RPM振荡消化细胞,记录细胞完全脱落需要的时间.酶谱法测定MMPs和uPA的活性:分别用明胶酶谱和纤溶酶原-酪蛋白酶谱法测定条件培养基中分泌的MMPs和uPA的活性,用含或不含100ng/ml PMA及
6、不同浓度甘薯蛋白的培养基处理细胞4 h,收集培养基,过滤除去悬浮细胞,用浓缩离心管浓缩25-50倍,各组取等量培养基与不含SDS和-mercaptoethanol的样品缓冲液混合后上样,用含2 mg/ml 明胶的10%的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳。电泳结束后将凝胶置于复性缓冲液液(2.5%Triton-X100)中震荡洗脱30 min4次;明胶孵育液(50 mmol/L Tris-HCl、10 mmol/L CaCl2、200 mmol/L NaCl、1 mol/L ZnCl2)37 孵育24 h,考马斯亮蓝染液染色2 h,脱色3040 min。分析凝胶图像,应用ImageJ软件读取条带面积和酶解
7、条带灰度,酶含量=条带面积(条带灰度背景灰度),以样本酶含量/对照样品酶含量比值表示样本的酶活性值。uPA酶谱做法与MMPs相似,只不过用1 mg/ml酪蛋白(MP Biomedicals,Inc.,Irvine,CA)和1 U/ml纤溶酶原(MP Biomedicals,Inc.)代替了明胶。,试验方法,条件培养基中uPA分泌量的测定:采用ELISA法,根据试剂盒(Cusabio Biotech,China)说明书进行测量。免疫印迹(Western Blotting):用Western blot法确认各种细胞因子和信号转导分子的表达和激活情况。将处理后的细胞用裂解液(150 mM NaCl,
8、1 mM EDTA,40 mM Tris-HCl,pH 7.6,1%NP-40,0.1 mM PMSF,10 g/ml leupeptin,1 g/ml pepstatin,10 g/ml aprotinin)裂解,BCA法测蛋白含量,样品经SDS-PAGE电泳分离,转移到PVDF膜上。用含2%t脱脂奶粉的TBS缓冲液(pH 7.6)浸泡,4过夜封闭非特异性的连接位点。然后加入各种一抗振荡孵育2 h,然后在相应的二抗中反应 1 h,清洗干净后将反应后的条带成像。,试验方法,逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)技术半定量分析mRNA表达水平:使用trizol提取细胞中总RNA,A260/280测吸
9、光度测量浓度并评估RNA样品的纯度和完整性,将2微克总RNA反转录成cDNA,然后扩增cDNA,0.5-2.0%琼脂糖凝胶电泳分离细胞DNA,紫外透射仪上观察拍照。引物序列如下:huMan uPA:5 primer(5-GGGGGCTCTGTCAC-CTACG-3)and 3 primer(5-GGCCCCAGCTCACAATTCCAGTC-3);VEGF 5 primer(5-GGAGGA GGGCAGAATCATCACGAA-3)and 3primer(5-GCCTTGCAACGCGAGTCTGT-3);glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase(GA
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