生物材料的预处理和细胞破碎及固液分离.ppt
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1、第二章生物材料的预处理和细胞破碎及固液分离,概 述,微生物或动植物细胞在合适的培养基,值,温度和通气搅拌(或厌气)等发酵条件下进行生长和合成生物活性物质,因为在其培养(发酵)液中包含了菌(细胞)体,胞内外代谢产物,胞内的细胞物质及剩余的培养基残分等。不管人们所需要的产物是胞内的还是胞外的或是菌体本身,都首先要进行培养液的预处理和菌体回收,只有将固,液分离开,才能从澄清的滤液中采用物理、化学的方法提取代谢产物,或从细胞出发进行破碎、碎片分离和提取胞内产物。,发酵(培养)结束后,首先将菌体或细胞、固态培养基等固态悬浮颗粒与可溶性组分分离,即固液分离。如固态悬浮颗粒较粗大,可直接进行。如固态悬浮颗粒
2、较细小,应先进行预处理。如产物在胞内,还应先进行细胞破碎。,第一节确定预处理方法的基本条件,一、了解生物活性物质存在的部位胞外:细胞产生后,分泌到培养液中胞内:游离在胞浆中、结合在质膜上等,二、稳定性分离提取时,生物活性物质处于不断变化之中,可被细胞本身的酶所破坏,或为微生物所分解,还可能在制备时受到pH值、酸、碱、温度、金属离子、盐、机械搅拌等的作用。如青霉素稳定性较差,发酵液酸化pH需控制在4.85.2,并且低温。多粘菌素E稳定性较好,可在pH2.0、95处理,可提高过滤速度。,三、提取工艺对滤液质量的要求不同工艺路线对滤液要求不同离子交换法:无机离子、灰分要求低溶剂萃取法:要求蛋白质含量
3、较低,减轻乳化直接沉淀法:对滤液质量要求高,需反复过滤,结晶前还要脱色处理。如四环类抗生素。,第二节生物材料的预处理,预处理的目的(1)改变发酵液的物理性质,以利于固液分离。主要方法:加热、凝聚和絮凝。(2)去除发酵液中部分杂质(可溶性胶状物质和无机盐等),以利于后续各步操作。可溶性胶状物质:杂蛋白、核酸、不溶性多糖等,可使溶液黏度增加,影响固液分离速度及后续操作(如堵塞层析柱头)。,一、菌丝体和蛋白质的处理,(一)等电点沉淀等电点时蛋白质溶解度最小(调pH)(二)变性沉淀变性蛋白质的溶解度较小,而产生沉淀加热:使蛋白质变性、凝聚,同时降低液体黏度,加快过滤速度链霉素生产中,采用调pH至酸性(
4、pH3.0),加热至70,维持半个小时的方法来去除蛋白质,能使过滤速度增大10-100倍,滤液粘度可降低1/6。柠檬酸发酵液,采用加热至80以上,使蛋白质变性凝固和降低发酵液粘度,从而大大提高了过滤速度。,(三)加各种沉淀剂沉淀某些化学试剂能与蛋白质结合形成复合物沉淀,如三氯乙酸、水杨酸、苦味酸等,(四)加入凝聚剂(小分子)可使细胞、细胞碎片及蛋白质等胶体颗粒去除。凝聚:在某些电解质作用下,使胶体粒子的扩散双电层的排斥电位降低,破坏了胶体系统的分散状态,而使胶体粒子聚集的过程。胶体稳定的因素:电荷、水化层电解质能中和电荷、破坏水化层与蛋白质盐析的机理相同。,发酵液的带电现象,发酵液中的细胞、菌
5、体或蛋白质等胶体粒子的表面,一般都带有电荷,带电的原因很多,主要是吸附溶液中的离子或自身基团的电离。通常发酵液中细胞或菌体带有负电荷,由于静电引力的作用使溶液中带相反电荷的粒于(即正离子)被吸附在其周围,在界面上形成了双电层。但是这些正离子还受到使它们均匀分布开去的热运动的影响,具有离开胶粒表面的趋势,在这两种相反作用的影响下,双电层就分裂成两部分,在相距胶核表面约一个离子半径的stern平面以内,正离子被紧密束缚在胶核表面,称为吸附层或stern层;在stern平面以外,剩余的正离子则在溶液中扩散开去,距离越远,浓度越小,最后达到主体溶液的平均浓度,称为扩散层。这样就形成了扩散双电层的结构模
6、型。,(五)加入絮凝剂(高分子)絮凝剂:天然或人工合成的有机高分子化合物,具长链线状结构,易溶于水,有大量的活性基团。吸附胶粒,产生架桥连接,形成粗大的絮凝团,有助于过滤。可与凝聚剂配合使用,提高絮凝效果。影响因素:(1)分子量:链越长,吸附架桥效果越好,但自身在水中溶解度也降低。(2)用量:增加用量,有助于架桥,但过多会引起吸附饱和,降低絮凝效果。(3)PH值:影响电离度,从而影响链的伸展形态。(4)搅拌速度和时间:适当搅拌,可使絮凝剂迅速分散,但过快会打碎絮凝团。,常用的絮凝剂,聚丙烯酰胺(po1yacry1amide)类和聚乙烯亚胺(polyethyleneimine)衍生物,根据活性基
7、团在水中解离情况不同,可分为非离子型、阴离子型(含有羧基)和阳离子型(含有胺基)三类。由于聚丙烯酰胺类絮凝剂具有用量少,一般以ppm计量,絮凝体粗大,分离效果好,絮凝速度快以及种类多等优点,所以适用范围广。聚丙烯酸类阴离子絮凝剂和聚苯乙烯类衍生物。无机高分子聚合物也是较好的一类絮凝剂,如聚合铝盐和聚合铁盐等。天然有机高分子絮凝剂,如壳聚糖和葡聚糖等聚糖类,还有明胶、骨胶、海藻酸钠等。微生物絮凝剂是近年来研究和开发的新型絮凝剂,它是一类由微生物产生的具有絮凝细胞功能的物质。主要成分是糖蛋白、粘多糖、纤维素及核酸等高分子物质。微生物絮凝剂和天然絮凝剂与化学合成的絮凝剂相比,最大的优点是安全,无毒和
8、不污染环境。,凝聚和絮凝:均是破坏发酵液中胶体的稳定性,增大颗粒尺寸,增大颗粒的沉降或浮选速率。(六)吸附加入反应剂,相互反应生成沉淀,能吸附蛋白质和菌体等胶粒,同时起助滤剂作用。如四环素发酵液中加入黄血盐和硫酸锌,生成亚铁氰化锌钾K2Zn3Fe(CN)52的胶状沉淀,能将杂蛋白和菌体黏附而除去。在枯草杆菌发酵液中,常加入氯化钙和磷酸氢二钠,这两者本身生成庞大的凝胶,把蛋白质、菌体及其它不溶性粒子吸附并包裹在其中而除去,从而加快了过滤速度。,(七)酶解法去除不溶性多糖 不溶性多糖会增大溶液黏度,使固液分离困难,可加入淀粉酶进行水解,将发酵液中多余淀粉水解。,二、高价金属离子的去除,对提取和成品
9、质量影响较大。(一)离子交换法通过阳离子树脂如四环素发酵液通过122型树脂,除去Fe3+,同时也吸附色素,提高滤液质量。(二)沉淀法形成不溶性沉淀去除Ca2+,常用草酸钠或草酸,形成草酸钙沉淀去除Mg2+,可用草酸、磷酸盐、三聚磷酸钠等去除Fe3+,加入黄血盐,形成普鲁士蓝沉淀,问题,1、改变发酵液过滤特性的主要方法有哪些?其简要机理如何?2、除去发酵液中杂蛋白的常用方法有哪些?3、如何去除发酵液中的多糖、金属离子?4、凝聚和絮凝有哪些不同之处?,第三节 细胞破碎,一些微生物在代谢过程中将产物分泌到细胞之外的液相中(称胞外酶),这些产品主要为医药和保健产品,如胰岛素、某些细胞因子和疫苗亚单位成
10、分等。这些蛋白质在细胞培养时被宿主细胞分泌到培养液中,提取过程只需直接采用过滤和离心进行固液分离,然后将获得的澄清滤液再进一步纯化即可。其后续分离和纯化都相对简单。,细胞破碎,胞内产物:青毒素酰化酶、碱性磷脂酶等但由于一些重组DNA(rDNA)产品结构复杂,必须在细胞内组装来获得生物活性,如果在培养时被宿主细胞分泌到培养液中,其生物活性往往有所改变,此类rDNA产品是细胞内产品(非分泌型),需要应用细胞破碎技术破碎细胞,使细胞内产物释放到液相中,然后再进行提纯,为后续的分离纯化做好准备工作。,几种由大肠杆菌表达的胞内重组药物,细胞破碎(cell rupture)技术是指利用外力破坏细胞膜和细胞
11、壁,使细胞内容物包括目的产物成分释放出来的技术。胞内的生物活性物质的稳定性差,条件不适极易失活。特别是微生物细胞十分微小,细胞壁结构比较紧密,一般方法不易将细胞打破,有些技术虽然可以,但条件严苛,胞内生物活性物质在此条件下很易失活,限制了一些技术的应用。在一定程度上细胞破碎仍是生物技术产业化关键技术。,细胞破碎,细胞破碎,通常细胞壁较坚韧,细胞膜脆弱,易受渗透压冲击而破碎,因此细胞破碎的阻力主要来自于细胞壁。基于遗传和环境等因素,不同类型生化物质其细胞壁的结构和组成不完全相同,故细胞壁的机械强度不同,细胞破碎的难易程度也就不同。此外,不同的生化物质其稳定性有较大差别,在破碎过程中应防止变性和被
12、胞内的酶水解,因此,破碎方法的选择和操作条件的优化是十分必要的。,细胞壁的成分,细菌细胞壁主要成分是肽聚糖革兰氏阳性菌的细胞壁主要由肽聚糖层组成(2080nm),较难破碎。革兰氏阴性菌的细胞壁的肽聚糖层较薄(23nm),还有两层外壁层。,肽聚糖(peptidoglycan),肽聚糖是难溶性的聚糖链(glycan chain),借助短肽交联而成的网状结构,包围在细胞周围,使细胞具有一定的形状和强度。短肽一般由四或五个氨基酸组成,如L-丙氨酰-D-谷氨酰-L-赖氨酰-D-丙氨酸。而且短肽中常有D-氨基酸与二氨基庚二酸存在。,破碎细菌的主要阻力是来自于肽聚糖的网状结构,其网结构的致密程度和强度取决于
13、聚糖链上所存在的肽键的数量和其交联的程度,如果交联程度大,则网结构就致密。,细胞壁的成分,霉菌细胞壁较厚,100205nm,多数由几丁质和葡聚糖构成。酵母细胞壁主要成分是葡聚糖,还含有甘露糖、蛋白质和几丁质。幼时较薄,以后逐渐变硬。较革兰氏阳性菌的细胞壁更厚,更难破碎。藻类的细胞壁非常复杂,主要结构是纤维状的多糖物质。其强度取决于聚合物网状结构的交联程度。,细胞破碎方法,液体裁切:超声波、搅拌、压力机械法固体裁切:研磨、压力细胞破碎 干燥:空气、真空、冷冻、喷雾非机械法溶胞:物理法、化学法、酶法,高压匀浆器,操作原理,它由可产生高压的正向排代泵(positive displacenemt pu
14、mp)和排出阀(discharge valve)组成,排出阀具有狭窄的小孔,其大小可以调节。细胞浆液通过止逆阀进入泵体内,在高压下迫使其在排出阀的小孔中高速冲出,并射向撞击环上,由于突然减压和高速冲击,使细胞受到高的液相剪切力而破碎。在操作方式上,可以采用单次通过匀浆器或多次循环通过等方式,也可连续操作。为了控制温度的升高,可在进口处用干冰调节温度,使出口温度调节在20左右。在工业规模的细胞破碎中,对于酵母等难破碎的及浓度高或处于生长静止期的细胞,常采用多次循环的操作方法。,高压匀浆法,影响细胞破碎的主要因素:压力、循环次数、温度。操作压力:5070MPa,一般为55MPa一次破碎率:12%6
15、7%,达到90%要多次提高操作压力,有利于破碎,减少循环次数温度由5提高到30,酵母破碎率提高1.5倍适用于酵母和大多数细菌的破碎。不适用于高度分枝的微生物,因为会堵塞阀。,高压匀浆法,细胞种类、生长环境、生长速率和产物位置对操作条件的影响大肠杆菌较酵母易破碎生长在复杂培养基的大肠杆菌比生长在合成培养基中的大肠杆菌难破碎非结合酶处理一次即可(压力54.5MPa,菌体浓度10%20%),膜结合酶则需3次破碎。大肠杆菌的破碎效果随生长速率的减少而降低。,高压匀浆器的操作温度上升约/10MPa为了保护目标产物的生物活性,需要对料液作冷却处理。多组破碎操作中需要在级间设置冷却装置可有效防止温度上升,保
16、护产物活性。,高压匀浆法使用时注意事项,高速珠磨法,利用细胞与玻璃小珠在搅拌桨作用下充分混合,珠子之间以及珠子和细胞之间的互相剪切、碰撞,促使细胞壁破裂。,高速珠磨机工作原理,水平位置的磨室内放置玻离小珠,装在同心轴上的园盘搅拌器高速旋转,使细胞悬浮液和玻离小珠相互搅动,细胞的破碎是由剪切力层之间的碰撞和磨料的滚动而引起。在料液出口处,旋转园盘和出口平板之间的狭缝很小,可阻挡玻离小珠,使不被料液带出。由于操作过程中会产生热量,易造成某些生化物质破坏,故磨室还装有冷却夹套,以冷却细胞悬浮液和玻离小珠。,高速珠磨法,影响因素有:搅拌速度、料液循环速度、细胞浓度、珠粒大小和数量、温度等。提高搅拌速度
17、、降低细胞浓度、增加小珠装量。过大搅拌速度和过多的小珠会增大能耗,产热增加磨珠越小、破碎速度越快,但磨珠太小易于漂浮。对真菌菌丝和藻类的细胞破碎效果较好。,超声波法(Ultrasonication),超声波破碎法利用超声波振荡器发射的15-25kHz的超声波探头处理细胞悬浮液。超声波振荡器有不同的类型,常用的为电声型,它是由发生器和换能器组成,发生器能产生高频电流,换能器的作用是把电磁振荡转换成机械振动。超声波振荡器以可分为槽式和探头直接插入介质两种型式,一般破碎效果后者比前者好。,超声波法(Ultrasonication),超声波在流体中传播时,出现细小的空穴,又迅速闭合,产生强烈的冲击波压
18、力,在悬浮细胞上造成剪切力,使细胞破碎。超声波破碎是很强烈的破碎方法,适用于多数微生物的破碎。超声波破碎的有效能量利用率极低,操作过程产生大量的热,因此操作需在冰水或外部冷却的容器中进行。由于对冷却的要求相当苛刻,所以不易放大,主要用于实验室规模的细胞破碎。,化学法,化学试剂溶解细胞或抽提某些细胞组分。碱处理:溶解除细胞壁外的大部分组分。脂溶性有机溶剂:溶解细胞膜上脂类化合物。如丁醇、丙酮、氯仿等。表面活性剂(两性化合物):细胞溶解或使某些组分从细胞中渗透出来。如SDS等。,化学法对产物的释出选择性好,细胞外形较完整,碎片少,核酸等胞内杂质释放少,便于后步分离等优点,故使用较多。但该法容易引起
19、活性物质失活破坏,因此,根据生化物质的稳定性来选择合适的化学试剂和操作条件是非常重要的。另外,化学试剂的加入,常会给随后产物的纯化带来困难,并影响最终产物纯度。如表面活性剂存在常会影响盐析中蛋白质的沉淀和疏水层析,因此必须注意除去。,化学法,酶解法,酶促反应破坏细胞壁上的特殊化学键,以达到破壁的目的。加入酶或自溶。优点:(1)产品释放的选择性高(2)抽提的速率和收率高(3)产品的破坏最少(4)反应条件温和(5)不残留细胞碎片,细胞外形较完整缺点:成本高,可用固定化酶反应使用。,酶解法,选择适宜的酶和酶系统,控制特定的反应条件,特定的生长阶段。微生物细胞,常用溶菌酶。专一分解细胞壁上的1,4糖苷
20、键。自溶:利用生物体自身产生的酶来溶胞,而不需外加其他的酶。在微生物代谢过程中,大多数都能产生一种能水解细胞壁上聚合物的酶,以便生长过程继续下去。可是,改变其生长环境,可以诱发产生过剩的这种酶或激发产生其它的自溶酶,以达到自溶目的。可采用加热法或干燥法。采用抑制细胞壁合成的方法。(如生物素的营养缺陷型),物理法(渗透压冲击法),先把细胞放在高渗溶解中,使水分外渗,再转入水或缓冲液中,使水分迅速渗入,细胞快速膨胀而破裂。蛋白质释放量仅为菌体蛋白总量的4%7%。是较温和的一种破碎方法,此法对革兰氏阳性菌不适用。,物理法(冻结融化法),将细胞放在低温下冷冻(-15),在室温中融化,反复多次,使细胞壁
21、破裂。一方面,冷冻过程会促使细胞膜的疏水键结构破裂。另一方面,冷冻时胞内水结晶,形成冰晶粒,引起细胞膨胀而破裂。蛋白质释放率仅10%左右。,干燥法,菌体干燥后,细胞膜的渗透性发生变化,部分菌体自溶,再用丙酮、丁醇或缓冲液等抽提。空气干燥:2530热空气吹干。常用于酵母菌。真空干燥:常用于细菌。冷冻干燥:不稳定的活性物质。,细胞破碎率的评价,细胞破碎率:被破碎细胞占原始细胞数量的百分数。(N0N)Y(%)100%N0Y:破碎率N0:原始细胞数量N:经t时间操作后保留下来的未损害完整细胞数量。,直接计数法,直接对稀释后的样品计数。采用平板计数或血球计数板,通过显微镜观察染色细胞的数量。平板计数所需
22、时间长,只有活细胞才能计数。死亡的完整细胞虽量大但未能计数。显微镜计数:快速而简单,但难区分未损害细胞和稍有损害细胞。可用涂片法染色。革兰氏试剂染色后,完整细胞呈红色或无色,细胞碎片呈绿色。,间接计数法,细胞破碎后,测定悬浮液中细胞释放出来的化合物的量(如可溶性蛋白、酶等)。将破碎后的细胞悬浮液离心分离,去掉固体(完整细胞和碎片),对清液进行含量或活性分析。最常用是蛋白质含量,或某种酶的活性等。,常用细胞破碎方法比较表,细胞破碎方法比较,机械法:大规模处理,产热大化学法:所用溶剂不得对活性物质产生损害酶法:条件温和,成本高渗透压冲击和冻融法:破碎作用较弱干燥法:较剧烈,易变性失活,选择破碎方法
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