核酸分离检测.ppt
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1、第五章核酸的分离与检测,一、核酸的分离、提取通则,核酸在细胞中通常与各种蛋白质结合在一起。分离原则:保证核酸分子一级结构的完整性;排除其他分子污染。分离与纯化的方法一般包括细胞裂解、酶处理、核酸与其他生物大分子物质分离、核酸纯化等几个主要步骤。,1.细胞裂解,机械作用:低渗、超声、微波、冻融裂解和颗粒破碎等。不适于高分子量长链核酸的分离。化学作用:一定p H 和变性条件下,细胞破裂,蛋白变性沉淀,核酸水相。变性条件:加热、表面活性剂(SDS、Triton X-100、Tween 20、NP-40 等)、强离子剂(异硫氰酸胍、盐酸胍等)。p H 环境:强碱(NaOH)或缓冲液(TE、STE 等)
2、。金属离子螯合剂(EDTA 等)螯合Mg2+、Ca2+,抑制核酸酶活性。酶作用:溶菌酶或蛋白酶(蛋白酶K、植物蛋白酶或链酶蛋白酶)破裂细胞。降解与核酸结合的蛋白质,促进核酸的分离。联合使用:细胞、待分离核酸类型及后续实验目。,2.酶处理,裂解液中加入蛋白酶(蛋白酶K 或链酶蛋白酶),降解蛋白质;灭活核酸酶(DNase 和RNase)加入DNase 和RNase 去除不需要的核酸。,防止核酸的降解和变性,防止过酸、过碱对磷酸二酯键的破坏(一般在 pH 4-10下进行);避免剧烈搅拌;防止核酸酶(DNase,RNase)的作用。,抑制DNase:可加柠檬酸钠、EDTA等金属螯合剂;或加去污剂十二烷
3、基硫酸钠(SDS);或加蛋白变性剂。抑制RNase:实验器皿高温,或高压灭菌,不能高压灭菌的用 具用0.1%二乙基焦碳酸盐(diethyl pyrocarbonate,DEPC)处理。加强的蛋白变性剂如硫氰酸胍、异硫氰酸胍等。加核糖核酸酶阻抑蛋白(RNasin)等RNase的抑 制剂。,质粒DNA的提取碱裂解法,溶液I:50 mM葡萄糖,25,10 mM EDTA,pH 8.0 Tris-Cl pH;葡萄糖大肠杆菌悬浮;EDTA 金属离子螯合剂。溶液II:0.2 N NaOH,1%SDSNaOH 碱裂解细胞,控制时间,温柔混合;SDS 结合蛋白。溶液III:3 M 醋酸钾,2 M 醋酸醋酸钾
4、PDS沉淀;醋酸 中和碱。,3.核酸的分离与纯化,高电荷磷酸骨架比蛋白质、多糖、脂肪等其他生物大分子物质更具亲水性。根据理化性质差异,选择性沉淀、层析、密度梯度离心等方法。,酚提取/沉淀法,经典方法是酚:氯仿抽提法。裂解细胞;离心分离含核酸水相;等体积酚:氯仿:异戊醇(25:24:1 体积)混合液抽提,漩涡振荡混匀(小分子量核酸)/颠倒混匀(高分子量核酸),离心分离;疏水性的蛋白质有机相,核酸上层水相。缓冲液饱和酚蛋白变性;氯仿增加有机相比重,防止酚流入水相;异戊醇可减少操作过程中产生的气泡,下层的界面更清晰。,核酸盐经有机溶剂沉淀浓缩,酚、氯仿抽提后用乙醇沉淀 水相加p H5.05.5,终浓
5、度0.3M NaAc 或KAc(钠离子中和核酸磷酸骨架负电荷,在酸性环境中促进核酸疏水复性),加22.5 倍体积乙醇,沉淀核酸。离心收集,70%乙醇漂洗核酸沉淀除盐分。其他可用于沉淀核酸的有机溶剂:异丙醇、聚乙二醇(PEG)等;盐类:10.0mol/L 醋酸铵、8.0mol/L 的氯化锂、氯化镁和低浓度的氯化锌等。,分离沉淀DNA,层析法,利用物质些理化性质差异建立的分离分析方法。包括吸附层析、亲和层析、离子交换层析等。商品试剂盒,分离和纯化同步进行。一定离子环境下,核酸被选择性地吸附到硅土、硅胶或磁珠等表面与其他生物分子分离。结合至固相载体的核酸可用低盐缓冲液或水洗脱。核酸质量好、产量高、成
6、本低、快速、简便、节省人力以及易于实现自动化。,Promega 质粒纯化系统,以磁性颗粒为基础:采用磁性技术高通量纯化直接用于转染及其它生物学实验的质粒。以膜为基础:采用硅化膜纯化柱,可用离心法进行纯化。以树脂为基础:利用树脂,真空法。DNA在高盐条件下对硅树脂、膜的高亲和力。,全自动核酸分离纯化系统,Roche MagNA Pure 96,MagNA Pure LC 2.0,二、核酸含量的测定,核酸是由磷酸、戊糖、碱基所组成的核苷酸的多聚高分子。三者以等分子数而存在,所以只要测定三者中任何一处成分的含量,就可推算出核酸的含量。常用的核酸测定方法有:紫外吸收法、定磷法、定糖法RNA的定量测定:
7、地衣酚法DNA的定量测定:二苯胺法,紫外吸收法中DNA或RNA的定量,A260=1.0相当于:50g/ml双链DNA40g/ml单链DNA(或RNA)20g/ml寡核苷酸,分光光度计,Biophotometer,Nanophotometer,Single and multi wavelength measurement bined with kinetic methods.The full wavelength scan(190 nm-1100 nm)allows curve interpretation for attainment of more detailed scientific k
8、nowledge over whole spectrum.sample size as low as 0.5uL.,Thermo Scientific NanoDrop 2000c(March 2,2009),Thermo Scientific NanoDrop 2000 and 2000c Spectrophotometers.These easy-to-use,UV-Vis instruments enable a 5-second measurement time of DNA,RNA and proteins on a sample size as low as 0.5uL.,核酸纯度
9、鉴定,A260/A280DNA纯品:A260/A280=1.8RNA纯品:A260/A280=2.0电泳,核酸的凝胶电泳,当前核酸研究中最常用的方法,常用于检测核酸的分子量、纯度、结构变化、序列分析等 种类:琼脂糖凝胶电泳(水平电泳)聚丙烯酰胺凝胶电泳(垂直电泳,分辨率可达1bp常用于测序),核酸样品的保存,DNA:DNA样品溶于pH8.0的TE,4 或-20 保存;长期保存样品中可加入1滴氯仿。RNA:RNA样品溶于0.3 mol/L NaAc(pH5.2)或双蒸灭菌水中,-70 保存;长期保存可以沉淀形式贮于乙醇中;在RNA溶液中,加1滴0.2 mol/L VRC(氧钒核糖核苷复合物)冻贮
10、于-70,可保存数年。,三、核酸的检测,PCR:常规PCR、RT-PCR、荧光定量PCR杂交:膜杂交(Southern Blot、Northen Blot)、组织样品原位杂交,1.荧光定量PCR(real time PCR),1996,美国Applied biosystems公司推出:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程。克服了终点PCR法进入平台期或叫饱和期后定量的较大误差,实现DNA/RNA的精确定量。目前确定样品中DNA(或cDNA)拷贝数最敏感、最准确的方法。灵敏度和特异性高、能实现多重反应、自动化程度高、无污染、实时和准确。,与常规PCR的区别,常规
11、PCR:PCR结束后对终点产物进行定量分析。实时定量PCR:实时检测PCR扩增,在扩增的指数期对起始模板进行定量。,两个重要概念,荧光域值(threshold):是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在荧光信号指数扩增阶段任意位置上,一般荧光域值的设置是基线荧光信号的标准偏差的 10 倍。Ct值(Cycles threshold):每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数.Ct值与模板DNA的起始拷贝数成反比。,荧光定量PCR化学原理,非特异性荧光标记:SYBR Green 特异性荧光标记:TaqMan,SYBRGreenI荧光染料的作用原理,SYBR Green I:结合
12、于双链 DNA小沟。PCR 反应体系中,SYBR 荧光染料特异性地掺入 DNA 双链后,发射荧光信号,而不掺入链中的 SYBR 染料分子不会发射任何荧光信号。优点:与所有双链 DNA 结合,不必因为模板不同而特别定制通用性;价格相对较低;一个 PCR 产物可以与多分子的染料结合,灵敏度很高。缺点:能与非特异性双链DNA(如引物二聚体)结合。需要熔解曲线分析。,SYBR Green 熔解曲线分析,TaqMan探针法,TaqMan 探针是一种寡核苷酸探针,设计为与目标序列上游和下游引物间的序列配对。荧光基团连接在探针的 5 末端,而淬灭剂则在 3 末端。当探针保持完整时,3端猝灭基团抑制5发射基团
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