《动物实验技术》课件.ppt

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1、动物实验技术,陈丽安徽省实验动物中心安徽医科大学实验动物中心,Company Logo,第一节实验动物的抓取与固定第二节实验动物性别鉴定和标记第三节实验动物血液采集第四节实验动物麻醉方法第五节实验动物给药方法第六节 急救措施第七节 实验动物的处死方法第八节 动物尸体解剖与送检方法,Company Logo,实验动物的购入,1.确定所需实验动物品系规格（性别、周龄、体重），2.从具有相应的试验动物生产许可证的实验动物单位订购，3.购入时索要单位提供实验动物相应的质量合格证，4.选用适当的容器运输实验动物，清洁级以上选用有过滤介质窗的包装箱，密封运输，5.没有空调的运输车需避开寒冷和炎热的季节，选

2、择室内外温差较小的季节运输动物，并尽力缩短运输时间；6.普通级动物选用马铃薯、新鲜蔬果代替直接用水，清洁级以上动物用2%-3%生物琼脂胨代水；7.购入后进入检疫室检疫：验收品系规格，剔除异常动物，一般观察毛色、体重及动物状态；8.不同实验动物选择不同灵敏度的称：小鼠（0.1g）、大鼠和豚鼠（1.0g）、猫和兔（10g）等。,Company Logo,动物实验室的准备,依据实验目的、实验规模、动物实验周期等确定实验室，并提前消毒；饲养动物的器材准备：饲养笼具、饮水瓶、饲料、垫料等；标签、实验记录本、台秤等必需品的准备；实验所需药品、试剂的准备实验数据的来源、记录,动物实验统计表（数据、标本等）,

3、化验报告,日常工作记录,实验数据,及时、直接、准确、清楚、不易消除,实验专用记录本 软盘和光盘等,实验数据储存,Company Logo,第一节实验动物的抓取与固定,一、小鼠的抓取与固定,Company Logo,二、大鼠的抓取与固定,Company Logo,三、豚鼠的抓取与固定,Company Logo,四、兔的抓取与固定,Company Logo,Company Logo,Company Logo,五、犬的抓取与固定,Company Logo,六、猫的抓取与固定,七、其它动物抓取方法,Company Logo,Company Logo,第二节实验动物性别鉴定和标记,一、性别鉴定 1、啮齿

4、目,阴栓,Company Logo,2、兔形目,Company Logo,二、编号和标记1、染色法：浅色动物 3.5-5苦味酸溶液（黄色）0.5%中性红或碱性品红溶液（红色）龙胆紫溶液（紫色）,Company Logo,2、耳号钳标记法(小型动物),Company Logo,3、断趾编号,4、剪尾法：大、小鼠，仅限与两组间区分5、烙印法：刺号钳，中、大型动物6、针刺法：中、大型动物7、号牌法：耳标签、项圈、腿圈，中、大型动物8、剪毛法：大动物9、笼子标号,三、实验动物被毛的去除方法剪毛法：动物急性实验拔毛法：家兔耳缘静脉注射或取血剃毛法：大动物做慢性手术脱毛法：8g硫化钠溶于100ml水配制8

5、%的硫化钠水溶液。大面积脱毛,Company Logo,Company Logo,第三节实验动物血液采集,1、小鼠眶静脉丛（窦）：少量多次采大小鼠血。小鼠0.20.3ml，摘眼球：用于一次大量采小鼠血，可得到45体重的血量尾静脉：用于少量采小鼠血心脏采血：,Company Logo,2、大鼠采血,眼眶采血股静脉或股动脉采血腹主动脉采血心脏采血尾静脉采血,心脏采血,尾静脉采血,Company Logo,3、豚鼠的采血方法 耳缘剪口采血 心脏采血方法同大、小鼠。股动脉/静脉采血方法同大、小鼠。后肢背中足静脉采血,Company Logo,4、家兔的采血方法 心脏采血 可用于一次性（开胸）或多次采血

6、（不开胸）。一次性开胸采血可得到80100ml血量 耳中央动脉采血 可反复采血，每次1015ml。耳静脉采血 可反复采血，每次510ml。,Company Logo,5、犬采血,1)前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉采血2)颈动脉采血,6、猪的血液采集耳大静脉心脏采血,7、羊血液采集方法,Company Logo,Company Logo,8、取少量血,Company Logo,9、取中量血,Company Logo,8、取大量血,Company Logo,10、最大安全采血量与最小致死采血量,Company Logo,采血注意事项,采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在2528，冬季，1520为

7、宜；采血用具有采用部位一般需要进行消毒；采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。,Company Logo,常用抗凝剂：肝素：抑制凝血酶活力，阻止血小板凝集。纯品肝素1mg125U，10U-20U抗1ml血凝集，但通常应用2-3倍剂量。用法：可配成1%肝素溶液，用时取0.1ml于试管内，100烘干，每管可抗凝5-10ml血。或用1%肝素溶液湿润采血注射器。肝素可改变蛋白质等电点，当用盐析法分离蛋白作分类测定时，不可用肝素抗凝。枸橼酸钠：使凝血必需的钙离子失活。常用35%水溶液，碱性较强。草酸盐合剂：草酸铵1.2g，草酸钾0.8g，福尔马林1.0ml

8、，加蒸馏水至100ml。使凝血必需的钙离子失活。每毫升血加草酸盐合剂0.1ml。氟化钠：每毫升血加6mg。,Company Logo,第四节实验动物麻醉方法,实验动物的麻醉有局部麻醉和全身麻醉，全身麻醉又有气体吸入和注射麻醉两种方式。麻醉方式和麻醉剂的选用，因实验目的、动物种类、日龄和动物健率状况不同而异。,全身麻醉法 1、呼入法：多选用乙醚作麻醉药。本法最适合于大、小鼠的短期操作试 验的麻醉。2、腹腔或静脉给药麻醉法：硫喷妥钠、戊巴比妥钠、氯胺酮、水合氯醛,局部麻醉法 有表面麻醉、浸润麻醉和阻断麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。常用药为：普鲁卡因、的卡因、利多卡因。,注意事项,1、麻醉前注意事项

9、禁食，大动物禁食10-12h；检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，对过深麻醉的急救器材、药品是否准备齐全；麻醉药纯度、厂家，准确计算麻醉剂量；乙醚是挥发性很强的液体，易燃易爆，使用时应远离火源。平时应装在棕色玻璃瓶中，储存于阴凉干燥处，不宜放在冰箱内，以免遇到电火花时引起爆炸。2、麻醉时 静脉注射必须缓慢，一边观察一边注射，密切注意动物各项生命体征。首先注射1/3-2/3剂量。3、麻醉后注意保温措施；必须保持动物呼吸道通畅；密切观察，出现麻醉过深及时实施抢救。,Company Logo,常用麻醉药物及剂量,Company Logo,Company Logo,一、大、小鼠给药

10、1、灌胃给药 将喂管顺咽后壁轻轻往下推，喂管会顺着食管滑入小鼠的胃，插入深度约3cm。大鼠灌胃量最大5ml。,第五节实验动物给药方法,Company Logo,2、大、小鼠注射给药（1）皮下注射给药 作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸。注射量约为体重。,Company Logo,（2）皮内注射给药 接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，用4.5针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并梢刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白色小皮丘

11、，而皮肤上的毛孔极为明显。注射量为0.1ml/次。,（3）肌肉注射给药 小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。用药量不超过0.1ml/10g体重。,Company Logo,(4)尾静脉注射给药 用75%酒精棉球反复擦拭尾部,以达到消毒和使尾部血管扩张的目的.以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉更为充盈,右手持4号针头注射器,使针头与静脉平行(小于30角),从尾巴的下1/4处进针,注射量为体重。,Company Logo,（5）腹腔注射 使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，在下腹部靠近腹白线的两恻进行穿刺，保持针尖不动，回抽针栓，如无

12、回血、肠液和尿液后即可注射药液。注射量为体重。,Company Logo,3、大、小鼠其他给药方式涂布给药呼吸道给药脚掌注射法,Company Logo,二、家 兔 给 药,1、灌胃给药 使用开口器和导尿管灌胃。,Company Logo,2、耳缘静脉给药 先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。,Company Logo,3、肌肉注射给药4、涂布法给药5、直肠给药和阴道给药6、眼结合膜内给药法 将兔固定在兔箱内或夹在腋下，左手拇指和食指拉开兔下眼睑成杯状，中指压住眼内眦，以防药液由鼻泪管流

13、入鼻腔内而被吸收。滴入药液12滴，将下眼睑向上合拢，使眼球充分接触药液。约1min后将手放开，让药液自然流出。,Company Logo,三、犬给药,1、灌胃给药,2、静脉注射 静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。,Company Logo,第六节 急 救 措 施,动物实验过程中，可因麻醉药过量、出血过多、分泌物或血块堵塞气管造成窒息以及某种药物原因引起动物血压、呼吸不规则等现象，此时应立即进行急救处理措施。急救处理措施首先要迅速排查原因，并中断诱因（如止血、停药、排除分泌物等），然后对症实施急救措施。,Company Logo,一、呼吸、心跳（血压）的改变 动物实验过程中，需密

14、切观察实验动物的呼吸、心跳及血压的变化，一者它们是实验反应的数据指标，二者是实验动物状态的主要指征。尤其对呼吸的观察，因为动物的死亡首先是呼吸的停止。（一）诱发原因 1麻醉给药速度过快或过量：实施静脉给药麻醉，可因给药速度过快或过量导致呼吸停止。因此，为防止麻醉剂过量，注射速度一定不要过快，严密观察动物状况，若需追加麻醉剂，一次不宜超过总量的1/5。2气道不畅或堵塞：常见于麻醉后，因为气管分泌物增多或气管切口的出血凝块堵塞气管，动物呼吸不规则、呼吸困难甚至引起的窒息。3大失血：如因大动脉插管的松脱所造成的大失血。4实验药物的作用：如静脉注射乙酰胆碱过量或动物对其反应过强，引起心搏减弱减慢，继而

15、出现呼吸、心跳的停止。,Company Logo,（二）急救措施 1迅速排查、中断、排除诱因。如应用棉签清除干净气管、气管插管内的分泌物及血凝块。必要时拔出气管插管冲洗后再行气管插管术。2根据下列不同情况采取相应的急救措施：（1）呼吸极慢、不规则，但心跳正常时：给予人工呼吸-压胸法，适当给予苏醒剂。（2）呼吸停止仍有心跳时：实施人工呼吸，必要时可使用人工呼吸机或吸氧（吸入气中O2占95%，CO2占5）；注射50葡萄糖液510ml；给肾上腺素及苏醒剂。（3）呼吸、心跳均停止时：用l：10000肾上腺素溶液心内注射，其余同（2）。,Company Logo,二、大失血（一）诱发原因 多因动脉插管结

16、扎不牢、动物挣扎，导致大动脉插管的松脱，或在进行动脉插管术时，因未放置动脉夹或动脉夹夹闭不全而剪切动脉引起。（二）急救措施 1立即止血：应迅速手指压迫或捏住出血处（尽量不要用止血钳，以防损伤动脉和神经），然后仔细检查分离出血点，于近心端放置动脉夹，再行动脉插管术。2补充血容量：若失血太多，适当加快输液(生理盐水)速度，增加血容量。3注射强心剂：静脉注射110000肾上腺素0.5ml。,Company Logo,蟾蜍：剪去头部大白鼠、小白鼠：脊椎脱臼法 断头法 打击法豚鼠、兔等：空气栓塞法 急性放血法 药物法,第七节 实验动物的处死方法,第八节 动物尸体解剖与送检方法,一、尸体解剖的物品准备解剖

17、常用器械 剪刀、镊子、称、尺、采血管、广口瓶、注射器、纱布、照相机等。解剖常用消毒液 0.1%新洁而灭溶液、0.05%洗必泰溶液、3%碘酊、75%酒精、消毒棉花、纱布。取材常用的固定液 10%甲醛溶液、95%酒精等安全防护用品 工作服、乳胶手套、口罩、帽子等。,Company Logo,二、尸体解剖的注意事项1、解剖前了解病变过程及外观观察状况，详细描述做记录，照相；2、解剖时间在动物死亡以后马上进行；3、解剖人员应严格穿着工作服、带口罩、乳胶手套，必要时带眼镜；4、未经检查的脏器，切勿用水冲洗，防止改变原来色泽和性质；5、剖检取材完毕，尸体统一处理焚烧。,Company Logo,三、病理取

18、材的一般顺序,剥皮和皮下检查 腹腔的剖开与腹腔脏器的视察 胸腔的剖开与胸腔脏器的视察 腹腔脏器的采出 胸腔脏器的采出 口腔和颈部器官的采出 骨盆腔脏器的采出 和检查 颅腔剖开和脑的采出和检查 鼻腔的剖开与检查 脊椎管的剖开和脊髓的采出与检查 肌肉和关节的检查 骨和骨髓的检查,Company Logo,四、病理取材基本要求,分层次进行，一般外观观察，后进行剖检观察，再进行光镜检查；选择正常与病变交界处组织；试验组和对照组相同器官取材部位尽量一致；各组织块应包括各脏器的重要结构；体积大和分叶的器官应多取几个部位，小器官可以整体取材；胃肠道标本应将内容物洗净，为防止扭曲应平展在滤纸上，粘着后固定；取材大小1.5-2cm2，厚度3-5mm，也可根据需要进行取材；取材器械锋利，放置挫伤和挤压伤。,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,Company Logo,谢谢！,