雷公藤甲素对大鼠脊髓损伤后自噬的影响及机制研究.docx
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1、雷公藤甲素对大鼠脊髓损伤后自噬的影响及机制研究金哲I杨建文2罗春山21.贵州医科大学研究生院,贵州贵阳550000:2.贵州省骨科医院脊柱外科,贵州贵阳550002基金项目:贵州省卫生健康委科学技术基金项目(gzwjkj2019-l-135)通讯作者:罗春山,主任医师,E-mail:o摘要目的探讨雷公藤甲素对大鼠脊髓损伤(SCI)后自噬的影响及作用机制。方法将60只健康大鼠随机分为假手术组、模型组、雷公藤甲素组和阳性对照组,每组各15只。假手术组只进行椎板切除术,不损伤脊椎,其他3组按照Anens法制作SCl模型,雷公藤甲素组腹腔注射0.4mg(kg4)雷公藤甲素溶液,阳性对照组腹腔注射30m
2、g(kgBeclin1及凋亡相关蛋白BCl-2、Caspase-3的表达水平C结果假手术组、模型组、雷公藤甲素组和阳性对照组造模成功率分别为93.33%(14/15)、86.67%(13/15)、93.33%(14/15)、93.33%(1415)o模型组、阳性对照组、雷公藤甲素组术后各时间点BBB评分随时间延长升高(PVO.05);术后模型组、阳性对照组、雷公藤甲素组BBB评分均低于假手术组(PV0.05);术后阳性对照组、雷公藤甲素组BBB评分均高于模型组(PV0.05);术后雷公藤甲素组BBB评分均低于阳性对照组(PV0.05)。术后7d假手术组大鼠未见明显组织学改变;模型组大鼠脊髓细胞
3、肿胀明显;阳性对照组、雷公藤甲素组大鼠损伤脊髓组织神经元损伤和水肿有所缓解。假手术组脊髓组织结构基本正常;模型组脊髓组织肿胀、空泡化十分明显,有大量自噬囊泡形成;阳性对照组存活的神经元胞核形态接近正常,自噬小体数量明显减少:雷公藤甲素组受损神经元细胞病理状态有所减轻,自噬小体数量有所减少。雷公藤甲素组、阳性对照组脊髓组织中LC3B蛋白表达水平高于假手术组、模型组(PVo.05);模型组、雷公藤甲素组和阳性对照组凋亡相关蛋白BCI-2、CaSPaSe-3表达水平均高于假手术组(PV0.05);雷公藤甲素和阳性对照组Bcl-2表达水平高于模型组,CaSPaSe-3表达水平低于模型组(PVO.05)
4、c结论雷公藤甲素可能通过上调细胞自噬、抑制细胞凋亡机制在一定程度上促进SCI大鼠运动功能恢复。关键词脊髓损伤;雷公藤甲素;自噬;运动功能Basso-Beattie-Bresnahan评分;LC3B蛋白StudyontheeffectoftriptolideonautophagyafterspinalcordinjuryinratsanditsmechanismJINZhe,YANGJian-wen2LUOChun-Shan2(GraduateSchoolofGuizhouMedicalUniversity,GuizhouProvincefGuiyang550000.China;SPinalSu
5、rgeryDepartment,GuizhouOrthopaedicHospitaLGuizhouProvince1Guiyang550002,China)AbstractObjectiveTbinvestigatetheeffectsandmechanismsofactionofrapamycinonautophagyafterspinalcordinjury(SCI)inrats.MethodsSixtyhealthyratswererandomlydividedintoasham-operatedgroup,amodelgroup,arennetgroupandapositivecont
6、rolgroup,with15ratsineachgroup.Inthesham-operatedgroup,onlyIaminectomywasperformedwithoutinjurytothespine,andintheotherthreegroups,SCImodelsweremadeaccordingtoAllensmethod.0.4mg(kg-d)ofFaphenmetrazinesolutionwasadministeredintraperitoneallytotheraphenmetrazinegroup,30mg(kg-d)ofmethylprednisolonesolu
7、tionwasadministeredintraperitoneallytothepositivecontrolgroup,and3mL(kg-d)of5%dimethylsulfoxide-salinesolutionwasadministeredintraperitoneallytothesham-operatedandmodelgroupsfor7d.Themotorfunction(BBB)scoresoffourgroupsofratswereevaluatedbefore,12h,1d,3d,and7daftersurgery.Histopathologicalchangesint
8、hespinalcordofratswereobservedbyhematoxylin-eosin(HE)stainingaftertakingsectionsoftheinjuredspinalcordat7dpostoperatively,andtheautophagicstructuresofratspinalcordneuronswereobservedbytransmissionelectronmicroscopy,andtheexpressionlevelsofautophagy-relatedproteinsLC3B,Beclin1andapoptosis-relatedprot
9、einsBcl-2andCaspase-3inratspinalcordtissuesweredetectedbyWesternblot.ResultsThemodelingsuccessrateswere93.33%(14/15),86.67%(13/15),93.33%(14/15),and93.33%(14/15)forthesham-operatedgroup,themodelgroup,therapamycingroup,andthepositivecontrolgroup,respectively.BBBscoresincreasedwithtimeateachpostoperat
10、ivetimepointinthemodelgroup,positivecontrolgroup,andtretinoingroup(P0.05).PostoperativeBBBscoreswerelowerinthemodelgroup,positivecontrolgroup,andregalcitoningroupthaninthesham-operatedgroup(P0,05),PostoperativeBBBscoreswerehigherinthepositivecontrolgroupandtheregimenmethylenegroupthaninthemodelgroup
11、(尸0.05).PostoperativeBBBscoreswerelowerinboththeregimenmethylenegroupthaninthepositivecontrolgroup(P0.05).Noobvioushistologicalchangeswereobsen,edinthesham-operatedratsat7daftersurgery,thespinalcordcellsinthemodelgroupwereobviouslyswollen,theneuronaldamageandedemaintheinjuredspinalcordtissuesofthera
12、tsinthepositivecontrolgroupandtherhodopsingroupwererelieved.Thespinalcordtissuestructureofthesham-operatedgroupwasbasicallynormal,theswellingandvacuolizationofthespinalcordtissueofthemodelgroupwereveryobvious,andalargenumberofautophagicvesicleswereformed,thenucleusmorphologyofthesurvivingneuronsofth
13、epositivecontrolgroupwasclosetonormal,andthenumberofautophagicvesicleswassignificantlyreduced,thepathologicalstateofthedamagedneuronalcellsoftheratsintherhodopsingroupwasreduced,andthenumberofautophagicvesicleswasreduced.TheexpressionlevelofLC3Bproteininspinalcordtissueswashigherintheraffinosemethyl
14、enegroupandpositivecontrolgroupthaninthesham-operatedgroupandmodelgroup(P0,05),theexpressionlevelsofapoptosis-relatedproteinsBcl-2andCaspase-3werehigherinthemodelgroup,rakuganetingroupandpositivecontrolgroupthaninthesham-operatedgroup(P0.05),theexpressionlevelsofBcl-2werehigherintherakuganetinandpos
15、itivecontrolgroupsthaninthemodelgroup,andtheexpressionlevelsofCaspase-3werelowerthaninthemodelgroup.TheexpressionlevelsofCaspase-3werelowerthanthoseofthemodelgroup(PBCl-2、Caspase-3GAPDHDylight649山羊抗兔IgG抗体、山羊抗兔/抗小鼠IgG抗体购于英国Abcam公司,BCA试剂盒及RIPA裂解液、蛋白酶抑制剂及磷酸酶抑制剂购于上海阿拉丁生物化学技术公司,Tanon5200全自动化学发光图像分析系统、EPS
16、-600数显式稳压稳流电泳仪购于上海天能科技有限公司,AvantiJXN-30/26智能型高效禽心机购于美国贝克曼库尔特公司,JEOLJEM-2800高通量场发射透射电子显微镜购于日本电子株式会社。1.2 方法1.2.1 实验大鼠分组将60只大鼠按体质量随机抽样的方式分为假手术组、模型组、雷公藤甲素组和阳性对照组,每组各15只。1.2.2 大鼠SCI模型制备术前用高压蒸汽灭菌法对手术所使用的全部器械进行消毒,大鼠称重后用体积分数3%戊巴比妥钠(30mgkg)腹腔注射麻醉,用卵圆钳钳夹四肢无反应后取俯卧位固定在操作台上,在胸腹部垫软垫使胸椎向后突出明显,剔除大鼠胸背部毛发,碘伏消毒,铺无菌洞巾,
17、利用肋骨进行定位取2段背部正中做长约30mm切口,切开皮下组织,逐层分离至椎板,慢慢咬除椎板后(注意不要戳破大鼠硬脊膜,确保硬脊膜完整无损)暴露出脊髓(长约6mm),以自制脊髓打击器击打脊髓,撞击后见大鼠脊髓充血水肿,双下肢及尾巴抽搐摆动,制造SCl模型成功。充分止血后逐层缝合肌肉、皮肤并消毒。以上操作均在体视显微镜下进行。假手术组只进行椎板切除,不损伤脊髓,术后放回屏障系统内饲养。其他3组大鼠术后每8h人工挤压下腹部按摩膀胱进行人工排尿排便,直至恢复自主排尿排便功能,术后3d均给予青霉素100U(g-d)腹腔注射防止感染。1.2.3 各组大鼠给药方式假手术组和模型组术后分别腹腔注射相同剂量3
18、mL(kg-d)的5%二甲基亚飒-生理盐水溶液,雷公藤甲素组给予腹腔注射剂量为0.4mg(kgd)的雷公藤甲素溶液,阳性对照组术后给予腹腔注射剂量为30mg(kg-d)的甲基强的松龙溶液叫均连续给药7d。1.2.4 大鼠运动功能评分分别评估大鼠术前、术后12h、1d、3d、7d的运动功能(BassoBeattieBresnahan,BBB)评分:在同一时间段,把大鼠放置在平台上,采用双人观察并记录其行走情况及后肢活动情况,包括大鼠后肢关节活动情况、大鼠后肢协调功能及步态、大鼠活动时爪的精细动作,共21分,得分越高表示大鼠肢体活动能力越强。1.2.5 大鼠脊髓组织苏木精.伊红染色在术后第7d使用
19、10%水合氯醛溶液腹腔注射麻醉,麻醉成功后颈部脱位处死大鼠,沿原后背切口切开,分离伤处脊髓段上方软组织,将伤段脊髓完整暴露出来,准确定位目标脊髓段,取出约1.5Cm长的脊髓组织,使用40gL的多聚甲醛固定24h,石蜡包埋,常规脱蜡、水化和水洗等操作后,取5m厚矢状切片用苏木精染色6min,然后浸入1%酸性乙醇中5s,用双蒸水冲洗切片IOmin,接着用0.5%伊红溶液染色5min,梯度脱水将得到的切片分别置入二甲苯I、11溶液各IOmin透明,取出后用中性树脂封闭,最后在光学显微镜下观察并记录病理学变化。1.2.6 透射电镜观察大鼠脊髓神经元自噬体将上述经石蜡包埋、脱蜡、水化和水洗后的脊髓修剪成
20、体积约ICm3,在戊二醛中固定4h,取出置于PBS缓冲液中进行漂洗,再置入1%锹酸-105%亚铁鼠化钾溶液中进行固定2h,再次使用PBS缓冲液进行漂洗20min,之后进行梯度脱水,置于由包埋剂和环氯丙烷配制(3:1)的渗透剂中30min,再放入纯环氧树脂中3h,取出放入含有包埋剂的多孔橡胶板中,填充纯环氧树脂,再放入40烤箱烤12h,60C烤48h,取出后进行切片,置于铜网上,覆盖于醋酸铀染剂上,接触20min,蒸锵水冲洗切片,吸干水分,再将铜网覆盖于柠檬酸铅染剂上8min,蒸镭水冲洗切片,吸干水分,置于日立7700型透射电镜下观察并摄片。1.2.7 WeStenlbIOt检测大鼠脊髓组织中自
21、噬相关蛋白及凋亡相关蛋白表达称取100mg取出的新鲜脊髓组织,剪碎后加入ImL细胞裂解液(含1%蛋白酶抑制剂、1%磷酸酶抑制剂),12000rmin离心IOmir),取上清液,提取总蛋白,冻存备用,使用BCA蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度,将各组蛋白浓度稀释至2gL,按比例加入蛋白上样缓冲液,充分混匀后IO(TC水浴加热10min使蛋白质变性,等量蛋白样本上样量经10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SOdiUmdodeCyISUIfate-PolyaCrylamidegeleleCtroPhOresis,SDS-PAGE)分离后,蛋白转移至聚偏氨乙烯(PoIyVinylidenefIUori
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