现代细胞生物学研究方法学生.ppt
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1、现代细胞分子生物学研究方法吴 乔Add:生物馆II 322Tel:21879592010.9,基因研究的各种方法,Northern blotting关键点:DNA探针,标记试剂盒(同位素和非同位素);设内标;优点:特异性和敏感性高缺点:实验繁琐,同位素,基因水平的检测,同位素标记细胞中的受体基因表达水平,RT-PCR,RT-PCR主要由两大步骤组成,一是反转录(RT),二是PCR。它与普通PCR的区别就在于它是以mRNA为最初始的模板。RT-PCR的用途很广泛,既可以用来构建cDNA文库,也可以获得感兴趣的基因的cDNA序列。如果以内源的一些参照为标准,还可以用于研究细胞内特定基因的mRNA的
2、表达水平。关键点:mRNA,相关引物,PCR仪不足:只能相对定量,不能 绝对定量,(reverse transcription-polymerase chain reaction),Real-time PCR,实时定量PCR技术是近年来发展起来的一种新的基因定量检测技术,它通过PCR扩增中Tag酶的53的核酸外切酶活性,可以将标记在探针上的荧光基团一淬灭基团分离,使荧光基团脱离淬灭基团的控制,从而产生荧光发射。通过荧光吸收装置检测发出荧光的多少来反映模板量的高低,从而达到实时定量的目的。关键点:引物设计,real-time PCR仪,倍数差,原位杂交定位基因的表达,1,组织/细胞固定-脱水-石
3、蜡包埋-切片2,DNA 探针的制备(地高辛或同位素标记)3,探针标记mRNA-显示mRNA4,显微镜观察关键点:相应的DNA 探针;地高辛试剂盒或同位素,切片机;对照组的设置,对照组,实验组,KAI1,RNA干扰技术,发现者获得诺贝尔奖;RNA干扰(RNA interference,RNAi)是一种可以在细胞内抑制特定基因表达的现象。它由双链RNA产生,可以特异性地降解具有相同或者相似序列的RNA(包括mRNA)。它是一种比反义技术更为有效的方法,具有更高的特异性。,关键点:确定1921寡核苷酸(一条基因上有许多条候选寡核苷酸),cDNA转录成mRNA的试剂盒(效果好但价格贵),或表达载体p-
4、Super,转染试剂盒;要设置好对照(不相关的序列)不足:干扰不够稳定、不完全,不能长时间作用,荧光酶基因(Luc)是从萤火虫cDNA文库中克隆的哺乳动物细胞和组织没有任何内源性荧光素酶活力,所以Luc可作为非常灵敏的遗传报告基因荧光酶报告基因具有检测速度快、灵敏度高、费用低、用途广、可定量等优点,基因转录活性的检测(荧光素酶检测方法),基因转录活性的检测(荧光素酶检测方法),关键点:Luciferase-报告基因,表达载体,-gal,转染效率,荧光检测仪,基因芯片分析,设置好对照组,取样(mRNA)由公司测定,提供基因检测结果(根据细胞功能分类)排除变化相同的基因确定变化差异的基因选择感兴趣
5、的基因进一步证实它们的变化该方法特别适合用于信号通路中新的下游靶基因的发现,蛋白研究的各种方法,Western blotting关键点:相应的抗体;ECL显示试剂;设内标;不同抗体差别很大:用量、效果、特异性 使用的电泳胶的浓度与蛋白的分子量密切相关(反比关系)优点:可用于定量分析,蛋白表达水平的检测,蛋白半衰期,CHX(cycloheximide)放线菌酮,有的蛋白在细胞内的半衰期很短CHX的作用是抑制新蛋白的合成,免疫组织化学方法显示蛋白,1,组织/细胞固定-脱水-石蜡包埋-切片2,免疫组化染色3,显微镜观察关键点:相应的抗体;切片机;对照组的设置,对照组,实验组,蛋白的相互作用和蛋白与D
6、NA的结合分析,免疫沉淀/免疫印迹(Co-IP)Immunoprecipitation/Western blot,用特异性抗体结合细胞裂解液中的某个目的蛋白质(即免疫沉淀),洗涤后解离特异性抗体和目的蛋白质,经聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),最后用Western blot 分析显示另一个目的蛋白质。这种方法可以分析溶液中、细胞内的相互作用蛋白,但只能是定性或半定量的实验。,BIAcore生物分子相互作用分析(Biomolecular Interaction Analysis),基于表面等离子体共振(SPR)来实时跟踪生物分子间的相互作用的技术。被广泛应用于各类生物体系的测定,从各类小分
7、子化合物、多肽、蛋白质、寡核苷酸和寡聚糖直至类脂、噬菌体、病毒和细胞。具有高天然性、高效率、高灵敏度、样品量少、应用广泛等优点,但仪器昂贵、不易操作、价格高。,凝胶阻抑实验(Gel retardation assay),当DNA结合蛋白与相应的DNA片段或寡核苷酸结合而形成DNA-蛋白质复合物后,使DNA片段的分子量及电荷发生改变,因而在聚丙烯酰胺凝胶电泳体系中其电泳迁移率发生改变,通常较游离的DNA片段的泳动速率慢得多,在X光胶片上形成一较游离DNA片段滞后的带型。,实验过程:DNA片段(probe)进行末端标记(同位素、生物素或荧光)-probe与核蛋白孵育-电泳-干胶-曝光,染色质免疫共
8、沉淀(ChIP),利用抗原抗体的特异性识别反应,将与目的蛋白相结合的DNA片段沉淀下来。通过对目的片断的纯化与检测,从而获得蛋白质与DNA相互作用的信息。ChIP不仅可以检测体内蛋白与DNA的动态作用,还可以用来研究组蛋白的各种共价修饰与基因表达的关系。ChIP与其他方法的结合,扩大了其应用范围:CHIP与基因芯片相结合建立的ChIP-on-chip 方法已广泛用于特定反式因子靶基因的高通量 筛选;ChIP与体内足迹法相结合,用于寻找 反式因子的体内结合位点;RNA-ChIP用于研 究RNA在基因表达调控中的作用。,DNA affinity purification assay(DAPA),合
9、成拟分析的DNA片段,在DNA片段的末端接上biotin作为探针与核蛋白孵育,再与能耦合生物素的琼脂糖珠子免疫沉淀,最后利用western blot的方式分析,从而获得与DNA探针相互作用的蛋白质信息。,蛋白标记和定位,荧光显微镜技术,不同荧光素的激发光波长范围是不同的,所以同一样品可以同时用两种以上的荧光素标记。标记荧光素的样品在荧光显微镜下经过不同波长的激发光激发,可以发射出不同颜色的荧光。荧光显微镜中只有激发荧光可以成象,因为产生激发光的光全被样品与照相机之间的滤光片吸收。关键点:相应的抗体;荧光染料;荧光显微镜,激光共聚焦显微镜技术,采用激光做光源,激光束经照明针孔,由分光镜反射至物镜
10、并聚焦于样品上,对标本内焦平面上的每一点进行扫描,然后,激发出的荧光经原来入射光路直接反向回到分光镜,通过探测针孔时先聚焦,聚焦后的光被光电倍增管探测收集,并将信号输送到计算机,在显示屏上显示图像。优点:分辨率高,可以实时跟踪观察,光漂白后荧光恢复(FRAP),光漂白后荧光恢复:就是在光漂白后对样本确定区中的荧光恢复。FRAP是由没有漂白的荧光团从周围进入漂白区的运动引起的。FRAP用于测量2-维或3-维分子运动的力度。分子运动包括膜或活细胞内用荧光标明的分子的扩散、转移或其他类型的运动。,光漂白中的荧光损失(FLIP),光漂白中的荧光损失:是一个邻近重复漂白区的被定义区域内荧光的减少或消失。
11、与FRAP一样,FLIP被用来测量膜或活细胞内分子运动的力度。,细胞异体融合,通过诱导融合剂可以诱导细胞融合。目前比较有效的融合剂是高pH,高Ca,和聚乙二醇PEG。最常用的两种细胞融合:NIH3T3,HeLa研究过程需要用CHX,以抑制新的蛋白合成,小鼠成纤维细胞:NIH3T3人宫颈癌细胞:HeLa,相差显微镜技术,相差显微镜和普通光学显微镜最主要的不同点是在物镜后面安装一块“相差板”,偏转的光线分别通过相差板的不同区域,由于相差板上部分区域有吸光物质,所以又使两组光线之间增添了新的光程差,从而对样品不同密度造成的相位差起了放大的作用。最后,这两组光线经过透镜又会聚 成一束,发生互相叠加或抵
12、消的干 涉现象,从而表现出肉眼明显可见 的明暗区别。最大优点:样品无需染色,可以观 察活细胞,流式细胞技术的应用细胞分选周期、凋亡测定细胞表面蛋白定量DNA渗入量测定线粒体膜电位测定,流式细胞术定量分析细胞凋亡率和细胞周期,DAPI染色细胞流式细胞仪分析可用于分选细胞,流式细胞术直接定量分析细胞存活率,PI(碘化丙啶)染色细胞,不能透过活细胞膜,但可以结合到死细胞的DNA碎片上。所以细胞表现出不同的荧光值。,流式细胞术定量蛋白表达量,限制:仅用于膜蛋白含量的检测。关键点:抗体,相应的荧光素标记的二抗;流式细胞仪。蛋白表达量以面积表示。,流式细胞术检测细胞中DNA合成量(BrdU法),JC1是一
13、种碳氰化合物类阳离子荧光染料,具有电势依赖性积聚于线粒体内膜的特性。它在线粒体上以单体和聚合体两种不同的物理形式存在。JC1特异地与线粒体内膜结合,只在线粒体膜电位崩解的时候才释放出来,因此,检验结果可靠,敏感性高。,荧光探针JC-1检测线粒体膜电位,蛋白结构的分析,利用Edman降解法直接测定蛋白质分子中的肽段序列,并拼接出蛋白质分子的全序列。根据蛋白质的cDNA序列的测定,推断出蛋白质分子的序列。质谱分析:通过酶解产生肽段片段,通过质谱仪分析肽指纹图谱,从而获得氨基酸序列,再与网上蛋白库匹配,来确定是已知还是未知蛋白。,蛋白质一级结构测定方法,生物质谱检测制备技术,2D胶电泳切胶脱色脱水还
14、原烷基化洗胶脱水泡涨脱水重泡涨酶切萃取干燥质谱分析,主要国际互联网上的免费蛋白数据库检索程序,网址如下:Mascot http:/MS-Fit:htmlucsf3.0/msfit.htm Peptident:peptidennt.html PeptideSearch:Services/PeptideSearch,数据库检索网址,蛋白质空间结构测定方法,X射线衍射方法测定蛋白质分子的晶体结构。二维核磁共振技术测定蛋白质分子在溶液中的结构。用于测定蛋白质空间结构相对变化和变化速度的方法有:荧光滴定技术,紫外差吸收,园二色光谱,红外光谱,Raman光谱,脲梯度电泳,各种反应基团的暴露。,核磁共振仪分
15、析蛋白质的二级结构,核磁共振图谱,计算方程:lg(Fo/F-1)=lgKA+nlgQ;其中:Fo,F分别为蛋白质与药物作用前后的荧光强度;Q为药物浓度;KA为结合常数。以lg(Fo/F-1)对lgQ作图,可求得药物与蛋白分子的结合常数和结合位点数。,荧光滴定方法分析小分子化合物与蛋白的结合,关键点:荧光分光光度计纯化蛋白(能够自发荧光,脯氨酸、色氨酸基团),蛋白质相互作用仪,Cell,virus,bacteria,protein,DNA and small molecular;antibody-antigen,receptor-ligand,DNA-DNA,DNA-protein,protei
16、n-small molecular etc.,全自动,高通量,实时检测,快速分析生物分子之间的相互作用;相互作用分析包括:分子结合定量分析,动力学和亲和性分析,结合能力和协同性分析(结合速率Ka,解离速率Kd,结合常数KD)不用对样品作任何标记和修饰,圆二色谱分析蛋白构象改变,旋光值计算:,分子对接模拟预测化合物与蛋白结合的模型,Kd=1.68 M,Kd:ND,分析超离方法检测化合物与蛋白的相互作用,原子力显微镜(AFM),优点:1)原子力显微镜作为扫描探针显微镜的一种,可观察生物形态结构。2)利用AFM,可使得细胞及生物大分子在生理溶液的条件下成像。AFM对于生物系统的成像分析比光学显微镜具
17、有更高的分辨率(大约可以到1nm),比电镜观察所需要的样品处理更接近于生理条件,并且比光谱学技术(通常需要从大量光谱信号中间接推导出结构信息)更直观。而相对于晶体学方法来说,AFM分析不需要依靠于晶体样品,这非常有利于研究天然状态下的生物样品。,透射电子显微 镜,TEM优点:1,极高的分辨率和放大倍数;2,样品室往多功能发展;3,自动化程度高;4,与其它附件,如能谱、扫描等相连接,拓展了仪器的分析功能.不足:1,样品制备技术繁琐;2,对单个原子显微观察不理想;3,图像为二维平面像;4,样品是“死”的.,扫描电子显微镜,优点:1,样品制作较简便 2,样品可动自由度大 3,图像富有立体感 4,放大
18、范围广 5,可从观察样品表现形貌获得 多方面资料 6,可进行微区成分分析。不足:1,分辨率较低(3060埃)2,观察“死”样品 3,观察样品表面,蛋白修饰,泛素化(ubiquitination)类泛素化(sumoylation)甲基化(methylation)乙酰化(acetylation)磷酸化(phosphorylation),国家自然科学基金国家“973”重大研究计划,研究的必要性和重要性,蛋白质是基因功能的实施者,蛋白质的定位、翻译后修饰及蛋白质-蛋白质相互作用决定了蛋白质的功能,也为研究细胞生长,分化和凋亡及重大疾病发生和发展提供了基础。蛋白质的功能与其空间定位有着密切的相关,且通过
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