《酶的分离纯化》PPT课件.ppt
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1、第四章 酶的提取与分离纯化,将酶从细胞或发酵液中取出,再与杂质分开,获得所需的酶产品。酶的分离纯化工作,是酶学研究的基础.酶的纯化过程就目前而言,还是门实验科学.,酶的纯化过程与一般蛋白纯化过程相比有本身独有的特点:一是特定的一种酶在细胞中含量很少;二是酶可通过测定活力的方法加以跟踪.,1、建立一个可靠和快速的测活方法;2、酶原料的选择;3、酶的提取;4、酶的提纯;5、酶的纯度检验。,酶分离纯化的一般原则:,第一节 细胞破碎(link)第二节 酶的提取(link)第三节 沉淀分离(link)第四节 离心分离第五节 过滤与膜分离 第六节 层析分离第七节 电泳分离 第八节萃取分离 第九节 酶的结晶
2、 第十节 浓缩与干燥,本章主要内容:,go,第一节 细胞破碎,一般动物组织和细胞可用电动捣碎机或匀浆器破碎或用超声波处理破碎。植物组织和细胞由于具有纤维素、半纤维素和果胶等物质组成的细胞壁,一般常用与石英砂和适当的提取液一起研磨的方法破碎或用纤维素酶处理也能达到目的。细菌细胞的破碎比较困难,因为整个细菌细胞壁的骨架实际上是一借共价键连接而成的肽聚糖囊状大分子,非常坚韧。破碎的方法常有超声波震荡、与石英砂研磨、高压挤压或溶菌酶处理(以分解肽聚糖)。,细胞的破碎方法:一、机械破碎法 二、物理破碎法 三、化学破碎法 四、酶学破碎法,back,原理:机械运动所产生的剪力作用于细胞1 机械捣碎法:捣碎机
3、,10000rpm,实验、生产规模 均可2 研磨法:研钵、石磨、球磨、细菌磨等研磨器械,效率较低3 匀浆法:匀浆器,用于颗粒细小的组织细胞 破碎程度高。对酶破碎少,难于工业化。,Back,一、机械破碎法,包括:1、温度差破碎法;2、压力差破碎法;3、超声波破碎法;,二、物理破碎法,通过温度、压力、声波等各种物理因素的作用使组织细胞破碎,1、温度差破碎法,冷冻 高温,用于脆弱易破菌,难以工业化;于冷藏库或干冰反复于零下1520使之冻固,然后缓慢地融解,如此反复操作,使大部分细胞及细胞内颗粒破坏。由于渗透压的变化,使结合水冻结产生组织的变性,冰片将细胞膜破碎,使蛋白质可溶化,成为粘稠的浓溶液,但脂
4、蛋白冻结变性。或:将材料投入沸水中,于90左右维持数分钟,立即置于冰浴中使之迅速冷却,绝大部分细胞被破坏。,2、压力差破碎法,高压冲击法用活塞或冲击锤加高压冲击菌体细胞和冰晶石英沙等混合物。突然降压法加压至30MP以上,打开出口阀突然降为常压爆破性减压法用氮气或二氧化碳充压至几十至几百大气压。渗透压差法利用渗透压的变化而使细胞破碎,常用于从海洋微生物中提取某些酶。,频率 1020KHz,功率100150W,温度010oC,pH47,时间310min,间隔多次;对数生长期细胞,细胞浓度和溶液粘度不宜太高。暴露于910kHz声波或10500kHz超声波所产生的机械振动,只要有设备该法方便.且效果也
5、好,但一次处理量较小;应用超声波处理时应注意避免溶液中气泡的存在;处理一些超声波敏感的蛋白质酶时宜慎重。,3、超声波破碎法,在超声波的作用下,细胞膜由于空穴作用而破碎。破坏程度与输出功率、破碎时间密切相关,与频率关系不大。,操作条件,Back,三、化学破碎法,应用各种化学试剂与细胞膜作用,使细胞膜的结构改变或破坏。,有机溶剂(如甲苯、丙酮、丁醇、氯仿等)可使细胞膜的磷脂结构破坏,从而改变细胞膜的透过性,再经提取可使膜结合酶或胞内酶等释出胞外。,1、有机溶液,粉碎后的新鲜材料在0以下加入510倍量的丙酮,迅速搅拌均匀,可破碎细胞膜,破坏蛋白质与脂质的结合。蛋白质一般不变性,被脱脂和脱水成为干燥粉
6、末。用少量乙醚洗,经滤纸干燥,如脱氢酶等可保存数月不失去活性。,操作,表面活性剂(溶于液体后,具有使表面张力显著降低作用的物质)和细胞膜中的磷脂及脂蛋白相互作用,使细胞膜结构破坏,增加膜的透过性。离子型表面活性剂会使酶的结构破坏,不用之。常用的非离子型表面活性剂为:Triton(辛基酚聚氧乙烯醚,聚乙二醇辛基苯基醚);Tween(聚氧乙烯山梨醇酐单棕榈酸酯,吐温,聚氧乙烯山梨醇酐三硬脂酸酯)用凝胶层析等方法除去表面活性剂,以便酶的进一步纯化。对膜结合酶的提取特别有效。,2、表面活性剂,Back,四、酶学破碎法,在一定条件下,通过外加的酶或细胞本身存在的酶的作用,使细胞破碎。,简单原理:溶菌酶处
7、理时,它能水解构成枯草菌等菌体膜的多糖类。能溶解菌的酶分布很广。尤其卵白中含量高,而多易结晶化。,1、外加酶,1g菌体加110mg溶菌酶,pH6.27.01h内完全溶菌。于生理食盐水或0.2mol蔗糖溶液中溶菌,虽失去细胞膜,但原形质没有脱出。蜗牛酶及纤维素酶也常被选为破坏细菌及植物细胞用。革兰氏阳性菌:细胞结构和形状依赖于壁上的肽多糖,溶菌酶能专一性作用于肽多糖的-1,4-糖苷键。革兰氏阴性菌:除了溶菌酶外,另加EDTA才有效。酵母:其细胞壁的主要成分是-1,3-葡聚糖,需加-葡聚糖酶;霉菌:其细胞壁含有几丁质,可用几丁质酶;植物细胞:纤维素酶、半纤维素酶和果胶酶。,将待破碎的鲜材料在一定p
8、H和适当的温度下,利用自身的蛋白酶将细胞破坏,使细胞内含物释放出来。自体融解时需要时间,需加少量甲苯、氯仿等。应防止细菌污染。于温室30左右较早溶化。自体融解过程中PH显著变化,随时要调节pH。自溶温度选在04,因自溶时间较长,不易控制,所以制备活性蛋白质时较少用。适宜的自溶条件:温度、pH值、离子强度等加入噬菌体感染细胞电离辐谢,2、自溶法,Back,第二节 酶的提取,是指在一定条件下,用适当的溶剂处理含酶原料,使酶充分溶解到溶剂中的过程。也称酶的抽提。目的:让制备物充分溶解,并尽可能保持原来的天然状态,避免因长久放置造成制备物的分解破坏大部分蛋白质均溶于水、稀盐、稀碱或稀酸溶液中。因此蛋白
9、质的提取一般以水为主。稀盐溶液和缓冲溶液对蛋白质稳定性好、溶度大,也是提取蛋白质的最常用溶剂。,盐溶现象:在一定浓度的盐存在下,酶的溶解度增加.盐析现象:当盐的浓度太高,蛋白的浓度反而下降,从溶液中析出.一般采用稀盐溶液,0.020.05mol/L。等渗盐溶液尤以0.020.05mol/L磷酸盐缓冲液和碳酸盐缓冲液常用。0.15mol/L氯化钠溶液应用也较多。如6-磷酸葡萄糖脱氢酶用0.1mol/L碳酸氢钠液提取等。,一、酶提取的主要方法,1、盐溶液提取,蛋白质提取液的pH值首先应保证在蛋白质稳定的范围内,即选择在偏离等电点两侧。如碱性蛋白质则选在偏酸一侧,酸性蛋白质选择偏碱一侧,以增大蛋白质
10、的溶解度,提高提取效果。,酸性条件下溶解度较大,且稳定性较好,宜用酸溶液提取。,2、酸溶液提取、碱溶液提取,原则:,如细胞色素C属碱性蛋白质,常用稀酸提取;肌肉甘油醛-3-磷酸脱氢酶属酸性蛋白质,用稀碱提取;某些蛋白质或酶与其分物质结合常以离子键形式存在,选择pH36范围对于分离提取是有利的。,与脂质结合比较牢固或分子中含非极性基团较多的酶需用有机溶剂提取。有机溶剂提取用于提取蛋白质的实例至今是不多的。一些和脂结合较牢或分子中非极性侧链较多的蛋白质,不溶于水、稀盐或稀碱液中,可用不同比例的有机溶剂提取。例:从一些粒线体(Mitochondria)及微粒体(Microsome)等含多量脂质物质中
11、提取蛋白质时,采用Morton的丁醇法效果较好。因丁醇使蛋白质的变性较少,亲脂性强,易透入细胞内部,与水也能溶解10%,因此具有脂质与水之间的表面活性作用,可占据蛋白质与脂质的结合点,也阻碍蛋白质与脂质的再结合,使蛋白质在水中溶解能力大大增加。,3、有机溶剂提取,二、影响酶提取的主要因素,1、温度,为了防止酶变性失活,温度不宜高;多数酶的提取温度在5以下;耐温较高的酶可适当提高温度,以提高酶溶解度和扩散速率。少数对温度耐受性较高的蛋白质和酶,可适当提高温度,使杂蛋白变性分离且也有利于提取和进一步纯化。如胃蛋白酶等及许多多肽激素类,选择3750条件下提取,效果比低温提取更好。,2、pH值为了防止
12、酶的变性,pH不宜过高或过低;溶液的pH值应远离酶的等电点,以增加酶的溶解度。3、提取液的体积提取液的用量增加,可提高提取率;过量,酶浓度降低,不利进一步纯化。,从细胞中提取得到的生物大分子往往是不纯净的,含有大量杂质,必须进一步分离纯化,这一阶段可分为粗分级分离和细分级分离两步进行。,蛋白质(酶)的分离纯化,蛋白质分离纯化的方法很多,主要是根据蛋白分子之间特异性的差异,如分子大小,溶解度,电荷等建立起来的。性质 方法分子大小 透析、超滤、密度梯度离心、凝胶过滤 溶解度 等电点沉淀、盐析、有机溶剂沉淀电荷 电泳、离子交换层析吸附性质 吸附层析(羟基磷灰石层析、疏水作用层析)对配体分子 亲和层析
13、 的生物亲和力,主要是利用盐析法、等电点沉淀、有机溶剂沉淀等方法,使目的蛋白与其它较大量的杂蛋白分开,这些方法的特点是简便、处理量大、既能除去大量杂质,又能浓缩蛋白质,但分辨率低.,1、粗分级分离,2、细分级分离,一般蛋白质样品经粗制分级后,体积较小,杂质大部分被除去。进一步提纯,通常使用高分辨率的柱层析及电泳方法。常用的柱层析方法有分子筛层析、离子交换层析、疏水吸附层析、亲和层析。常用的电泳方法有聚丙烯酰胺凝胶电泳、等电聚焦电泳。另外,结晶也是蛋白质分离纯化的方法之一,制备的结晶物常常作为蛋白质结构分析之用。,Back,第三节 沉淀分离,改变某些条件,使溶液中某种溶质溶解度降低,从而从溶液中
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