《蛋白质组学修》PPT课件.ppt
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1、,第九章 蛋白质组学(Proteomics),第一节 概述 蛋白质组的概念及发展简史,20世纪生命科学的辉煌成就:20世纪上半叶,以遗传学为代表,以DNA双螺旋结构的提出而告捷;20世纪下半叶,以分子生物学为代表,以“中心法则”的问世而集大成;20世纪90年代,“人类基因组计划(HGP)”,基因与其编码产物蛋白的非线性关系,遗传信息从DNAmRNA结构蛋白质和功能蛋白质,构成一种有机体,完成生命的功能。基因 mRNA蛋白质,三位一体,构成了遗传信息的流程图,这即是传统的中心法则。,基因组计划的局限无法解决“基因精细调控”问题 大规模基因表达检测技术如:微阵列法、DNA芯片及SAGE等,主要从m
2、RNA水平来考虑。而“mRNA”水平只反映了转录水平调控,并不能全面代表蛋白质表达水平。蛋白质复杂的翻译后修饰、蛋白质的亚细胞定位或迁移、蛋白质和蛋白质相互作用等则几乎无法从mRNA水平来判断。实际上无法反映蛋白质的质与量。,Protein production pathway,Human genomic sequences,mRNA,Protein product,Functional protein production,Transcriptioal control,Translational control,Post-translationalcontrol,mRNA tells us
3、what might happen,Proteome tells us what is happen,基因组(genome)转录组(transcriptome)一个细胞在特定生理或病理状态下表达的所有种类的mRNA.蛋白质组(proteome)一个细胞在特定生理或病理状态下表达的所有种类的蛋白质称为蛋白质组.,后基因组时代功能基因组学成为研究重心蛋白质组学是其“中流砥柱”,成为战略制高点,从基因组学到蛋白质组学,人类基因组计划(HGP):90年代,随着全球性基因组计划尤其是人类基因组计划(HGP)规模空前、速度惊人的推进,基因研究已接近“登峰造极”,人类对生命的理性认识达到了前所未有的深度和广
4、度。,蛋白质组计划:基因组功能的阐明已经摆在面前,生命科学几乎在转瞬之间开始了新的征程蛋白质组计划,进入了一个新的纪元后基因组时代。,国际人类蛋白质组组织,以往人类对于蛋白质的研究只是针对生命活动中某一种或某几种蛋白质,难以形成一种整体观,难以系统透彻地阐释生命活动的基本机制。,基因是遗传信息的源头功能性蛋白是基因功能的执行体,大规模、全方位的蛋白质研究势在必行,蛋白质组学的提出及其意义,蛋白质组(proteome):一个细胞在特定生理或病理状态下表达的所有种类的蛋白质。蛋白质组学(proteomics):指研究蛋白质组的技术及这些研究所得到的结果,其内容包括蛋白质鉴定、翻译修饰、蛋白质功能确
5、定、蛋白质与疾病的关系、蛋白质相互作用。,蛋白质组的动态概念:不仅在同一机体的不同组织和不同细胞中不同,而且在同一机体的不同发育阶段、不同生理或环境下表现不同。,2 意义,每一种生命运动形式,都是特定蛋白质群体在不同时间和空间出现,并发挥功能的不同组合的结果。基因 DNA的序列并不能提供这些信息,所以仅用核酸的语言不足以描述整个生命活动。蛋白质组学是连接基因、蛋白质和疾病的纽带,对蛋白质表达的变化或差异的分析将具有重要的生物学意义和医学应用价值,为阐明生命现象的本质奠定基础。,由于基因剪接,蛋白质翻译后修饰和蛋白质剪接,基因遗传信息的表现规律就更加复杂,不再是经典的一个基因一个蛋白的对应关系。
6、一个基因可以表达的蛋白质数目可能很大。对细菌,可能为 1.21.3;对酵母则为3;而对人,这个因子可高达10。,One Genome Many Proteomes,2.1蛋白质鉴定:可以利用一维电泳和二维电泳并结合Western等技术,利用蛋白质芯片和抗体芯片及免疫共沉淀等技术对蛋白质进行鉴定研究。,第二节 蛋白质组学的研究内容,2.3蛋白质与蛋白质的相互作用,对于阐明细胞乃至整个生命活动的分子机制具有举足轻重的意义。细胞的任何活动都需要蛋白质分子与蛋白质分子、蛋白质与其他分子的相互作用,这也是调节细胞反应适度的必要条件。如分析酶活性和确定酶底物,细胞因子的生物分析/配基-受体结合分析。,2.
7、4蛋白质的丰度变化,即各种蛋白质的识别和定量化,是对不同状态细胞的蛋白质差异表达进行比较,一般是指某种蛋白质在细胞内表达的相对含量的变化。,2.5翻译后修饰 很多mRNA表达产生的蛋白质要经历翻译后修饰如磷酸化,糖基化,酶原激活等。翻译后修饰是蛋白质调节功能的重要方式,因此对蛋白质翻译后修饰的研究对阐明蛋白质的功能具有重要作用。目前主要研究较多的为蛋白质磷酸化,糖基化。,2.6 蛋白质分布,不同发育、生长期和不同生理、病理条件下不同的细胞类型的基因表达是不一致的,因此对蛋白质表达的研究应该精确到细胞甚至亚细胞水平。,2.7药物的靶分子的确定:蛋白质组学的研究最终要服务于人类的健康,主要指促进分
8、子医学的发展。如寻找药物的靶分子。很多药物本身就是蛋白质,而很多药物的靶分子也是蛋白质。药物也可以干预蛋白质-蛋白质相互作用。在基础医学和疾病机理研究中,这些研究可能找到直接与特定生理或病理状态相关的分子,进一步为设计作用于特定靶分子的药物奠定基础。,蛋白质组学的难点,蛋白质组的多样性 蛋白质的种类确定 蛋白质组的动态性 蛋白质组的时空性 蛋白质组学的技术,第三节 蛋白质组研究方法,蛋白质组研究的三大基本支撑技术 双向电泳技术(2DE)计算机图像分析与大规模数据处理技术质谱技术(MS),蛋白质组研究方法,双向电泳技术:固定化pH梯度胶的出现,改善了双向电泳的重复性及上样量。质谱技术:电喷雾质谱
9、和基质辅助激光解析飞行时间质谱技术的发明及发展。生物信息学的创立及其迅速发展:计算机图像分析与大规模数据处理技术,3.1 蛋白质分离纯化技术,双向电泳技术(two-dimension electrophoresis,2DE),双向电泳原理在双向电泳中,第一向通常根据蛋白质等电点的不同进行等电聚焦电泳(IEF),然后再根据分子量的不同进行变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)作为第二向。双向电泳技术是蛋白质组学研究中蛋白质多肽链分离纯化和鉴定的主要实验技术之一。,常用双向电泳设备,第一向等电聚焦电泳系统,第二向中等通量垂直电泳系统,样品制备(Sample preparation)固相预制胶条
10、的水化(IPG strip rehydration)第一向等电聚焦(IEF)胶条的平衡(IPG strip equilibration)第二向SDS-PAGE电泳(SDS-PAGE)凝胶的染色及检测(Detection/Staining)PDQuest等软件分析(Software analysis),双向电泳实验流程,等电聚焦电泳(isoelectric focusing,IEF),根据不同蛋白质的等电点不同,将蛋白质加到含有不同pH值的两性电解质的聚丙烯酰胺凝胶中,蛋白质样品在此凝胶中移动到与其等电点相同的pH梯度处后净电荷为零,在凝胶中不再移动,也就是相同等电点的蛋白质聚焦在相同pH梯度处
11、,从而把不同等电点的蛋白质分开。,2-D Electrophoresis,The 1st D:Isoelectric Focusing(IEF),IEF Theory,10 or 20 Fractions,Ampholytes generate pH gradient(pH 3-10),7.5,9.5,7.5,pI 4.5,7.5,7.5,7.5,pI 4.5,9.5,9.5,9.5,9.5,pI 4.5,3 4 5 6 7 8 9 10,Anode(+),Cathode(-),ACID,BASE,Proteins Migrate to their pI(0 net charge),IEF T
12、heory,10 or 20 Fractions,Harvest with Vacuum Source,7.5,9.5,7.5,pI 4.5,7.5,7.5,7.5,pI 4.5,9.5,9.5,9.5,9.5,pI 4.5,3 4 5 6 7 8 9 10,Anode(+),Cathode(-),ACID,BASE,The Rotofor System,A)Inject sample,B)Apply current,C)Focus proteins,D)Harvest fractions,双向电泳-第二向(SDS-PAGE),charge,size,The 2nd D:SDS-PAGE,Pr
13、oteins migrate through the gel at a rate proportional to their size.Smallest proteins travel the furthest distance,一、样品制备,样品制备基本原则,使所有待分析的蛋白样品全部处于溶解状态(包括多数疏水性蛋白),制备方法应具有可重现性。防止样品在聚焦时发生蛋白的聚集和沉淀。防止在样品制备过程中发生样品抽提后的化学修饰(如酶性或化学性降解等)。完全去除样品中的核酸和某些干扰蛋白。尽量去除起干扰作用的高丰度或无关蛋白,从而保证待研究蛋白的可检测性。,样品制备(一),细胞样品:反复冻融、超
14、声破碎组织样品:碾磨、匀浆植物样品:碾磨分泌蛋白 蛋白质样品的浓缩、去除滤液中的高丰度蛋白菌体蛋白 裂解液处理、超声破碎,双向电泳样品的溶解,是成功进行双向电泳的最关键因素之一溶解的目标:样品中非共价结合的蛋白质复合物和聚积体完全破坏,从而形成各个多肽的溶解液;必须将可能干扰2-DE分离的盐、脂类、多糖和核酸等物质的去除;保证样品在电泳过程中保持溶解状态。,增加样品溶解性的手段,离液剂:通过改变溶液中的氢键结构使蛋白质充分伸展,将其疏水中心完全暴露,降低接近疏水残基的能量域。典型代表是尿素和硫尿。去垢剂:经过离液剂处理而暴露蛋白质的疏水基团后,还常需至少一种去垢剂来溶解疏水基团。常用的去垢剂有
15、离子去污剂SDS、非离子去污剂Triton X-100和NP-40、两性离子去垢剂CHAPS、OBG等。其中CHAPS应用最普遍。还原剂:在离液剂和去垢剂联用条件下,加用还原剂可使已变性的蛋白质展开更完全,溶解更彻底。常用含自由巯基的DTT或-巯基乙醇,以及不带电荷的三丁基膦(TBP)进行还原。,两性载体电解质:即便在离液剂和去垢剂存在的情况下,某些蛋白质也需要在盐离子的作用下才能保持其处于溶解状态,否则这些蛋白质在其处于PI点时会发生沉淀 两性载体电解质的作用在于补充样品中少量的盐分,从而保证蛋白质的溶解性。应用时,两性电解质的浓度应小于0.2(w/v)。浓度过高会使IEF的升压困难、速度降
16、低。,样品中核酸的去除,对电泳的影响:增加样品粘度、与蛋白质形成复合物后会出现假象迁移和条纹。解决方法:用适量纯的不含蛋白酶的核酸内切酶进行降解,或是利用合成载体两性电解质(SCA)同核酸结合形成复合物的能力,再通过超速离心来去除复合物。ReadyPrep 2-D cleanup kit,二、适用于质谱的染色方法,考马斯亮兰(Coomassie stain)银染(Silver Stain)荧光染色(SYPRO Ruby protein gel stain),考马斯亮蓝染色,考马斯亮蓝检测范围30-100ng,灵敏度较低,但染色过程简单,所需试剂少,操作简便,无毒性,染色后背景及对比度好,与下游
17、质谱兼容,线性程度好。胶体考马斯亮蓝染色的检测灵敏度为8-10ng,但染色时间较长(24-48小时),染色过程给下游质谱检测带来较多不便。Bio-Safe染料是一种改良的胶体金染色方法。安全无污染,染色非常快(2小时),完全与下游质谱兼容。,银染,银染的检测灵敏度很高,可达到200pg,但其线性很差。普通的银染过程中因醛类的特异反应,而与下游质谱不兼容。快速银染法,可与下游质谱兼容,但其检测灵敏度较低,并伴有很深的背景干扰。,荧光染料,SYPRO Ruby染料灵敏度2-10ng,灵敏度与银染相仿,不对核酸染色染色所需时间较短染色的动态线性范围大大优于胶体金染色,扩展了约1000倍。荧光试剂显色
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