《组织培养技术》PPT课件.ppt

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1、组织培养,Tissue Culture,一、组织培养的定义,组织培养：细胞、组织或器官离体合适的培养液、温度、无菌使之生存和生长 根据培养物的不同，组织培养又可分：细胞培养、组织培养和器官培养。,二、组织培养的应用,1.优点：（1）研究对象是活细胞，可长时间动态观察细胞的形态结构和生命活动。（2）研究对象广泛，包括各种组织细胞。（3）可研究各种理化因素（温度、药物、毒素等）对细胞代谢、增殖、分化的影响。（4）研究方法多样，如倒置、荧光、电子显微镜、组织化学、同位素标记等，研究结果便于观察记录。,应用：,病毒学：细胞培养是分离培养病毒的重要手段，用于病毒感染的诊断，生产病毒疫苗。免疫学：杂交瘤-

2、单克隆抗体技术。遗传学：从子宫取得胎儿细胞做染色体分析，进行遗传学诊断，试管婴儿等。肿瘤学：抗肿瘤药物筛选。,2.不足之处：体外与体内培养条件不完全相同，失去神经内分泌系统的调节作用，培养的细胞存在一定的差异，故对结果的判断应慎重。,二、组织培养的应用,三、培养细胞的特性,1.培养细胞的分型（按生长方式分）（1）贴附型：（2）悬浮型：,1.培养细胞的分型（按生长方式分）（1）贴附型：大部分细胞附着于支持物表面生长，分化不明显，形态单一，常反映其胚层起源。如上皮细胞型，成纤维细胞型，多形细胞型。,上皮细胞型,成纤维细胞型,（2）悬浮型：不贴附于支持物上，而呈悬浮状态生长，细胞呈圆形，单个或细胞团

3、排列；见于血、脾、骨髓细胞、部分肿瘤细胞。,悬浮型细胞,三、培养细胞的特性,2.培养细胞的生长和增殖原代培养（Primary Culture）：从体内取出组织开始在体外培养，在其传代之前。传代培养（Subculture）:将细胞分离成两部分获更多至新的培养器皿中，并补充更新培养液。细胞系（Cell line）：原代培养细胞一经传代后便称为细胞系。,细胞系的生长过程,有限细胞系,无限细胞系,二倍体细胞大多可传30-50代，相当于150-300个细胞周期，维待一年左右的生存时间。,细胞系的生长过程原代培养期：1-4周，与体内细胞相似，但分裂不旺盛，含细胞类型较多。传代期：持续时间最长，细胞分裂增殖

4、旺盛，保留原组织细胞的很多特征，一般传代30-50次后，细胞增殖逐渐缓慢。衰退期：细胞增殖缓慢，并逐渐停止，细胞形态轮廓增强，最后衰退、死亡。实验研究的最佳时期：,传代期（10代以内）,三、培养细胞的特性,1.营养需要：碳水化合物、氨基酸、维生素、无机离子、促生长因子和激素,2.生存环境：温度：PH值：气相：渗透压：3.无污染及无毒：,35-37 耐低温不耐高温,7.2-7.4 宁酸勿碱,O2、CO2（5%）NaHCO3-CO2,260-320 mmol/L,3.培养细胞的生长条件,防止污染,要注意防止微生物（细菌、病毒、真菌、支原体等）的污染、不同细胞类型的交叉污染。出现以下情况时培养细胞可

5、能有污染：1)培养液的酸碱度异常改变，如短期内颜色变黄；2)培养液出现混浊；3)光镜观察到大量颗粒或菌丝；4)细胞生长停止或出现死亡。,四、组织培养的常用设备,1.仪器 包括各种无菌操作、消毒灭菌、细胞培养和保存的设备，如无菌室、超净工作台、CO2培养箱、高压蒸汽灭菌器、滤器、水纯化装置、倒置显微镜、离心机、液氮容器等。,超净工作台,CO2培养箱,四、组织培养的常用设备,2.器皿,培养瓶,培养皿,培养板,四、组织培养的常用设备,3.试剂（1）天然培养基：动物血清（如胎牛血清、小牛血清）。（2）合成培养基：如RPMI1640、DMEM、199等。多采用合成培养基+天然培养基（5-20%）。（3）

6、平衡盐溶液：由无机盐和葡萄糖组成，用于洗涤、配 液、维持渗透压，调节PH值等，如PBS、Hanks等。（4）消化液：用于消化解离组织块，使贴壁细胞从附着物 脱离。如胰酶、EDTA、胶原酶等。,五、基本培养技术,1.无菌操作 2.取材3.组织分离4.原代培养5.传代培养6.细胞冻存与复苏,五、基本培养技术,1.无菌操作：防止污染是决定组织培养成败的关键，必须无菌操作！（1）培养前的消毒灭菌 待用物品：洗涤、消毒灭菌。无菌室：紫外线照射30-50min，新洁尔灭拖地。超净台：75%酒精擦洗，紫外线灭菌等照射30min。（2）洗手和着装 彻底洗手，着清洁工作服，酒精消毒手。（3）无菌培养操作 超净台

7、内操作，点燃酒精灯，火焰附近操作，在安装吸头、打开或封闭瓶口时均应过火烧灼。不直接用手触及器皿的无菌部分，如瓶口、瓶塞内侧，必要时借助镊子。吸取培养液、平衡盐溶液、细胞悬液的吸管不能混用。转移液体时，吸管口不能触及瓶口，以防交叉污染。饭盒、瓶子不要过早打开，使用后及时盖好，瓶塞倒置在桌面。面向操作台时勿大声讲话、咳嗽，以免喷出唾沫，污染工作台面。操作完毕，整理台面，酒精擦拭。,五、基本培养技术,2.取材：新鲜、无菌、避免有害因素损伤。,五、基本培养技术,3.组织分离（1）离心分离：用于血液、羊水、胸水、腹水等悬液，500-1000 rpm低速离心5-10 min。（2）机械分离：用剪刀将组织剪

8、切成小块，也可再挤压通过筛网，用于纤维成分少的组织，如脑、胚胎、一些肿瘤组织。（3）消化分离：用消化液使组织松散、细胞分开，获得细胞悬液。常用消化液胰酶、EDTA、胶原酶。,六、基本培养技术,4.原代培养：（1）组织块法：将组织剪切成小块后，接种于培养瓶底部，培养后细胞从组织块边沿移出生长。简便易行，适用于组织量少培养。（2）消化法：将消化分离法获得的细胞悬液，接种培养瓶。在短时间内生长成片，适用于大量组织的培养，但步骤繁琐、易污染、成本高。,五、基本培养技术,5.传代培养：贴附型细胞：加入消化液，镜下观察，见胞质回缩、细胞间隙增大，终止消化，吹打为单细胞悬液，计数后接种新的培养瓶。悬浮型细胞

9、：直接吹打或离心沉淀后再分离传代。注意：1）贴壁细胞覆盖瓶底大部分（80%）方可传代，不要急于传代；2）传代时不同细胞有不同的消化时间，要根据需要注意观察及时处理。,六、基本培养技术,6.细胞冻存和复苏目的：保存和利用细胞。短期保存：-70低温冰箱，长期保存：-196 液氮罐。为保证细胞最大存活率，采用慢冻快融的原则。冻存：收集对数生长细胞，加入保护剂和培养液，调细胞密度5-10106/ml，分装入冻存管，逐渐降温，-1-2/min，到-25时，下降率增至-5-10/min，到-100迅速浸入液氮罐。（430min-7024h-196 液氮）。复苏：取出冻存管，直接投入37水浴中，快速摇动，直

10、至完全融化，吸出细胞，加入10倍以上培养液，离心，调整细胞密度5105/ml，接种培养瓶。细胞冻存于液氮中（-196）理论上储存时间是无限的。一般冻存一年后，应复苏一次，继续冻存。,低温冰箱,液氮罐,冻存管,冻存管,实验操作：小鼠肝组织培养,（一）实验材料1.器材：手术剪、手术镊（大）剪鼠开皮肤、肌肉层 眼科镊、眼科剪（小）剪碎鼠肝脏 培养皿 盖和底分别用于清洗、剪碎鼠肝脏 培养瓶 培养肝组织2.试剂：洗液PBS、小牛血清、培养液16403.仪器：超净工作台、CO2培养箱4.动物：小白鼠 1只/2人,实验操作：小鼠肝组织培养,（二）实验方法1.处死消毒小鼠：引颈法处死小鼠，在75%酒精缸中浸泡

11、数秒取出，滴去酒精，腹部向上放进白瓷盘，拿入超净台。2.准备工作：点燃酒精灯，酒精棉球擦手，取3支滴管分别放入洗液、血清、培养液中。（第一组放，最后一组收）3.取肝脏：用手术剪、镊剪开腹部皮肤、肌肉层，暴露腹腔，从腹腔右侧取一小块肝组织，放入培养皿中。4.洗涤：加入洗液，用眼科镊夹住肝组织清洗，共洗2遍。,实验操作：小鼠肝组织培养,（二）实验方法5.剪碎：在培养皿中加入1滴小牛血清，将肝组织放入其中，用眼科剪剪碎成1mm3左右小块。6.准备培养瓶：吸1滴血清，滴在培养瓶底面，来回涂抹。7.接种肝组织：用滴管吸取肝组织，贴于培养瓶底面中，3-4块即可，分开排列。8.加培养液：翻转培养瓶，加入培养

12、液2滴管，轻旋瓶盖。9.培养：将培养瓶放入CO2培养箱，2h后翻转。10.整理台面，清洗器材。,实验操作：小鼠肝组织培养,注意事项：无菌操作试剂中的滴管第一组放，最后一组收加培养液时，要翻转培养瓶2人一组，相互配合实验结束后：器材 C409清洗 小鼠 C409垃圾桶,实验操作：小鼠肝组织培养,（三）实验结果 培养一周左右，倒置显微镜下，可见肝细胞贴壁，以组织块为中心，向四周放射状分布。肝细胞呈多边形，胞体饱满，折光性强，中央有一圆形细胞核。,实验操作：小鼠肝组织培养,（四）实验地点和分组 D306 无菌室实验操作 C409 准备室 清洗实验器材 2人一组，10人一批（第1批操作，第2批准备，请班长协调安排）,实验报告：小鼠肝组织培养,一、目的二、材料三、方法四、结果五、讨论：注意事项，分析试验中遇到的问题,