《组织切片制作》PPT课件.ppt
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1、组织切片技术,概述,制片方法的种类:非切片法、切片法制片方法的一般步骤:切片法(1)杀死、取材与固定(2)洗涤(3)脱水(4)透明(5)透入(6)包埋(7)切片(8)贴片(9)染色(10)封藏 非切片法(1)整体封藏法(2)涂片法(3)磨片法(4)分离法(浸渍分离法、撕碎法)(5)压碎法,石蜡切片技术,石蜡切片法是将组织经过一系列药品处理,使石蜡渗入组织,包埋成蜡块,再把组织蜡块切成极薄的片子,根据不同的需要用不同的染色方法以显示不同细胞和组织的形态,以及细胞和组织中某些化学或特殊(如抗原)成份含量的变化。,一、取 材 取材应注意事项:切取组织应根据需要观察的部位进行选择。所取组织应包括脏器或
2、组织的重要结构或全层,同时考虑好切面方向。病理组织除切取病变部位外,还要切取病变和正常组织交界区域,以利观察分析。切取的组织必须新鲜。取材后立即投入固定液中,否则组织会收缩变形,发生自溶现象。,3 切取组织,刀要锋利,动作要轻,不可来回切割,也不要挤压或牵拉组织,以免组织变形或内部细胞结构受损伤而发生变化。4 切取的组织块必须小而薄。组织块的大小一般为0.50.50.2cm、110.3cm或1.51.50.30.5cm,最厚不能超过0.5cm。另:柔嫩组织、被膜厚而坚实的器官、小动物的器官及组织 5 采取消化道组织时应保持清洁。,6 防止材料因固定剂的作用而发生变形。如:柔嫩、薄的材料,有空气
3、的组织7、组织块附加标记的方法 采取的不同组织块,必须根据切片的要求和需要分瓶放入进行固定,加标签以示区别,并注明固定液、名称、来源、日期等等。,二、固 定 固定就是将采取的新鲜组织,放入固定液内,借助化学药品的作用使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等各种成份沉淀保存下来。同时,使组织硬化不变形,有利于固定以后的处理。,固定时间 应根据组织的种类、性质、大小,固定液的种类、性质、渗透力的强弱而定。如:一般组织,以10福尔马林固定24h左右,波音(Bouin)氏固定液12至24h,卡诺氏(Carnoy)固定液1h内。适当地增加温度可缩短固定时间。,固定液的用量 应充足,一般为组织块体积的10倍左右。
4、,3 常用固定液,(1)单纯固定液福尔马林固定液:甲醛 10ml蒸馏水 90ml,优点:透渗能力强,固定均匀,组织收缩小。缺点:但经乙醇脱水后收缩较大。,酒精固定液:无水乙醇(纯酒精)85ml(或95ml)蒸馏水 15ml(或5ml),除此之外,还有重铬酸钾、苦味酸、升汞、醋酸、丙酮等单纯固定液。,优点:有固定兼脱水作用,固定后可直接放入8595酒精中脱水。对糖原、纤维蛋白和弹性纤维等固定效果好。缺点:但固定速度较慢,易使组织变脆。一般先用85酒精固定数小时再放入95酒精继续固定。,()混合固定液波音(Bouin)氏固定液:饱和苦味酸水溶液 75ml甲醛 75ml冰醋酸 5ml,渗透迅速,固定
5、均匀,组织收缩小,切片着色良好。,卡诺氏(Carnoy)固定液:无水乙醇 60ml三氯甲烷(氯仿)30ml冰醋酸 10ml,固定速度快,可固定细胞浆和细胞核,尤其适宜染色体的固定.,中性福尔马林固定液甲醛 100ml蒸馏水 900ml磷酸二氢钠 4g磷酸氢二钠 6.5g,渗透性好,组织收缩小,固定效果好。,此外,还有辛克(Zenker)氏液、酒精福尔马林液(AF)等混合固定液。,三、洗 涤(或水洗)目的:组织在固定后要把渗入里面的固定液洗去,否则留在组织中的固定液有的会妨碍染色,有的会产生沉淀或结晶。,原则:1、固定液为酒精或酒精混合液,一般不冲洗。2、固定液为甲醛水溶液或以水配制的可用流水冲
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