《核酸分离检测》PPT课件.ppt
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1、第五章核酸的分离与检测,一、核酸的分离、提取通则,核酸在细胞中通常与各种蛋白质结合在一起。分离原则:保证核酸分子一级结构的完整性;排除其他分子污染。分离与纯化的方法一般包括细胞裂解、酶处理、核酸与其他生物大分子物质分离、核酸纯化等几个主要步骤。,1.细胞裂解,机械作用:低渗、超声、微波、冻融裂解和颗粒破碎等。不适于高分子量长链核酸的分离。化学作用:一定p H 和变性条件下,细胞破裂,蛋白变性沉淀,核酸水相。变性条件:加热、表面活性剂(SDS、Triton X-100、Tween 20、NP-40 等)、强离子剂(异硫氰酸胍、盐酸胍等)。p H 环境:强碱(NaOH)或缓冲液(TE、STE 等)
2、。金属离子螯合剂(EDTA 等)螯合Mg2+、Ca2+,抑制核酸酶活性。酶作用:溶菌酶或蛋白酶(蛋白酶K、植物蛋白酶或链酶蛋白酶)破裂细胞。降解与核酸结合的蛋白质,促进核酸的分离。联合使用:细胞、待分离核酸类型及后续实验目。,2.酶处理,裂解液中加入蛋白酶(蛋白酶K 或链酶蛋白酶),降解蛋白质;灭活核酸酶(DNase 和RNase)加入DNase 和RNase 去除不需要的核酸。,防止核酸的降解和变性,防止过酸、过碱对磷酸二酯键的破坏(一般在 pH 4-10下进行);避免剧烈搅拌;防止核酸酶(DNase,RNase)的作用。,抑制DNase:可加柠檬酸钠、EDTA等金属螯合剂;或加去污剂十二烷
3、基硫酸钠(SDS);或加蛋白变性剂。抑制RNase:实验器皿高温,或高压灭菌,不能高压灭菌的用 具用0.1%二乙基焦碳酸盐(diethyl pyrocarbonate,DEPC)处理。加强的蛋白变性剂如硫氰酸胍、异硫氰酸胍等。加核糖核酸酶阻抑蛋白(RNasin)等RNase的抑 制剂。,质粒DNA的提取碱裂解法,溶液I:50 mM葡萄糖,25,10 mM EDTA,pH 8.0 Tris-Cl pH;葡萄糖大肠杆菌悬浮;EDTA 金属离子螯合剂。溶液II:0.2 N NaOH,1%SDSNaOH 碱裂解细胞,控制时间,温柔混合;SDS 结合蛋白。溶液III:3 M 醋酸钾,2 M 醋酸醋酸钾
4、PDS沉淀;醋酸 中和碱。,3.核酸的分离与纯化,高电荷磷酸骨架比蛋白质、多糖、脂肪等其他生物大分子物质更具亲水性。根据理化性质差异,选择性沉淀、层析、密度梯度离心等方法。,酚提取/沉淀法,经典方法是酚:氯仿抽提法。裂解细胞;离心分离含核酸水相;等体积酚:氯仿:异戊醇(25:24:1 体积)混合液抽提,漩涡振荡混匀(小分子量核酸)/颠倒混匀(高分子量核酸),离心分离;疏水性的蛋白质有机相,核酸上层水相。缓冲液饱和酚蛋白变性;氯仿增加有机相比重,防止酚流入水相;异戊醇可减少操作过程中产生的气泡,下层的界面更清晰。,核酸盐经有机溶剂沉淀浓缩,酚、氯仿抽提后用乙醇沉淀 水相加p H5.05.5,终浓
5、度0.3M NaAc 或KAc(钠离子中和核酸磷酸骨架负电荷,在酸性环境中促进核酸疏水复性),加22.5 倍体积乙醇,沉淀核酸。离心收集,70%乙醇漂洗核酸沉淀除盐分。其他可用于沉淀核酸的有机溶剂:异丙醇、聚乙二醇(PEG)等;盐类:10.0mol/L 醋酸铵、8.0mol/L 的氯化锂、氯化镁和低浓度的氯化锌等。,分离沉淀DNA,层析法,利用物质些理化性质差异建立的分离分析方法。包括吸附层析、亲和层析、离子交换层析等。商品试剂盒,分离和纯化同步进行。一定离子环境下,核酸被选择性地吸附到硅土、硅胶或磁珠等表面与其他生物分子分离。结合至固相载体的核酸可用低盐缓冲液或水洗脱。核酸质量好、产量高、成
6、本低、快速、简便、节省人力以及易于实现自动化。,Promega 质粒纯化系统,以磁性颗粒为基础:采用磁性技术高通量纯化直接用于转染及其它生物学实验的质粒。以膜为基础:采用硅化膜纯化柱,可用离心法进行纯化。以树脂为基础:利用树脂,真空法。DNA在高盐条件下对硅树脂、膜的高亲和力。,全自动核酸分离纯化系统,Roche MagNA Pure 96,MagNA Pure LC 2.0,二、核酸含量的测定,核酸是由磷酸、戊糖、碱基所组成的核苷酸的多聚高分子。三者以等分子数而存在,所以只要测定三者中任何一处成分的含量,就可推算出核酸的含量。常用的核酸测定方法有:紫外吸收法、定磷法、定糖法RNA的定量测定:
7、地衣酚法DNA的定量测定:二苯胺法,紫外吸收法中DNA或RNA的定量,A260=1.0相当于:50g/ml双链DNA40g/ml单链DNA(或RNA)20g/ml寡核苷酸,分光光度计,Biophotometer,Nanophotometer,Single and multi wavelength measurement combined with kinetic methods.The full wavelength scan(190 nm-1100 nm)allows curve interpretation for attainment of more detailed scientifi
8、c knowledge over whole spectrum.sample size as low as 0.5uL.,Thermo Scientific NanoDrop 2000c(March 2,2009),Thermo Scientific NanoDrop 2000 and 2000c Spectrophotometers.These easy-to-use,UV-Vis instruments enable a 5-second measurement time of DNA,RNA and proteins on a sample size as low as 0.5uL.,核
9、酸纯度鉴定,A260/A280DNA纯品:A260/A280=1.8RNA纯品:A260/A280=2.0电泳,核酸的凝胶电泳,当前核酸研究中最常用的方法,常用于检测核酸的分子量、纯度、结构变化、序列分析等 种类:琼脂糖凝胶电泳(水平电泳)聚丙烯酰胺凝胶电泳(垂直电泳,分辨率可达1bp常用于测序),核酸样品的保存,DNA:DNA样品溶于pH8.0的TE,4 或-20 保存;长期保存样品中可加入1滴氯仿。RNA:RNA样品溶于0.3 mol/L NaAc(pH5.2)或双蒸灭菌水中,-70 保存;长期保存可以沉淀形式贮于乙醇中;在RNA溶液中,加1滴0.2 mol/L VRC(氧钒核糖核苷复合物
10、)冻贮于-70,可保存数年。,三、核酸的检测,PCR:常规PCR、RT-PCR、荧光定量PCR杂交:膜杂交(Southern Blot、Northen Blot)、组织样品原位杂交,1.荧光定量PCR(real time PCR),1996,美国Applied biosystems公司推出:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程。克服了终点PCR法进入平台期或叫饱和期后定量的较大误差,实现DNA/RNA的精确定量。目前确定样品中DNA(或cDNA)拷贝数最敏感、最准确的方法。灵敏度和特异性高、能实现多重反应、自动化程度高、无污染、实时和准确。,与常规PCR的区别
11、,常规PCR:PCR结束后对终点产物进行定量分析。实时定量PCR:实时检测PCR扩增,在扩增的指数期对起始模板进行定量。,两个重要概念,荧光域值(threshold):是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在荧光信号指数扩增阶段任意位置上,一般荧光域值的设置是基线荧光信号的标准偏差的 10 倍。Ct值(Cycles threshold):每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数.Ct值与模板DNA的起始拷贝数成反比。,荧光定量PCR化学原理,非特异性荧光标记:SYBR Green 特异性荧光标记:TaqMan,SYBRGreenI荧光染料的作用原理,SYBR Green I
12、:结合于双链 DNA小沟。PCR 反应体系中,SYBR 荧光染料特异性地掺入 DNA 双链后,发射荧光信号,而不掺入链中的 SYBR 染料分子不会发射任何荧光信号。优点:与所有双链 DNA 结合,不必因为模板不同而特别定制通用性;价格相对较低;一个 PCR 产物可以与多分子的染料结合,灵敏度很高。缺点:能与非特异性双链DNA(如引物二聚体)结合。需要熔解曲线分析。,SYBR Green 熔解曲线分析,TaqMan探针法,TaqMan 探针是一种寡核苷酸探针,设计为与目标序列上游和下游引物间的序列配对。荧光基团连接在探针的 5 末端,而淬灭剂则在 3 末端。当探针保持完整时,3端猝灭基团抑制5发
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