《实验实验》PPT课件.ppt
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1、动物生理学实验课的要求,遵守学习纪律,准时上、下课。人员及分组,组长负责制.必须严肃认真地进行实验操作、观察实验结果。各组的仪器和用品,由本组使用,不得与别组调换,以免混乱。爱护公共财物,注意节约各种实验用品。实验结果存在固定的盘上,每组上课时记住带一张盘,实验结束后立即将结果拷出。切勿在电脑上设置密码,带的盘要干净,免得电脑被感染病毒。保持实验室清洁整齐,随时清除污物。实验前必须仔细预习实验指导,了解实验的目的要求、基本原理以及简要的操作步骤。实验报告,动物生理学实验基本操作技术,一、常用手术器械蛙类实验手术器械:哺乳动物手术器械:,止血钳,手术刀,手术剪和手术镊,二、手术器械的消毒方法,煮
2、沸消毒法:水沸35min后,将器械放入消毒锅内,等第二次水沸后15min。高压蒸汽灭菌法:高压灭菌锅,蒸汽压1520lb/in2,温度121.6126.6C,30min左右。不宜于橡胶制品和锐利器械的灭菌。化学药品消毒法:常用消毒剂有:LJ-强化戊二醛、70%乙醇(不适于金属器械的消毒)、0.1%新洁尔灭、酶皂溶液、甲醛溶液等,金属器械应浸泡30min以上。(见下表)烧灼灭菌法,适用于金属器械,三、常用实验动物,青蛙和蟾蜍家兔大白鼠和小白鼠鱼类鸟类等,实验动物的抓取固定方法,蟾蜍蛙类抓取方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定,以中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢,拇指和食指分别压住左、右前肢、右
3、手进行操作。在抓取是蟾蜍时,注意勿挤压其两则耳部突起之毒腺,以免毒液射进眼中。实验如需长时间观察,可破坏其脑脊髓(观察神经系统反应时不应破坏脑脊髓)或麻醉后用大头针固定在蛙板上。依实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。,家兔,抓取:实验家兔多数饲养在笼内,所以抓取较为方便,一般以右手抓住兔颈部的毛皮提起,然后左手托其臀部或腹部,让其体重重量的大部分集中在左手上,这样就避免了抓取过程中的动物损伤。不能采用抓双耳或抓提腹部。,1、2、3均为不正确的抓取方法(1可损伤两肾,2可造成皮下出血,3可伤两耳),4、5为正确的抓取方法。颈后部的皮厚可以抓,并用手托兔体。,台式固定:做血压测量、呼吸等实验和手术时,
4、则需将兔固定在兔台上(图11-7),四肢用粗棉绳活结绑住,拉直四肢,将绳绑在兔台四周的固定木块上,头以固定夹固定或用一根粗棉绳挑过兔门齿绑在兔台铁柱上。,几种常用生理盐溶液的配制,生理性溶液为代体液,用于维持离体的组织、器官及细胞的正常生命活动。它必须具备下列条件:渗透压与组织也相等;应含有组织、器官维持正常机能所必需的比例适宜的各种盐类离子;酸碱度应与血浆相同,并具有充分的缓冲能力;应含有氧气和营养物质。动物实验中常用的生理盐溶液有生理盐水、任氏(Ringer)溶液、乐氏(Locke)溶液和台氏(Tyrode)溶液四种,其成分各异,如下表所示。,各种生理盐溶液的用途:,生理盐水:即与血清等渗
5、之NaCl溶液,在冷血动物应用0.6%-0.65%,在温血动物应用0.85%-0.9%。任氏溶液:用于青蛙及其他冷血动物。乐氏溶液:用于温血动物之心脏、子宫及其它离体脏器。用作灌注液者须于用前通入氧气泡15分钟。低钙乐氏液(含无水氯化钙0.05g)用于离体小肠及豚鼠的离体支气管灌注。台氏溶液:用于温血动物之离体小肠。,动物的麻醉,在急、慢性动物实验中,手术前均应将动物麻醉,以减轻或消除动物的痛苦,保持安静状态,从而保证实验顺利进行。由于麻醉药品的作用特点不同,动物的药物耐受性有种属或个体间差异及实验内容及要求不同,因此正确选择麻醉药品的种类、用药剂量及给药途径十分重要。理想的麻醉药品应当是对动
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