《临床标本的留取》PPT课件.ppt
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1、临床常见微生物标本的采集和运送,检验科微生物实验室,微生物检验标本的特殊性,标本采集时效性抗生素和消毒剂的干扰环境微生物和机体正常菌群的污染标本送检时间标本来源多样,检验过程中各阶段对检验结果的影响程度,检验结果出现误差的原因并不全是来自于实验室 检测环节而检验结果没有正确指导诊断也不能 完全归咎于检验本身,微生物培养标本采集送检的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂。6.送检标本应注明来源和检验目的,标本采集与运送的正确、及时与否直接关系到微生物检验结果的可靠性和阳性率高低不
2、合格的标本或不合适的保存、运送方式必定导致不准确的结果,从而影响临床诊断,延误患者治疗业界共识:Garbage in,Garbage out!因此有必要规范微生物标本的采集与保存、运送方法,保证微生物检验的质量。,临床微生物标本的种类,带菌体液痰尿液 粪便咽拭子其他,无菌体液血液 脑脊液关节腔积液 胸腹水其他,微生物实验室常被称为3D实验室(Dirty、Dump、Dangerous),血液培养标本的采集,血培养指征患者出现寒战,体温超过38或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺
3、陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。,血液培养标本的采集,采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后,尽可能在寒战、发热初期时采集。,血液培养标本的采集,采血流程(为防止血培养污染,请先执行手卫生!)(1)消毒培养瓶消毒程序:弃去瓶顶塑料帽,用75%乙醇棉球消毒培养瓶橡皮塞,待干燥60秒后使用。皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5cm以上,待消毒液挥发干燥后(常需30s以上)穿刺采血。,血液培养标本的采集,静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果
4、行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头,先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。成人瓶每瓶8-10ml,儿童瓶每瓶1-3ml。采血量不足时应优注入需氧瓶中。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,使用采血器将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节(采血时培养瓶位置应低于采血点,防止负压不足时培养瓶内液体倒流入血管)。,血液培养标本的采集,注意事项特殊部位或采集多套标本时应在血培养瓶上注明采血的部位(如中心V、左侧肘V等)。从静脉采血,不建议从动脉采血。采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导
5、管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。采血过程中绝对不可用手指触摸采血点,血液培养标本的采集,采血次数:对于成年患者,应该同时分别不同部位采集2-3套血标本(一套为一瓶需氧一瓶厌氧),在不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的血流感染非常罕见,一般无需常规做厌氧培养。采血后3-5天内一般不需重复采血培养细菌性心内膜炎:在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。,CLSI指南:血培 养的原则和流程,血液培养标本的采集,采血量:成人每次每培养瓶采血810ml,婴幼儿每次每培养瓶采血1-3ml。采血量过少会明
6、显降低阳性率。一定量范围内每多1ml血液,阳性率增加3.6%,并非越多越好,超过一定量血液会稀释培养基,使之无法中和血中的抑制物质(抗体、补体、抗生素等),血液培养标本的采集,.运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。如果不能及时送检,宜置于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱前,切勿暂存于冰箱内。,血液培养标本的采集,送检标本条形码请竖贴于培养瓶上的方框中瓶身本身的条码是用来被机器识别之用,所以粘贴的条码切勿完全遮盖原有的瓶身条码。不同部位采集的标本应在瓶身上手写标明位置。,血液培养标本的采集,安全防护:放标本的容器必须防漏,禁止将渗漏的标本送往实验室。,导管相关血流感染(
7、CRBSI),送检指征:疑似患者有动静脉插管;血培养出细菌是皮肤正常菌或假菌血症的常见菌;培养方案:1)拔除导管:至少两份外周血培养+导管尖端培养;2)保留导管:至少1份外周血培养+1份导管血培养,采血间隔时间5min;诊断依据:外周血、导管血、导管尖端培养是同一种菌;血培养有不同的阳性报警时间(2h),CRBSI标本采 集,外周血培养:经外周静脉穿刺采血。导管血培养:从导管中或静脉留置口隔膜采血。导管尖端培养:导管周围皮肤消毒 无菌剪切导管末端(约5cm)标本装无菌管送检 无菌管应立即送检,防干燥;,痰标本采集与运送,细菌室每天收到的标本中,以咳痰标本数量最多,这也是细菌检验人员花费时间,精
8、力最多的标本类型,但目前临床上最不认可的也正是痰的细菌检验报告,痰标本采集与运送,一般原则(1)采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。(2)最好在清晨采集标本。多数患者在清晨痰较多,且含菌量也多,尤其是对平时痰量少的患者,清晨采痰相对容易。(3)对于普通细菌性肺炎,如果能采集到比较理想的痰液时建议一个检验周期(4天)内只送1次痰标本,不必连续送检,更不建议24h内多次采样送检,除非痰液外观性状出现改变。(4)怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。,痰标本采集与运送,采集方法自然咳痰法与雾化导痰法嘱咐患者留取前摘去牙托,清洁口腔,如刷牙后反复用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出
9、痰液,置无菌容器内,最佳痰液采集量为2-10ml,最低不少于1ml。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用纸巾包裹痰液无痰或痰量极少者可用35氯化钠溶液5ml雾化吸入5min后留取痰液。,痰标本采集与运送,支气管镜法鼻或口腔插人支气管镜。常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。,痰标本采集与运送,经人工气道吸引法用物准备:负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器(试管)、化验单。核对患者床号、姓名等。将患者头部转向操作者一侧。进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开,连接吸引器,调节吸引器至适宜负压(成人:40.053.3kPa;小
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