抗原标记蛋白分离线粒体方法的比较.docx
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1、抗原标记蛋白分离线粒体方法的比较前言(Abstract):线粒体是细胞的“power house”,为提供细胞新陈代谢的能量的细胞器;此 外,线粒体有自身的DNA和遗传物质,因基因组数量有限而成为一种具有半自 主性的细胞器。因此线粒体的存在对细胞具有重要的意义。时下某些与线粒体 有关疾病的发生或发生某种疾病时线粒体的变化,对于研究这类疾病(如癌症 等)以及如何治疗这种疾病都有相关的医学价值。随着对线粒体的研究深入, 分离得到线粒体的纯度在其本身的研究中愈显重要。迄今,分离线粒体的方法 不胜枚举,如电泳,离心等,但分离得到的线粒体的纯度不尽相同。要想得到 高纯度度线粒体,能将线粒体从细胞内一个一
2、个“拿”下来是最好不过的。我 们的问题在于谁去拿呢?在这种情况下,抗原抗体结合的特异性为我们打开了 很好的一扇门。这里所提出的方法基于抗原抗体(Ag-Ab)反应的专一性,可以 特异性的相互结合。根据这一原理,如果在线粒体膜上特定的蛋白,用相关的 抗原进行标记,在分离的过程中通过相应的抗体则可以将线粒体完全的分离开 来,这样就可以分离得到高纯度的线粒体。主体:线粒体膜蛋白(The proteins of mitochondrial membrane):线粒体是双层膜的细胞器。根据结构与功能的关系,功能越是多的结构其 组成越是复杂,主要表现在蛋白质的数量和种类上。线粒体无时无刻不在提供 细胞生理活
3、动所需的能量,它对细胞的重要性这边就不再赘述。也就是说线粒 体双层膜上含有丰富的蛋白质,如腺苷酸转运蛋白、棕色脂肪组织的解偶联蛋 白、异柠檬酸脱氢酶、苹果酸脱氢酶、TOM-22以及D-3羟丁酸脱氢酶等。这篇 文章的主要目的在于运用抗原标记抗体识别的技术对几种蛋白标记分离线粒体 的方法的比较。一、TOM-22&Anti-TOM222:1、TOM-22蛋白是存在于线粒体外膜上转位酶的三个亚单位之一(成分为: TOM40、TOM7、TOM22),在真菌和真核生物的线粒体转位酶内所起到的作用是益是弊现在还没有个定论。其抗体为Anti-TOM22。2、分离过程:I. 取样。人或任何真核生物体组织细胞都可
4、以作为线粒体的来源。根据线 粒体分布差异,取线粒体较多的组织块。II .组织细胞的溶解:获取不同人细胞系大约融合90%并用PBS洗涤两次,1 X10八7在1ml的用冰预冷的PBS溶液中,溶液中含有完备的蛋白抑制混合片剂 并被一根针剪切大约20次。考虑到细胞的不同大小,不同直径的针用于细胞的 碎裂:26G用于293人胚肾细胞,29G用于Hela细胞,27G用于骨肉瘤细胞的 破裂。玻璃匀浆机用于碎裂大量的细胞。取洗涤液一等分溶液,通过锥虫蓝排 斥反应来确定80%的细胞已经溶解。2III.分离过程:1、凝胶柱的分离:将抗体anti-TOM22加到充满凝胶颗粒的层析柱中,取先前的细胞溶解液,分 次等量
5、的通过凝胶柱。由于抗原抗体反应的特异性,含有TOM22蛋白的线粒 体则、被吸附在凝胶颗粒中,由此将线粒体从混合溶液中分离开来。吸附在凝 胶上的线粒体与抗体结合,用PH低于TOM22等电点的盐酸溶液多次清洗凝胶 柱,破坏其抗原抗体之间的作用力,使得二者分开,即可得到高纯度的线粒体。2、超顺磁珠分离(superparamagnetic microbeads)1)、超顺磁珠:anti-TOM22 microbeads。磁珠是极其小的(直径为50纳米) 超磁力微粒物的胶体悬浮液。2通过抗原抗体结合在线粒体的外膜上,按照上 述方法组织细胞溶解后,将溶解液放在一个强磁场中,根据磁场中的作用力进 行分离。3
6、、方法可行性的分析一、凝胶柱分离:凝胶柱分离是一种较为普遍的分离方式,主要利用分子量的大小来进行分 离。通过抗原抗体反应加强了凝胶对特定物质的吸附性。经过数次的过滤后, 通过改变反应的PH值,即如上所说的用PH低于TOM22的等电点的盐酸清洗凝 胶柱,从而破坏其抗原抗体之间的作用力。但这种方法由于分离抗原抗体是其 他杂质的引入,使得分离出来的线粒体的纯度受到干扰。二、超顺磁珠的分离:(MACS)1)、产出率为了确定这种方法能够成功的分离出线粒体,取一个人胚肾293报道分子 细胞系持续不断的表达EGFP(绿色荧光蛋白)与来自于细胞色素C氧化酶的亚 基伽的前体的线粒体定向序列相互融合,结果可见如图
7、1:Fig. 1. FACS analysis of mitochondria isolated from transfected 293 HEK cells using the MACS protocol. Mitochondria in transfected 293 HEK cells express EGFP fused to a mitochondrial targeting sequence and, therefore, are fluorescently labeled. The green line displays the specific fluorescence of
8、mitochondria, whereas the gray area represents the autofluorescence of mitochondria from untransfected 293 HEK cells. Compared with the crude cell lysate before isolation (A), the mitochondrial fraction (C) shows a significant enrichment of mitochondria, whereas hardly any signal was detectable in t
9、he flow-through and wash fractions (B). An overlay of the crude cell lysate and mitochondrial fraction (D) confirms the specific enrichment of mitochondria obtained with the MACS protocol.2)、线粒体的富集蛋白印迹分析1显示出线粒体蛋白的数目,比如内膜上的细胞色素c氧化 酶,外膜的TOM22,线粒体核蛋白TFAM,和细胞色素c通过MACS分离得到的 线粒体碎片显著增多。表明在被洗涤出来的碎裂片线粒体有着的富集
10、。2COXITOM 22Gdgin97TFAMCytCP-aobnRab4Fig. 2. (A) Enrichment of mitochondria. The amounts of subunit I of complex IV (COXI), 22-kDa translocase of outer mitochondrial membrane (TOM22), mitochondrial transcription factor TFAM (TFAM), and cytochrome c (Cyt c) in whole cell lysate were compared with equ
11、al amounts of protein from the mitochondrial fraction isolated from HeLa cells using the MACS protocol. (B) The amounts of -&ctin, GAPDH, Rab4, and Golgin-97, representing proteins from cytoskeleton, cytosol, Golgi apparatus, and endosome, respectively, in whole cell lysate were compared with the eq
12、ual protein amounts from the mitochondrial fraction isolated from HeLa cells using the MACS protocol. (C) Amounts of COXI (mitochondria), KDEL (endoplasmic reticulum), and lamins A and C (nucleus) in the mitochondrial fractions obtained using DC, the MACS approach, and UC.3) 、线粒体的纯度MACS分离得到的线粒体会有来自内
13、质网、核内体、高尔基复合体、胞核和 胞液。运用蛋白免疫印记分析,以这些污染物中某些蛋白质为抗原,利用相对 应的抗体如 B -Actin, GAPDH, Golgin-97 and Rab4,能分别识别并结 合细胞骨架、胞液、高尔基复合体和胞内 体,从而出去相关的污染物。分别的与通 过DC的方法分离的到的线粒体相比。5 通过UC分离得到的线粒体含有相近数量 的来自线粒体和核内的污染物。7因此, 相对来说MACS分离线粒体的方法是相对 较为理想的。二、D-3羟丁酸脱氢酶(BDH):D-3羟丁酸脱氢酶(结构如上图:18)是位于线粒体内膜上的膜结合酶。8 其活性中心主要位于基体的旁边催化线粒体的新陈代
14、谢,产生两种重要的代谢 产物:3-羟基酸丁盐和乙酰乙酸。5此外它还是一种依赖NAD阳离子的酶。通 过绿铜假单疱菌可以获得D-3羟丁酸脱氢酶的抗体,借此可以特异性的识别结 合D-3羟丁酸脱氢酶,分离线粒体。I、材料的准备:因依赖DNA阳离子的D-3羟丁酸脱氢酶可以可逆性的将D-3羟基酸丁盐转 化为乙酰乙酸,在线粒体氧化还原反应和能量代谢中起到关键性的作用。选用 Jerboa作为实验的动物。5Jerboa是一种夜行的是啮齿类动物,主要生活在 摩洛哥高地上。其具有惊人的耐高温,耐寒,耐干燥的特征,是一份很好的实 验材料。BDH多克隆抗体的制备:多克隆抗体anti-BDH可以通过从原核生物铜绿假 单胞
15、菌体内的BDH通过相关的技术如利用家兔或其他一些手段等制备相关抗体。 在温度为35C,PH为410之间时,BDH与其抗体能够很稳定的结合,而在大于 50C或者在17C时,抗原抗体之间的相互作用力会变小或者消失,从而导致抗 原抗体的分离,使获得纯化的目标物质。II、分离:BDH可以通过antigen-antibody反应来进行分离提纯,则说明,D-3氢丁 酸脱氢酶可以被相应的抗原识别,进而在分离出线粒体。BDH通过从铜绿假单胞 菌中分离提纯出相应的多克隆抗体。5然后在取Jerboa肝脏的细胞,通除垢 剂(cholate或者Triton X-100)或者通过磷脂酶A2产生的溶血磷酯素类来使 细胞膜
16、增溶从而破裂。在洗涤数次(如利用TOM22中所提到的方法)后,取一 等分洗涤液,在35C,PH410的条件下,通过装有anti-D-3羟丁酸脱氢酶的 凝胶柱中,则因含有D-3羟丁酸脱氢酶的线粒体被吸附在凝胶柱,其他的细胞 器则因重力作用流出凝胶柱。洗涤数次后,调节温度至17C或50C以上,就可 以将anti-BDH与BDH分开,在用蒸馏水洗涤23次,从而得到纯净的线粒体溶 液。m、样品的回收:凝胶中吸附了大量的线粒体,通过改变温度来使抗原抗体进行分离,并用 蒸馏水进行洗涤,因而这种方法收集得到的线粒体不含有其他的杂质,纯度相 对较高。并且由于BDH的活性受温度的影响很大,因而当温度达到高于50
17、C时, 抗原抗体之间的作用力几乎消失,样品的回收率也是有保证的。由于BDH与anti-BDH存在一对一的关系,而一个线粒体也对应些许BDH。因此通过检测分离BDH所得到的纯度可以间接反映获得线粒体的纯度。Purification steps of BDH from jerboa liverTotal protein (mg)Specific activity (nmol/min/mg of protein)Total activity (pmol/min)Purificati on factor (fold)Yield(%)CrudeextractAmm onium51001.15.51.01
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