高低淋巴道转移力小鼠肝癌细胞株【精品论文大全】 .doc
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1、精品论文推荐高低淋巴道转移力小鼠肝癌细胞株转录组和蛋白质组研究1孙成荣1 ,唐建武1* ,宋波1 ,孙明忠2 ,刘淑清3 ,张宏颖1 ,王波1 , 张亚楠1 ,张竹清11大连医科大学病理教研室,辽宁大连 (116027)2大连医科大学生物技术专业,辽宁大连 (116027)3大连医科大学生化教研室,辽宁大连 (116027)E-mail:sun_chengrong摘要:转移是恶性肿瘤的基本特征,是造成恶性肿瘤患者死亡的主要原因,其发生机制不 清,是肿瘤学研究面临的难题之一。淋巴道转移是恶性肿瘤早期转移的主要方式,区域性淋 巴结转移是上皮来源恶性肿瘤患者最重要的临床预后因素。因此研究和发现淋巴道
2、转移关键 分子机制和通路,建立起行之有效、有针对性的阻遏手段,对恶性肿瘤治疗具有重要的现实 意义。本课题应用基因芯片、定量蛋白质组学的高通量技术手段在 mRNA 与蛋白质水平对 高低淋巴道转移力小鼠肝癌细胞株基因的差异性表达进行研究,以发现与淋巴道转移相关的 关键性分子及通路,这可为解析肿瘤淋巴道转移的分子机制提供理论基础。首先使用小鼠基 因芯片检测和比较了 Hca-F 细胞(淋巴结转移率高于 70%)和 Hca-P 细胞(淋巴结转移率 低于 30%)的基因在 mRNA 水平表达谱,筛选出在 Hca-F 细胞中表达上调的 901 个基因和129 个 EST,以及在 Hca-P 细胞中表达上调的
3、基因 593 个,EST 208 个。同时,在蛋白质水 平,应用荧光差异双向凝胶电泳(2D DIGE)与质谱(LC-ESI-MS/MS)技术比较了 Hca-F 和 Hca-P 细胞的蛋白质组表达谱,筛选出 163 个有统计学差异的蛋白质点,并对其进行蛋白质鉴定,共得到 168 种蛋白质,其中在 Hca-F 中表达上调的蛋白质为 80 种(86 个蛋白质点),在 Hca-P 中表达上调的蛋白质为 88 种(77 个蛋白质点)。这些差异性表达的基因和蛋白质 可能与肿瘤淋巴道转移有关,分别起到促进或抑制转移的作用。对差异性表达的基因和蛋白 质进行了生物信息学分析,发现具有核苷酸结合功能及参与到核苷酸
4、代谢和蛋白代谢与修饰 的基因和蛋白质占有明显比例,是最为重要的肿瘤淋巴道转移相关基因/蛋白,其中 Anax7、 Clic1 及 Ech1 等是值得深入研究的主要靶基因/蛋白。 关键词:淋巴道转移;肝癌;基因芯片;定量蛋白质组学中图分类号:R735.71. 引言转移是恶性肿瘤的基本特征,是恶性肿瘤患者死亡的主要原因1。恶性肿瘤大部分是上 皮来源的,其转移首先发生在淋巴道,临床上区域性淋巴结转移是上皮来源恶性肿瘤患者最 重要的预后因素2。因此对淋巴道转移机制和转移干预的研究,对于提高恶性肿瘤患者的生 存率和预后有重要的意义。肿瘤的异质性学说指出,高转移力的亚克隆细胞存在于原发瘤中,通过比较遗传背景
5、相 似且具有不同转移能力的肿瘤细胞,可获得影响肿瘤细胞转移能力的重要分子信息。Hca-F(淋巴结转移率高于 70%)和 Hca-P(淋巴结转移率低于 30%)就是这样一对来源于同一亲 本细胞、高度同源且淋巴道转移力显著不同的小鼠肝癌腹水型细胞株3-5。因此将二者在肿瘤淋巴道转移机制研究中互为参照,是难得而有效的细胞系膜型。1本课题得到高等学校博士学科点专项科研基金(项目编号:20040161005)和国家自然科学基金(项目编 号 30572098)的资助。- 1 -目前对淋巴道转移机制的初步研究指出,该过程是多基因参与的多参数动态网络体系。本课题应用基因芯片,定量蛋白质组学的高通量技术手段在
6、mRNA 与蛋白质水平对 Hca-F 和 Hca-P 细胞株基因的差异性表达进行研究,以发现与淋巴道转移相关的关键性分子及通 路,这可为解析肿瘤淋巴道转移的分子机制提供理论基础。2. 材料与方法2. 1 材料2.1.1 实验动物和细胞系 近交系615小鼠由大连医科大学病理学教研室繁育并提供辽实动质字( 2000) 028号。小鼠腹水型肝癌细胞株Hca-F和Hca-P由本教研室建立并保存。2.2 方法2.2.1 细胞培养与动物实验从液氮罐中取出冻存的 Hca-F 细胞与 Hca-P 细胞,复苏后,以每只 2106/ 0.2ml 分别接 种于入 615 小鼠腹腔内(第一代)。小鼠腹腔孵育一周后,取
7、腹水 0.2ml 分别再接种于入 615 小鼠腹腔内(第二代)。第二代瘤株腹腔孵育一周后,取腹水细胞进行体外培养 24 小时,巨 噬细胞贴壁,瘤细胞悬浮,收集瘤细胞。一部分用于鉴定淋巴结转移率的动物实验,一部分 用于总 RNA 和总蛋白提取。Hca-F细胞和Hca-P细胞以每只2106/ 0.2ml分别接种于入20只615小鼠的右腋中皮下。接 种后28天,处死小鼠,收集引流淋巴结,经固定,石蜡包埋后,进行常规HE染色,在光镜 下观察并检测淋巴结转移率。2.2.2RNA的提取和表达探针的制备采用 TRIzol 试 剂 分别提 取 Hca-F 和 Hca-P 细 胞的总 RNA, 用 T7-Oli
8、go(dT) 24 引物 ( 5-2GGCCAGTGAATTGTAAT2ACGACTCACTATAGGGAGGCGG2(dT) 24-3)反转录合成 双链cDNA,使用Affymetrix 公司的Enzo RNATranscript Labeling Kit体外反转录合成生物素 标记的cRNA探针。cRNA探针经片段化处理后用于与基因芯片杂交。2.2.3 芯片杂交和扫描实验所用芯片为Affymetrix公司生产的Genome MOE430A (包括22 690个转录本,对应于 约14 500个小鼠已知基因和4 371个EST) 。芯片的杂交、洗脱、染色均在Affymetrix公司的 专用设备A
9、ffymetrix Hybridization Oven 640和Affymetrix Fluidics Station 400中完成。使用 Affymetrix公司的G2500AGene- Array Scanner对杂交信号进行扫描。在与小鼠MOE430A 芯 片杂交前, cRNA探针的质量已在与“test chip ”的杂交中被检验和证实。2.2.4 数据处理芯片扫描后获得的数据利用Affymetrix Microarray Suit Software 5.0计算和处理。在比较2 张芯片的结果之前,先对每张芯片的数据进行(Normalzation or Scaling)处理。以Signa
10、l Log Ratio (在2张芯片相比较时代表了一个转录本变化的大小和方向) 1 (表明转录本的水平至少 提高2倍)和Change P-value (代表了2张不同的芯片之间一个探针对表达水平相同或不同的可 能性) 0.05 (表明实验组芯片表达水平高于对照组)作为筛选差异表达基因的标准。- 14 -2.2.5 总蛋白提取、定量及荧光标记Hca-F 和 Hca-P 细胞经 TRIS(10mM )和乙酸镁(5mM, pH 8.0)洗涤三次,并在冷冻 离心机离心三次(12,000 转,4 分)。去上清,取沉淀加入三倍体积的细胞裂解液,并在冰 浴下超声破碎,作用 5 秒,间歇 10 秒,15 个循
11、环。取混合液体在冷冻离心机离心 13,000r/min,15 分,提取上清于新的试管中。采用蛋白定量标准定量.蛋白的荧光标记按照厂家介绍的步骤进行,Cy3(Cy5)染料 400pmol 标记 50g Hca-F 细胞提取的蛋白;Cy5(Cy3)染料 400pmol 标记 50g Hca-P 细胞提取的蛋白;Cy2 染料标 记 Hca-F 细胞和 Hca-P 细胞提取的蛋白各 25g,共计 50g。然后溶于新鲜配制的二甲基甲 酰胺中,在室温,暗室中反应 30 分钟, 10nmol 赖氨酸终止反应。未标记的各组蛋白 150g 与以上标记的蛋白混合,再与同等体积的 2 倍缓冲液混合(2%载体两性电解
12、质 3-10、2%DTT、8mol/L 尿素、4%CHAPS),然后再与 IPG 泡涨液(20mmol/LDTT、8mol/L 尿素、2%CHAPS、0.5%IPG 缓冲液)混合,制成一向等电聚焦体系。2.2.6 双向凝胶电泳及凝胶图像分析20条件下,以上等电聚焦体系重泡涨 IPG 干胶条 10 个小时后,使用 IPGph电泳仪(Amersham Bioscience),按照操作说明,以 50mA 电流等电聚焦 76KVh,具体参数如下:30 V,12 hrs;300 V ,900vhrs;600 V ,1350 vhrs;1000 V ,2400 vhrs;8000 V13500 vhrs;
13、7000 V ,56000 vhrs。将等电聚焦结束的 IPG 胶条放入 SDS 平衡缓冲液和 0.5% DTT (W/V)中 10 分钟,再放 入 SDS 平衡缓冲液和 4.5% 碘乙酰胺(W/V)中 10 分钟。然后将胶条放于 12.5% SDS-PAGE 上,其上含有溴芬蓝,并用低熔点的 1%琼脂糖覆盖。电泳参数为:温度为 15C, 0.2W,1 小时;0.4 W,1 小时;1.8W,14 小时 4 分钟,直至溴芬蓝从胶的顶部到底部。 显示标记蛋白应用 TyphoonTM9410 成像系统(Amersham Bioscience),Cy2 图像、Cy3图像、Cy5 图像分别使用以下激光扫
14、描和发射过滤器:488nm、532 nm、633 nm;520 nm(BP40)、580 nm (BP30)、670 nm (BP30)。采用 DeCyder ( Amersham Bioscience ) 软件 DIA(differential in-gel analysis) 和 BVA(biological variation analysis)模式,进行凝胶图像分析。估计蛋白点数为 2500,不同凝 胶内分析模式采用配对比较。以 Cy2 为内标计算比值,通过 Cy3 /Cy2 及 Cy5 /Cy2 的比率对 应每个蛋白点含量,并对其进行标准化计算。重复 8 块胶用来计算每个蛋白点平均量
15、的改变, 并进行 t 检验,计算 p 值,设定 p0.05 为有显著性差异。2.2.7 蛋白质点酶切及电喷雾电离串联质谱(LC-ESI-MS/MS)分析经 DeCyder 软件分析有统计学意义的蛋白质点后,经自动蛋白质点切割机(Amersham Bioscience)切取后,转移至 96 孔板中,进行胰蛋白酶胶内酶解:以 25mM 碳酸氢胺,100% 乙腈分别洗两次,每次各 10 分钟,弃液体,加入胰酶工作液于冰上水化胶,在 37,50mM 碳酸氢胺中孵育样品过夜,加入 1%三氟乙酸终止反应。冰浴下超声处理胶后离心 20 分, 共进行 2 次,以 50%乙腈和 0.1%三氟乙酸反复提取液体 3
16、 次,然后应用超速真空吸干机浓 缩样品,样品用于电喷雾电离串联质谱。以下为液质联用工作条件和参数,流动相组成:A,5%乙腈与 0.1%三氟乙酸;B,95%乙腈与 0.1%三氟乙酸;梯度条件:7 分钟脱盐,2%乙腈 梯度洗脱(B 的 0%-80%,40 分钟);柱温度:25;柱流速:200nl/min;仪器校正方法: 由厂家提供的标样进行内校正。毛细管电压:39.5V;毛细管温度:200;能量碰撞:35%;锥孔电压:4.50kV;所有测定均在 ESI(DecaXpPlus ,ThermoFinnigan)方式下进行,碰撞气体为 He;检索参数设定:Xc 值单电荷时设为 1.50,2 个电荷设为
17、2.00,3 个电荷设为 2.50。 通过 Sequest 软件检索 NCBInr 数据库鉴定肽片段。2.2.8 生物信息学分析进入 DAVID 的网址:http:/david.abcc.ncifcrf.gov/conversion.jsp 点击进入 start analysis, 将鉴定出的蛋白质 Gi Accession 号上传,将蛋白质的 Gi Accession ID 转变为 Entrez GeneID, 将 Entrez GeneID 提交,进行数据库检索。根据检索结果分别进入 Functional Annotation Clustering、 Functional Annotati
18、on Chart、Functional Annotation Table 和 Functional Annotation Classification。进入 PANTHER 的网址:http:/www.pantherdb.org/点击进入 Batch ID Search,将在 DAVID 转换的 Refseq Protein Accessions 上传,选择的数据库为 Celera 和 NCBI 的 M. musculus。点 击 search。3.结果3.1 成瘤率和淋巴结转移率Hca-F 细胞株和 Hca-P 细胞株的成瘤率 100%,淋巴结转移率分别为 75%(15/20)和 25%(5
19、/20),两者相比的统计学检验有显著性意义(p0.05),符合本实验对细胞模型的要求。Table 1 The lymph node metastasis rates of Hca-F and Hca-PGroupMetastasisNon-metastasisTotalsP-valueHca-F15520Hca-P51520Totals2020400.002*:2=10.003.2 表达探针及检测芯片的质量Hca-F 和Hca-P 细胞cRNA 探针与Test Chip 杂交后的扫描图显示图上方的“GeneChip TEST 3”字和四角的点及中央的“ + ”字均清晰可见,整张扫描图内的点线分
20、布较均匀,表明 cRNA 探针质量良好(图1) 。图2 是Hca-F细胞cRNA探针与小鼠MOE430A芯片杂交后的扫 描结果,图3是Hca-P细胞cRNA探针与小鼠MOE430A芯片杂交后的扫描结果。检测报告表明 这两张芯片中看家基因-actin和GAPDH 的5端和3端均被检测到且5端和3端的信号比值 明显低于3.0的标准值。此外,外加的阳性对照bioB、bioC、bioD和cre也被检测到且信号强度 随着浓度由低到高呈现出由弱到强的趋势,表明芯片质量良好,检测结果可信。3. 3 芯片检测的结果根据“材料与方法”中介绍的筛选标准, Hca-F与Hca-P相比, Hca-F中表达上调的有90
21、1个 已知基因(1 097个转录本) ,占芯片中已知基因的6.2% ,和129个EST(157个转录本),占芯片中 EST的3%;Hca-P中表达上调的已知基因和EST分别为593(686个转录本,4.1%)和208个(231 个转录本,4.8%)。以上数据在本文中未公布。Fig.1 Scanning result of test chipFig.2Scanning result of real chip after hybridization with cRNA from Hca-F cell line Spots indicated the signals of positivegenes
22、 in Hca-F cell.Fig.3 Scanning result of real chip after hybridization with cRNA from Hca-P cell line Spots indicated the signals of positive genes in Hca-Pcell.3.4 双向凝胶电泳分离荧光标记蛋白的结果为产生有统计学意义的可靠结果,共跑 4 块平行胶,使用 DeCyder 软件分析图谱,检 测到蛋白质点和匹配上的蛋白质点,结果如表 2 所示。Table 2 The number of detected protein spots and
23、 matched protein spots in gelsGel IDLabelNo.of SpotsMatchedGroup1Cy225151486StandardCy325151486FCy525151486P2Cy225081455StandardCy325081455PCy525081455F3Cy224221591StandardCy324221591FCy524221591P4Cy224061551StandardCy324061551PCy524061551F3.5 荧光差异双向凝胶电泳蛋白图谱中差异性蛋白质点的分析所建立的 Hca-P 和 Hca-F 细胞的蛋白质荧光差异双向
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