红枝垂组织培养快繁技术的研究1【精品论文大全】 .doc
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1、精品论文推荐红枝垂组织培养快繁技术的研究1荣冬青,王贤荣 南京林业大学森林资源与环境学院,江苏南京(210037) Email: wangxianrong66摘要:本文以红枝垂(C. subhirtella var. pendula Rosea)的带芽茎段为外植体,接种到MS+1.0 mg/L BA+0.1 mg/L NAA 培养基上,芽的诱导率最高,为 80%;采用正交设计方法, 研究了 6-BA、NAA、蔗糖 3 种不同因素及其组合对红枝垂芽增殖系数的影响,结果表明:细胞分裂素 BA 是幼芽增殖的最主要因素。芽增殖的最佳组合为 A2B3C2 即 MS+0.5 mg/LBA+0.1 mg/L
2、 NAA+35 g/L 蔗糖,其增殖系数为 4.15 。当株高在 2-3 cm 时,转入1/2MS+1.0mg/L NAA +1.0mg/L IBA 生根培养基上,接种 25d 后,生根率可达 95%;经过 5-7d的开瓶炼苗,以沙:珍珠岩:蛭石=1:1:1 为基质,20d 后调查,其移栽成活率达 84%。 关键词:红枝垂;快繁;组织培养;正交试验红枝垂(C. subhirtella var. pendula Rosea)隶属于蔷薇科(Rosaceae)樱属(Cerasus), 是早樱种系下的著名品种1-2,引自日本。其枝条如垂柳般下垂,树形美观,花期在早春 2-3 月,花先叶开放,伞形花序,
3、萼筒形状奇特,颜色粉红至深粉红色,轻柔高洁;满树盛开时, 景色蔚为壮观,具有较高的吸引力和观赏价值,南京玄武湖和梅花山有栽培。目前在樱属植物繁殖技术研究方面,已有大量离体培养的研究,在垂枝樱花类植物中, 徐兆波等对从日本引进的垂枝樱花生长发育特性进行了试验观察,研究了其常规繁殖的砧穗 组合和其抗寒砧木组织培养的条件3,但对红枝垂的繁殖技术还未见报道。随着樱花类植物在园林绿化中的广泛应用,迫切需要探讨出樱花的快速繁殖技术,促进 樱花产业化的迅速发展。本试验在总结前人经验的基础上,试图对早樱种系下的红枝垂离体 再生系统做初步研究,以带芽茎段为研究材料,对组织培养的外植体的启动培养、幼苗增殖 及生根
4、诱导三个步骤的培养,探索主要的影响因素,以期归纳出其组织培养途径快速繁殖的 培养流程,为樱花生产走上工厂化、产业化之路提供科学和技术依据,同时也为其他木本植 物组织培养的相关研究提供一些借鉴。1. 试验材料和方法1.1 试验材料和灭菌处理2006 年 4 月底,从南京玄武湖公园采集红枝垂的当年生半木质化的幼嫩枝条,以带芽 茎段为试验材料。将嫩枝上的叶片全部剪掉,用毛刷蘸洗衣粉洗刷表面,然后枝条剪成约 2cm 的带芽茎 段,流水下冲洗 2h,放于 70%的酒精 30s,然后用无菌水冲洗 4 次,再放入 0.1%Hgcl2(加1-2 滴吐温-20)的溶液中浸泡 8min 后,用无菌水冲洗 5 次,
5、再用无菌滤纸吸干其表面水分,接种于不同培养基上。1.2 培养条件培养温度为 252;日光灯照明,光强为 1500-2000lx;光照时间为 12h/d。1.3 试验方法1本课题得到高等学校博士学科点专项科研基金资助课题 SRFDP,编号 2004298001 的资助。-7-试验按 3 个不同的培养阶段设计培养基,通过试验结果分析筛选各阶段的最适培养基。初代培养基添加蔗糖 30g/L(诱导生根时蔗糖量减半),琼脂 7g/L,添加不同种类及不同浓 度的激素,pH 值为 5.75。1.3.1初代培养基的筛选试验以 MS 为基 本培养 基 ,细胞 分裂素 与生 长 素混合 使用 为 BA0.1mg/L
6、 与 IBA(0.1,0.5,1.0mg/L)组合成 3 个处理;BA1.0mg/L 与 NAA(0.1,0.5,1.0mg/L)组合成 3 个处理; 共 6 个处理(见表 1)。用来诱导腋芽萌发,将消毒后的外植体接种到培养基上,每处理接 种 30 瓶,每瓶接种一个茎段,30d 后统计诱导率,诱导率=诱导出芽的外植体数/接种外植 体数100%。1.3.2幼芽增殖培养基的筛选试验以 MS 为基本培养基,选用 L9(34)设计进行 3 因素 3 水平的正交试验4-7,主要考察 6-BA、 NAA、蔗糖 3 个因素的效应。每个因素设置 3 个水平,6-BA 浓度为 0.1,0.5,1.0mg/L,N
7、AA 浓度为 0.01,0.05,0.1mg/L,蔗糖浓度为 25,35,45g/L。按正交表前三列列出不同的试验 配比,构成 9 种培养基,其因素和水平见表 2。待接种的带芽茎段萌发并抽出幼芽后,切取 幼芽转入 9 种增殖培养基中,每处理 10 瓶,每瓶 3-4 个幼芽,重复三次,30d 后统计增殖 系数,增殖系数=增殖芽数/接种芽数,取 3 次重复的平均值。1.3.3生根培养基的筛选试验在参考相关文献的基础上8-12,采用 1/2 MS 培养基作为幼苗生根的基本培养基。用不 同浓度的 IBA、NAA 及二者组合试验,生根培养基配方见表 5。待培养的幼苗长到 2-3cm 时,然后将幼苗转入到
8、生根培养基。每种培养基接种 20 个芽,25d 后统计生根率,生根率%=生根的苗数/培养的苗数100%。1.3.4炼苗与移栽生根培养 35d 后,将株高 4cm 以上,根系发达,叶片展开的健壮幼苗在培养室内去掉 封口膜,炼苗 5-7d 后, 将根系附着的培养基洗净,并用 0.1%的多菌灵蘸根处理,移植于 已作消毒处理的基质中,期间喷洒 1 /1 0MS 大量元素营养液及 1 000 倍液的多菌灵,20 d 后统计试管苗移栽成活率,移栽成活率%=移栽成活苗数/移栽苗数100%。2. 结果与分析2.1 初代培养基对芽诱导的影响芽的诱导与分化离不开植物生长调节物质的参与。不同植物生长调节物质的种类与
9、配比 对芽诱导的效果不同。由表 1 可知,当细胞分裂素 BA 分别与 IBA、NAA 组合使用时,后 者优于前者,可能是由于浓度不同或由于 IBA、NAA 的作用方式不同,外源激素总是通过 植物体的内源激素而起作用。当 1.0mg/L 的 BA 与 0.1mg/L 的 NAA 组配使用时,芽的诱导 率最高,为 80%。幼芽长势旺盛,叶色浓绿,逐渐形成丛芽。当 0.1mg/L 的 BA 与 IBA(0.1,0.5,1mg/L)组配使用时,芽的诱导率均较低,在 0.1mg/L 的 BA 与 1mg/L 的 IBA 组合使 用时,芽的诱导率最低为 23.3%。这说明,较低浓度的细胞分裂素与生长素组合
10、使用时,不 利于芽的启动。表 1 初代培养基对红枝垂芽诱导的影响Table 1 Effects of initial culture mediums on buds induction of C. subhirtella var. pendula Rosea培养基成分及质量浓度 mg/ml接种段数分化数诱导率%MS+BA0.1+ IBA0.1301136.7MS+BA0.1+ IBA0.5301343.3MS+BA0.1+ IBA1.030723.3MS+BA1.0+ NAA0.1302480.0MS+BA1.0+ NAA0.5302066.7MS+BA1.0+ NAA1.0301653.32
11、.2芽增殖培养基对芽增殖的影响由表 3 可见,在所选的 3 个因子及水平中,所有组合均能形成丛生芽 ,但各处理间芽的 增殖系数差异很大。通过对增殖系数的级差分析(见表 4),A 因子的级差最大为 1.51,说 明 BA 在幼芽增殖中起主导作用。其次是 C 因子,其级差为 0.52,蔗糖在组织培养中为幼苗 提供碳源,适当提高培养基中蔗糖含量,降低培养基中的渗透势,可以预防试管苗的玻璃化。 B 因素级差最小为 0.27。表 4 说明不同激素浓度及种类和蔗糖的含量对增殖系数的影响是不 同的。根据表 4,把 A、B、C 三因素对芽增殖系数的相对成程度排成主次顺序,用柱状图表 示出来(见图 1)。图 1
12、 表明,随 A 因素(BA 含量)水平的上升,增殖系数先上升后下降,且 三水平差异明显,呈现增加趋势;随 B 因素(NAA 含量)水平的上升,增殖系数呈上升趋势, 且三水平差异不明显;随 C 因素(蔗糖含量)水平的上升,增殖系数先上升后下降,三水平差 异较明显。图 1 还表明,幼芽增殖系数的最佳组合为 A2B3C2 或 A2B2C2。A2B3C2 即 BA(0.5mg/L),NAA(0.1mg/L),蔗糖(35g/L)。A2B2C2 即 BA(0.5mg/L),NAA(0.05mg/L),蔗糖(35g/L)。从本实验结果来看,A2B3C2 在本试验中出现,同时也证实了对幼芽增殖系 数较好的组合
13、是 A2B3C2 ,其增殖系数为 4.15,而 A2B2C2 组合没有出现,还需进一步的验 证。表 2 L9(34)因子水平表Table 2 L9 (34) orthogonal design table因子水平因子种类及代码 FactorLevels of factorA6-BA(mg/L)B NAA(mg/L)C蔗糖(g/L)10.10.012520.50.053531.00.1045培养基编号No.of medium123456表 3 正交设计实验结果Table 3 The results of orthogonal experiment因子种类 Factors增殖系数prolifera
14、tion coefficient1.742.372.053.123.41ABC0.1(1)0.01(1)25(1)0.1(1)0.05(2)35(2)0.1(1)0.10(3)45(3)0.5(2)0.01(1)45(3)0.5(2)0.05(2)25(1)0.5(2)0.10(3)35(2)4.1571.0(3)0.01(1)35(2)3.0481.0(3)0.05(2)45(3)2.8691.0(3)0.10(3)25(1)2.50表 4 不同培养基对幼芽增殖的级差分析Table 4 Range analysis on bud proliferation of different medi
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