实验总结 细胞培养方法.docx

《实验总结 细胞培养方法.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《实验总结 细胞培养方法.docx（11页珍藏版）》请在三一办公上搜索。

1、一、培养细胞常用配置培养基的配置：基础培养基500ml+胎牛血清50ml+双抗5ml冻存液的配置：10 % DMSO + 90%依次比例酌量配置。超净工作台常规配置移液器1套（叫、20 200叫、1ml），酒精灯1盏，液器1台，斜架1台，酒 精喷壶1个，酒精棉球缸1个，污缸1个，常规耗材：培养瓶（50 cm 2），定量移液管（5ml、10ml），枪头（1ml、200叫、 10叫），培养皿，6/2448/96孔板，医用脱脂棉球，冻存管所需试剂：培养基，胎牛血清，双抗，DMSO，胰酶，75%酒精.实验前准备：所需的各项高压后的耗材及污物缸放于超净工作台内，用酒精喷壶 喷洒实验台面，并关闭工作台打开

2、紫外灯照射30min后开始实验操作。培养基及 胰酶恢复常温后使用，可37C水浴5-10min二、细胞复苏步骤：1. 紫外消毒30min后关闭紫外灯，开启超净台正常工作状态，用酒精消毒操作 者的双手。2. 培养液（DMEM），恒温水浴箱37C预热20min,备用。超净台内准备一支 15ml离心管备用。3. 将所需的培养基确保瓶身干净后酒精消毒放于工作台面内，点燃酒精灯，再将 瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次，旋开瓶盖后需再次分别消毒瓶口和瓶盖。4. 从液氮保存罐中取出冻存管，立即放入37C水浴中，快速摇晃，直至冻存液 融化至黄豆粒大小后迅速取出。5. 将细胞悬液移入15ml离心管，缓慢加入4ml培

3、养液，离心（1000r/min，5min）。6. 取出2个培养皿并做好标记（复苏日期等），提前加入5-10ml培养液；离心 结束后用1ml培养液悬液混悬沉淀细胞后分别加入培养皿内。7. 将培养基瓶口和瓶盖消毒2-3次后拧紧，熄灭酒精灯，整理实验台面，取出实 验试剂及污缸等，关闭超净工作台。8. 将培养瓶放入培养箱内培养注意事项：1. 取细胞的过程中注意带好防冻手套。此项尤为重要，细胞冻存管可能漏入液 氮，解冻时冻存管中的气温急剧上升，可导致爆炸。2. 冻存液的问题：冻存液的配置已是常识，在这里不作详述，但二甲基亚砜 （DMS O）对细胞不是完全无毒副作用，在常温下，二甲基亚砜对细胞的毒副作用较

4、大，因此，必须在1-2min内使冻存液完全融化。如果复苏温度太慢，会造 成细胞的损伤，二甲基亚砜（DMSO ）最好选择进口产品。3. 离心前须加入少量培养液。细胞解冻后二甲基亚砜浓度较高，注意加入少量 培养液可稀释其浓度，以减少对细胞的损伤。4. 离心问题：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后 分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除DMSO, 去除死细胞，这个是标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转 的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大，死亡。 此外在操作过程中容易污染，所以不推荐。另一种说法为细胞悬液中含有二

5、甲基 亚砜（DMSO）, DMSO对细胞有一定的毒副作用，所以须将离心后的液体前倒 净，且一定倒干净。5, 冻存细胞解冻时1ml细胞液要加10ml 15m培养液6. 复苏细胞分装的问题:复苏1管细胞一般可分装到2-3只培养皿中，分装过多， 细胞浓度过低，不利于细胞的贴壁。7, 加培养基的量放入问题：这个量的多少的把握主要涉及到的问题是DMSO的 浓度，从如果你加培养基的太少，那么DMSO的浓度就会比较大，就会影响细胞 生长，从以前的资料来看，DMSO的浓度在小于的时候对一般细胞没有什么影 响，还有一个说法是1%。所以如果你的冻存液的浓度是10%DMSO的话那么 加10ml以上的培养基就恰好稀释

6、到了无害浓度8. 原理：在不加任何条件下直接冻存细胞时，细胞内和外环境中的水都会形成 冰晶，能导致细胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、PH改变、 蛋白变性等，能引起细胞死亡。如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。在缓慢 的冻结条件下，能使细胞内水份在冻结前透出细胞。贮存在一130C以下的低温 中能减少冰晶的形成。细胞复苏时速度要快，使之迅速通过细胞最易受损的一5 0C，细胞仍能生长，活力受损不大。目前常用的保护剂为二甲亚砜（DMSO ）和 甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。三、培养液的更换1. 紫外消毒30min后关闭紫外灯，开启超净台正常工作状态，用酒精消毒

7、操作 者的双手。2. 培养液（DMEM），恒温水浴箱37C预热20min，备用。3. 将所需的培养基确保瓶身干净后酒精消毒放于工作台面内，点燃酒精灯，再 将瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次，旋开瓶盖后再次分别消毒瓶口和瓶盖。4. 将培养皿盖内口朝上放在架子上，将培养皿内的培养液悬空倒进污缸5. 拿出1支高压后的5ml定量移液管，在酒精灯上灼烧尾部后装于移液器上， 再次放于酒精灯上灼烧整个定量移液管管身2-3次，悬空进入培养基瓶内吸取 5-10ml培养基再悬空移入培养皿内，将培养皿盖在酒精灯上消毒2-3次后盖上。6. 将培养基瓶口和瓶盖消毒2-3次后拧紧，熄灭酒精灯，整理实验台面，取出实 验试剂及

8、污缸等，关闭超净工作台。7. 将培养瓶放入培养箱内培养每天定时观察细胞生长情况，一般72-96h后，细胞生长密度大于90%，即可进 行细胞的传代。四、细胞传代1. 紫外消毒30min后关闭紫外灯，开启超净台正常工作状态，用酒精消毒操作 者的双手。2. 培养液，胰酶，恒温水浴箱37C预热20min，备用。3. 将所需的培养基，胰酶确保瓶身干净消毒后放于工作台面内，点燃酒精灯， 再将瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次，旋开瓶盖后再次分别消毒瓶口和瓶盖，分 别放于酒精灯的两侧。4. 将培养皿盖内口朝上放在架子上，将培养皿内的培养液悬空倒进污缸。取1ml 移液器快速移动在酒精灯上消毒1-2次，然后再装上枪

9、头吸取1-2ml胰酶液，悬 空沿皿壁加入培养皿内。5. 将培养皿来回倾倒使胰酶浸没整个皿底的细胞层，计时越1-3min （消化时间 根据细胞不同时间不同），对着灯光可观察到细胞与细胞之间有针孔样缝隙，并 有1-2个细胞脱落，镜下观察到细胞都变圆时为胰酶消化的最适时机。（若看到 成片的细胞从瓶壁脱落为胰酶消化过度；若看不到针孔样缝隙和细胞脱落，或镜 下细胞多有菱角则需继续消化）。用移液器将胰酶吸净。6. 吸取1ml培养基于培养皿内，并用移液器吸取少量的培养基轻柔的反复冲洗 培养瓶壁5-8次，使贴壁细胞完全脱落于培养基内再轻轻吹打2-3次，使细胞尽 可能处于单个悬浮状态。7. 取1或2个新的培养皿

10、，然后将细胞培养基均匀的分到2或3个培养瓶内（注 意原来传代时使用的培养瓶可继续传代使用），进行1传2或1传3的培养。8. 拿出1支高压后的5ml定量移液管，在酒精灯上灼烧尾部后装于移液器上， 再次放于酒精灯上灼烧整个定量移液管管身2-3次，悬空进入培养基皿内吸取 5-10ml培养基悬空移入每个培养皿内，将培养皿盖在酒精灯上消毒2-3次盖上， 在皿盖上做好实验标记。9. 将培养基瓶口和瓶盖消毒2-3次后拧紧，熄灭酒精灯，整理实验台面，取出实 验试剂及污缸等，关闭超净工作台。10. 将培养瓶放入培养箱内培养。注意整个培养箱底托盘内一定要放高压后的 水，且定期更换确保无菌。每天定时观察细胞生长情况

11、，一般72-96h后，细胞生长密度大于90%，即可进 行细胞的传代或保株。五、细胞株的保存 原理：细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法，主要采用加适量保护剂的缓慢 冷冻法冻存细胞。细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻，细胞内外的水分会 很快形成冰晶，从而引起一系列不良反应。如细胞脱水使局部电解质浓度增高， pH值改变，部分蛋白质由于上述原因而变性，引起细胞内部空间结构紊乱，溶 酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶，使细胞内结构成分造成破坏，线粒体肿 胀，功能丢失，并造成能量代谢障碍。胞膜上的类脂蛋白复合体也易破坏引起细 胞膜通透性的改变，使细胞内容物丢失。如果细胞内冰晶形成较多，随冷冻温度 的降

12、低，冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤，而致细胞死 亡。因此，细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分，减少细胞内冰晶的 形成。采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质分子量小，溶解度大，易穿 透细胞，可以使冰点下降，提高细胞膜对水的通透性，且对细胞无明显毒性。慢 速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细胞外，减少胞内形成冰结晶的机会，从而 减少冰晶对细胞的损伤。实验步骤：选择处于对数生长期的细胞，在冻存前一天最好换液。将多个培养瓶中的细胞培 养液去掉，用胰蛋白酶消化。适时去掉胰蛋白酶，加入少量新培养液。用吸管 吸取培养液反复吹打瓶壁上的细胞，使其成为均匀分散的细胞悬液。悬浮生产

13、细 胞则不要消化处理。然后将细胞收集于离心管中离心（1000r/min，10分钟）。加 入冻存管中，再加入1ml配置好的冻存液后放入梯度降温盒，放入-80C冰箱中。1. 紫外消毒30min后关闭紫外灯，开启超净台正常工作状态，用酒精消毒操作 者的双手。2. 培养液，胰酶，二甲基亚砜DMSO，胎牛血清（解冻），梯度降温盒恢复常温， 恒温水浴箱37C预热20min，备用。3. 将所需的培养基，胰酶确保瓶身干净消毒后放于工作台面内，点燃酒精灯， 再将瓶口对准在酒精灯上消毒2-3次，旋开瓶盖后再次分别消毒瓶口和瓶盖，分 别放于酒精灯的两侧。4. 将培养瓶瓶口在酒精灯上消毒2-3次，旋开后分别再次消毒瓶

14、口和瓶盖2-3次， 盖放于酒精灯右侧后将培养瓶内的培养液悬空倒进污缸，在酒精灯消毒2-3次瓶 口，竖直放好。取1ml移液器快速移动在酒精灯上消毒1-2次，然后再装上枪头 吸取胰酶液，悬空移入培养瓶内。5. 将培养皿盖内口朝上放在架子上，将培养皿内的培养液悬空倒进污缸。取1ml 移液器快速移动在酒精灯上消毒1-2次，然后再装上枪头吸取1-2ml胰酶液，悬 空沿皿壁加入培养皿内。6. 将培养皿来回倾倒使胰酶浸没整个皿底的细胞层，计时越1-3min （消化时间 根据细胞不同时间不同），对着灯光可观察到细胞与细胞之间有针孔样缝隙，并 有1-2个细胞脱落，镜下观察到细胞都变圆时为胰酶消化的最适时机。（若

15、看到 成片的细胞从瓶壁脱落为胰酶消化过度；若看不到针孔样缝隙和细胞脱落，或镜 下细胞多有菱角则需继续消化）。用移液器将胰酶吸净。6. 吸取1ml培养基于培养皿，并用移液器吸取少量的培养基轻柔的反复冲洗培 养瓶壁5-8次，使贴壁细胞完全脱落于培养基内再轻轻吹打2-3次，使细胞尽可 能处于单个悬浮状态。7. 将悬浮细胞吸入15ml离心管内，加入4ml培养基离心1000r/min，5min8. 预先配制冻存液：10 % DMSO + 90%。按需要配置一定数量备用9. 弃去培养基，用冻存液进行重悬混匀后，将1ml含有细胞的冻存液移入冻存管 内，拧紧瓶盖，做好实验标记。10. 将培养基，胰酶瓶口和瓶盖

16、消毒2-3次后拧紧，熄灭酒精灯，整理实验台面， 取出实验试剂及污缸等，关闭超净工作台。8,将冻存管先放于4C冰箱30min后拿出放置-20C冰箱过夜，次日再放于-80C 的冰箱内3-4天，最后存放于-196C的液氮灌内长期保存。或直接放入梯度降温 盒内，放入-80C冰箱内过夜后最后存放于液氮罐内。（梯度降温盒内为甲醇， 使用5次需要更换，每次使用需做好标记，使用前需恢复常温）六、细胞转染RNA 干扰(RNA interference, RNAi): 是指在进化过程中高度保守的、由双链RNA(double-stranded RNA，dsRNA) 诱发的、同源mRNA高效特异性降解的现象。基因沉默

17、，主要有转录前水平 的基因沉默(TGS)和转录后水平的基因沉默(PTGS)两类:TGS是指由于DNA修 饰或染色体异染色质化等原因使基因不能正常录； PTGS是启动了细胞质内靶mRNA序列特异性的降解机制。有时转基因会同时 导致TGS和PTGS。由于使用RNAi技术可以特异性剔除或关闭特定基因的表达，(长度超过三 十的dsRNA会引起干扰素毒性)所以该技术已被广泛用于探索基因功能和传 染性疾病及恶性肿瘤的治疗领域。病毒基因、人工转入基因、等外源随机整合到基因组内，并利用宿主细胞进 行转录时，常产生一些dsRNA。对这些dsRNA迅即产生反应。作用机制1) 其胞质中的Dicer将dsRNA切割成

18、多个具有特定长度和结构的小片段RNA(大 约 2123 bp)，即 siRNA。2) siRNA在细胞内RNA的作用下成正义链和，继之由反义siRNA再与体内一些 酶(包括内切酶、解旋酶等)结合形成RNA诱导的沉默复合物(RNA-induced silencing complex， RISC)。3) RISC与外源性基因表达的mRNA的同源区进行特异性结合，RISC具有的功能， 在切割mRNA，切割位点即是与siRNA中互补结合的两端。被切割后的断裂 mRNA随即降解，从而诱发宿主细胞针对这些mRNA的降解反应。4) siRNA不仅能引导RISC切割同源单链mRNA，而且可作为引物与靶RNA结

19、合 并在(RNA-dependent RNA polymerase， RdRP)作用下合成更多新的 dsRNA， 新合成的dsRNA再由Dicer切割产生大量的次级siRNA，从而使RNAi的作用 进一步放大，最终将靶mRNA完全降解。5) RNAi发生于除以外的所有真核生物细胞内。需要说明的是，由于dsRNA抑制 基因表达具有潜在高效性，任何导致正常dsRNA形成的情况都会引起不需要 的相应。所以正常机体内各种基因有效表达有一套严密防止dsRNA形成的机 制。hiiimiiiiiiiimiii(XHl Oil/ ?例所55口陛 mFHNANatijria- RhvIhwk | Qfinade

20、zs脂质体转染原理：1. 脂质体是磷脂分散在水中时形成的脂质双分子层，又称为人工生物膜。最初， 人们只是运用脂质体模拟生物膜，研究膜的构造及功能，从而发现了膜的融 合及内吞作用，因而可用作外源物质进入细胞的载体？2. 阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用将DNA分子包 裹人内，形成DNA 一脂复合体，也能被表面带负电荷的细胞膜吸附，再通 过膜的融合或细胞的内吞作用，偶尔也通过直接渗透作用，将DNA传递进 入细胞，形成包涵体或进入溶酶体其中一小部分DNA能从包涵体内释放， 并进入细胞质中，再进一步进入核内转录、表达DNA转染步骤1. 转染前一天接种细胞于6孔板，X105每孔，2

21、ml无抗生素培养基每孔，第二 天转染时细胞达到90-95%每孔。2. 转染前半小时换Opti-MEM无血清培养基。3. A液：DNA 5ug加入245ul Opti-MEM无血清培养基，轻轻混匀。4. B液：脂质体使用前轻轻混匀，脂质体10ul加入245ul Opti-MEM无血清培 养基，轻轻混匀，室温静止5min。5. B液加入A液，用枪轻轻混匀，室温静止20min。6. 将混合液均匀分散慢慢滴加到6孔板细胞中，边滴加变前后左右十字交叉摇 晃。7. 孵箱37C培养48h（转染时间待定）。8. 第二天看细胞状态来决定是否换液。9. 同时设立细胞对照组，空白转染组。siRNA转染步骤1）转染前

22、一天接种细胞于6孔板（40x104），2ml无抗生素培养基每孔，第二 天转染时细胞达到50-60%每孔。2）转染前半小时换Opti-MEM无血清培养基。3）A液：siRNA 5ul （共100pmol）加入245ul Opti-MEM无血清培养基，轻轻混 匀（siRNA按照说明书稀释）4）B液：脂质体（RNAimax）使用前轻轻混匀，脂质体10ul加入245ul Opti-MEM 无血清培养基，轻轻混匀，室温静止5min。5）B液加入A液，用枪轻轻混匀，室温静止20min。6）将混合液均匀分散慢慢滴加到6孔板细胞中，边滴加变前后左右十字交叉摇 晃。7）孵箱37C培养48h（转染时间待定）。8）

23、第二天看细胞状态来决定是否换液。9）同时设立细胞对照组，空白转染组。使用RNAiMAX和AGS cell用于siRNA在6孔板上进行转染实验1）提前配制GAPDH, NC, NV-FAM及各片段siRNA的20uM的稀释液，取附赠 的DEPC水至管内，打开离心管前先离心，将附在管壁上的冻干粉离心下来2）溶解时滴加适量的DEPC水后盖上管盖，震荡溶解：NC，NC-FAM溶解加入 水，其他siRNA片段加入125ul DEPC水3）取6只EP管，分别标记GAPDH，NC，NV-FAM，三个片段名称，从管内吸取 20ul的稀释液分装后4）将稀释液至于-80度冰箱保存。 转染前一天，在6孔板上接种40

24、X104AGS cell，再取一个35mm培养皿接种 40X104AGS cell，每孔放2ml不含抗生素的生长培养基。使细胞在转染的时候 有50-60%的融合率从细胞中除去生长培养基每个孔中加入新鲜不含血清的培养基，并准备如下混合物1）A液：（取7个EP管，分别标记空白，GAPDH，NC,NC-FAM,三个片段）。在250ul 的 opti-mem 终加入 100pmol siRNA （稀释好的 siRNA 浓度为 20uM，100pmol 的siRNA需要取5ul），混合均匀2）B 液：（取一个 EP 管标记 RNAiMAX），RNAiMAX 使用前摇匀，在 250ul =1800ul 的opti-mem加入6ul =的RNAiMAX，稀释RNAiMAX混匀后并在室温下温育 5min3）混合A液和B液，混匀B液后吸取256ul至A液中室温下温育20min 将混合物混匀后加入到含AGS的6孔板与35mm培养皿中，每孔终体积为 2ml，则加入混合液500ul，并轻摇混匀在37C的二氧化碳培养箱中培养5-6小时更换含血清的培养基并培养细胞24-48小时24-48小时后收细胞跑WB，看沉默效果