《分子生物学》课件-分子生物第六章.ppt
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1、第六章 分子生物学技术,内容,1、核酸提取与鉴定 2、印迹杂交技术3、聚合酶链反应 4、重组DNA技术 5、转基因技术与基因打靶,核酸提取与鉴定,研究对象:基因组DNA、质粒DNA、总RNA、mRNA等,第一节 核酸提取,总原则:保证核酸一级结构的完整性避免杂质污染,核酸提取的主要步骤:,破碎细胞,提取,纯化,I.材料准备II.破碎细胞或包膜内容物释放III.核酸分离、纯化IV.沉淀或吸附核酸,并去除杂质V.核酸溶解在适量缓冲液或水中,核酸提取过程,一、质粒DNA,质粒(Plasmid)是游离于细菌(及个别真核细胞)染色体DNA之外、能自主复制的遗传物质多数是一种闭环DNA,大小为1-300k
2、b,能够转化细菌,是基因载体提取质粒DNA包括三个基本步骤,1培养细菌和扩增质粒,在培养基中加入抑制剂(例如氯霉素)可以抑制细菌的蛋白质合成,从而抑制细胞分裂,而质粒DNA会继续复制,拷贝数可达3000个,这一过程称为质粒扩增如果要扩增的质粒DNA携带氯霉素抗性基因(CmR),可以用壮观霉素替代氯霉素,2收获和裂解细菌,机械法:超声波、玻璃珠等(易引起DNA断裂)化学试剂法:十二烷基硫酸钠(SDS)等(单用难以充分裂解)溶菌酶-化学试剂联合法:先用溶菌酶消化,再用化学试剂处理(最常用),3分离纯化质粒,关键:除去染色体DNA质粒DNA特性:相对较小(仅为染色体DNA的0.1%-2%)闭环(染色
3、体DNA大量断裂并且呈线性结构)提取方法:氯化铯密度梯度分离法、碱裂解法、煮沸裂解法等,(1)氯化铯密度梯度分离法,EB分子可嵌入相邻碱基对之间,使DNA解旋开环DNA或线性DNA存在游离末端易于解旋,可结合大量EB,DNA-EB复合物含EB越多,密度越小闭环质粒DNA没有游离末端,不易解旋,结合少量EB,密度较大在饱和EB条件下,质粒DNA密度比断裂染色体DNA密度大,经氯化铯密度梯度离心,可分离提取质粒DNA,(2)碱裂解法(快速提取质粒DNA,收获率高),溶液I(50mmol/L葡萄糖,25mmol/L Tris-HCl,10mmol/L EDTA,Ph=80)使菌悬浮EDTA整合Mg2
4、+、Ca2+以抑制脱氧核糖核酸酶(DNase)的活性溶液II(200mmol/L NaOH,1%SDS,pH=125):裂解细菌使蛋白质、染色体DNA和质粒DNA变性溶液III(3mol/L醋酸钾,2mol/L醋酸,pH=48)使变性蛋白质与染色体DNA共沉淀闭环质粒DNA复性,留在上清液中通过离心分离提取,(3)煮沸裂解法,以溶菌酶、Triton裂解细菌,然后以沸水浴加热,不仅促进细菌裂解,还可以使蛋白质和染色体DNA、质粒DNA变性当降低温度时,闭环质粒DNA复性留在上清液中,而染色体DNA保持与细胞膜碎片结合、沉淀,可以通过离心除去在离心上清液中加入有机溶剂(例如异丙醇)便得到质粒DNA
5、粗品沉淀,二、真核生物基因组DNA,液氮冷冻组织材料,将其研成细粉用EDTA(蟹合Ca/Mg,抑制DNase活性)、去污剂(SDS能溶解膜蛋白和膜脂,裂解细胞膜和核膜,使膜脂、蛋白质与DNA分离)和蛋白酶K(丝氨酸蛋白酶,水解由脂肪族、芳香族氨基酸的竣基形成的肽键)共同裂解细胞用苯酚、氯仿/异戊醇等抽提除去蛋白质(氯仿可以除去DNA溶液中微量酚的污染,异戊醇可以防止蛋白质变性操作过程中产生气泡)经乙醇沉淀进一步纯化,可获得100-200kb的DNA片段,三、真核生物RNA,最关键的是抑制RNA酶的活性(RNase无处不在,稳定并且耐高温),提取RNA所用器皿的处理及溶液的准备,塑料制品:使用灭
6、菌的一次性用品。或用0.1%二乙基焦碳酸盐(DEPC)水浸泡或用氯仿冲洗(注意:有机玻璃器具因可被氯仿腐蚀,故不能使用氯仿处理)玻璃用品:使用前于180的高温下干烤6h以上,或在250下干烤3h以上有机玻璃的电泳槽等,可先用去污剂洗涤,双蒸水冲洗,乙醇干燥,再用3H2O2室温浸泡10min,然后用0.1DEPC水冲洗,晾干,(一)总RNA提取,1、异硫氰酸胍-氯化铯密度梯度分离法利用异硫氰酸胍变性蛋白质,抑制RNase的活性,再进行密度梯度离心,能够获得高纯度的总RNA适合于从冷冻时间长、细胞核不易分离及富含RNase的组织细胞内提取RNA不适合于一般实验室应用(一次提取量有限,操作过程复杂费
7、时,需要进行密度梯度离心),2、异硫氰酸胍-酚氯仿法,以含4mmol/L异硫氰酸胍与01mmol/L巯基乙醇的溶液裂解细胞在pH=40的条件下用酚/氯仿抽提裂解溶液最后通过异丙醇沉淀与75%的乙醇洗涤来制备RNA比1法简便、经济和高效,能同时处理多个标本,且RNA的完整性和纯度都很高,3、氯化锂-尿素法,利用高浓度尿素变性蛋白质同时抑制RNA酶,氯化锂选择性沉淀RNA缺点:存在DNA污染,氯化锂沉淀RNA会丢失一些小分子RNA,如5sRNA等优点:快速、简便、产量高,尤其适用于大量样品少量组织细胞的RNA提取,4热酚法,将异硫氰酸胍、巯基乙醇和SDS等联合使用,可以快速裂解细胞,解离核蛋白复合
8、物,释放RNA,并有效抑制RNase的活性用苯酚(65)、氯仿等有机溶剂抽提,离心除去蛋白质和DNA,留在水相中的RNA可以用乙醇或异丙醇反复沉淀、纯化该方法操作简便,成本较低,适合于从培养细胞和动物组织中提取RNA,(二)mRNA提取,四、核酸纯度鉴定,(一)核酸浓度检测DNA和RNA在波长260nm处有很高的吸收峰值,用标准样品测得在波长260nm处,A2601时,样品中双链DNA浓度为50 g/ml,单链DNA或RNA浓度为40 g/ml,或相当于20g/ml寡核苷酸DNA(g/l)=A26050稀释倍数/1000RNA(g/l)=A26040稀释倍数/1000,根据A260/A280,
9、A260/A230的比值判断核酸样品的纯度1纯度较高的DNA,A260/A2801.8 18,说明可能含有RNA,或DNA部分降解18,说明可能含有苯酚或蛋白质等2纯度较高的RNA,18,说明可能含有蛋白质等 20,说明可能有RNA降解3纯度较高的核酸,A260/A23020如果比值太小,说明可能含有蛋白质、肽、苯酚或异硫氰酸盐等,(二)核酸纯度检测,第二节 核酸电泳,根据电泳支持介质分:琼脂糖凝胶电泳:多用于鉴定较大核酸片段(0.160kb),特别是分子量测定聚丙烯酰胺凝胶电泳:用于分析RNA或Mr小于1000bp的DNA片段,特别是DNA测序,一、琼脂糖凝胶电泳,考虑因素:1凝胶浓度大的D
10、NA片段要用低浓度的琼脂糖凝胶。2DNA大小迁移率与分子量的对数值呈线性关系3DNA构型(大小相同而构型不同的DNA)质粒DNA存在三种构型(迁移率不一样,IIIIII)I型:闭环DNA(cccDNA),所含的两股DNA均成环II型:开环DNA(ocDNA),一股成环,另一股开链III型:线性DNA(LDNA),两股DNA均开链,用途,可以间接分析DNA样品的含量和分子量:荧光强度与DNA含量成正比(与已知含量和分子量的参照DNA平行电泳)可以分析DNA样品纯度:蛋白质与DNA结合,在加样孔内形成荧光亮点;RNA则在DNA区带前方形成云雾状亮带可以分析RNA:控制变性条件是分析RNA的关键确定
11、RNA在进行变性凝胶电泳过程中是否发生降解:用28S(约4700nt)和18S(约1900nt)两种rRNA作为参照:两条区带的亮度比值应为28S:18S=2:1,large,moderate,small,基因组DNA抽提结果电泳图,总RNA抽提结果电泳图,mRNA,琼脂糖凝胶电泳装置,二、聚丙烯酰胺凝胶电泳,聚丙烯酰胺凝胶电泳简称为PAGE,是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质聚丙烯酰胺凝胶是由单体的丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺聚合而成,这一聚合过程需要有自由基催化完成常用的催化聚合方法有两种:化学聚合和光聚合。化学聚合通常是加入催化剂过硫酸铵(AP)以及加速剂四甲基乙二胺(TEMED),四甲基乙二胺
12、催化过硫酸铵产生自由基。凝胶孔径大小由聚合链的长度及交联度所决定,聚丙烯酰胺凝胶电泳检测核酸非变性电泳聚丙烯酰胺凝胶用于分离纯化双链DNA片段变性聚丙烯酰胺凝胶用于分离和纯化单链DNA片段的。其转载DNA样品量也比琼脂糖凝胶大,分辨力也高于琼脂糖凝胶电泳,相差1bp的DNA片段也能分开,但其操作复杂。,聚丙烯酰胺凝胶,聚丙烯酰胺凝胶制胶装置,第三节 DNA测序,Sanger双脱氧链终止法和Maxam-Gilbert化学降解法都是用待测序DNA制备四组标识DNA片段,每组片段具有以下特征:5端序列相同,3端序列不同3端所对应的碱基相同,因而分析该组片段的长度可以确定这种碱基在待测序DNA链中的位
13、置一种碱基在待测序DNA链中有多少个,相应片段组所含的DNA片段就有多少种,所以在待测序DNA链中的这种碱基全都可以定位分析四组DNA片段的长度,一、Sanger双脱氧链终止法,二、Maxam-Gilbert化学降解法,三、DNA测序自动化,思考题,1、提取质粒DNA包括哪三个基本步骤?2、如何用紫外吸收法分析核酸浓度和纯度3、核酸电泳的种类(根据电泳支持介质分)及各自特点4、DNA测序的两种基本方法及共同步骤,Sanger双脱氧链终止法的关键试剂,印迹杂交技术,分子生物学常用的分析技术之一,DNA印迹法、RNA印迹法和蛋白质印迹法(免疫印迹法),第一节 核酸分子杂交,核酸杂交技术是在DNA变
14、性和复性原理的基础上建立起来的一种分子生物学技术,一、变性(denaturation),在某些理化因素的作用下,维系核酸二级结构的氢键和碱基堆积力受到破坏,DNA双螺旋结构松散,变成单链的过程称为核酸的变性核酸双螺旋区的氢键断裂,变成单链,但并不涉及共价键的断裂,DNA解链曲线,DNA变性的本质是氢键的断裂,核酸的变性因素,变性方法热变性、酸碱变性、化学变性剂(乙醇、尿素和甲酰胺)增色效应(hyperchromic effect)由于DNA变性而引起的光吸收增加的现象,使双链DNA解链度达到50%所需的温度称为解链温度(Tm)、变性温度、熔点 DNA的解链温度一般在82-95,与DNA的分子大
15、小和碱基组成、溶液的pH值和离子强度(+)等有关,二、复性,DNA复性:缓慢降温可以使热变性DNA重新形成互补双链结构DNA的最适复性温度通常比解链温度低20-25复性导致DNA的紫外吸收降低,称为减色效应 检测DNA紫外吸收的变化可以分析其变性和复性,不是简单的逆变性过程,受多种因素影响:,DNA浓度越高,两股互补链相遇的可能性就越大,因而复性越快序列简单的DNA(例如重复序列)复性快,序列复杂的DNA(例如单一序列)复性慢,因而可以通过测定复性速度分析DNA序列的复杂性DNA片段越大,寻找完全互补序列的难度就越大,因而复性越慢DNA溶液的离子强度越高,两股互补链重新结合的速度就越快,因而复
16、性越快,三、杂交与核酸分子杂交技术,杂交定义不同来源的、序列互补的单链RNA、DNA,或DNA和RNA,根据碱基互补原则,借助氢键连接为双链分子的过程。核酸杂交类型单链DNA与单链DNA杂交(DNA-DNA)单链DNA与单链RNA杂交(DNA-RNA)单链RNA与单链RNA杂交(RNA-RNA),核酸分子杂交技术,定义:将已知序列的单链核酸片段进行标记后,再与另一种未知序列的待测核酸样品进行杂交,从中鉴定互补序列,以分析该样品中是否存在特定基因序列、基因序列是否存在变异,或研究目的基因的表达情况探针(Probe):是带有标记物且序列已知、用于鉴定互补序列的单链核酸片段,根据杂交体系的不同,核酸
17、分子杂交可以分为:,1、液相杂交:待测核酸和标记的探针都游离于溶液中,在一定条件下进行杂交优点:速度快、效率高,操作简便缺点:难以有效避免待测核酸的复性 杂交之后也不易将未杂交的多余探针完全除去,误差较大2、固相杂交:将待测核酸先固定在固相支持物上,然后与溶液中的游离探针进行杂交,形成的杂交体结合在固相支持物上优点:既可以避免待测核酸的复性,又可以通过漂洗除去末杂交的多余探针,而且结合在固相支持物上的杂交体的检测也很方便印迹杂交技术中的核酸分子杂交就是以固相杂交为基础的,第二节 探针与标记,合适的探针具备以下条件:具有高度特异性,只与待测核酸杂交。因此,通常首选编码序列制备探针为单链核酸,用双
18、链核酸制备的探针使用前要先变性解链带有标记物,标记物灵敏度高而稳定,检测方便,一、探针种类,1基因组DNA探针(最常用的DNA探针)多为某一基因的全部序列或部分序列2RNA探针杂交效率高、稳定性高、敏感性和均一性强非特异性杂交较少、低本底 3cDNA探针 不含内含子等非编码序列,特异性高,研究基因表达不易制备4寡核苷酸探针 根据已知核酸序列人工合成的DNA探针;分析点突变5锁式探针 一种特别设计的DNA探针,中间为连接序列6实时定量PCR探针,二、探针标记物,(一)放射性同位素标记物(32P、2H和32S)极高的灵敏度和特异性放射性污染,半衰期短,昂贵(二)非放射性标记物(生物素、地高辛和荧光
19、素等)实验周期短;稳定性好,标记探针可以长时间存放备用;无放射性污染灵敏度和特异性有时不理想,三、探针标记法,1、体内标记:将放射性化合物加入培养基,由细胞吸收之后经过合成代谢掺入新合成的核酸分子2、体外标记(最常用):化学法和酶促法化学法:利用标记物分子上的活性基团与探针分子上的基团进行交联,将标记物直接结合到探针分子上。简便快速、标记均匀酶促法:先用标记物标记核苷酸,再通过酶促反应将标记核苷酸掺入探针分子,或将标记基团从核苷酸转移到探针分子,(一)切口平移标记法,(二)随机引物标记法,末端标记法,(三)聚合酶链反应标记法一种标记dNTP和三种普通dNTP为底物,短链探针(四)末端标记法T4
20、多核苷酸激酶、末端转移酶、Klenow片段和T4 DNA聚合酶,四、探针纯化,1乙醇沉淀法 DNA片段可以被无水乙醇沉淀操作简便,首选方法2凝胶过滤法 利用凝胶的分子筛特性凝胶填料是Sephadex G-50和Bio-Gel P-60,第三节 固相支持物与印迹,一、固相支持物:硝酸纤维素膜、尼龙膜、聚偏乙烯二氟(PVDF)膜和活化滤纸1硝酸纤维素膜 结合量大、本底较低、操作简便结合力不强,碱性、真空烘烤破裂变脆2尼龙膜 韧性较强,不易破裂中性尼龙膜和正电荷修饰尼龙膜,二、印迹方法,第四节 常用核酸印迹杂交技术,常用的核酸分子杂交技术多为固相杂交根据操作方法的不同分为印迹杂交:将凝胶电泳的高分辨
21、率与核酸分子杂交的高灵敏度相结合,包括DNA印迹法和RNA印迹法等原位杂交:包括组织原位杂交法及菌落杂交法、噬菌斑杂交法等,核酸分子杂交(固相杂交)操作程序,制备待测核酸样品,分离、变性、转移、固化DNA片段,杂交,加入标记核酸探针,检测杂交信号,标记核酸探针,预杂交,制备核酸探针,漂洗去除未参与杂交的标记探针,一、DNA印迹法,1.样品制备;2.电泳分离;3.变性;4印迹;5固定;6预杂交;7.杂交;8洗膜;9分析,放射自显影照片,二、RNA印迹法,RNA印迹法分析的待测核酸是RNA与DNA印迹法基本一致,所不同的是:为了保持RNA呈单链状态进行电泳,以使RNA按分子大小分离,需要先用变性剂
22、将RNA样品完全变性,再电泳分离 RNA样品只能用甲醛、乙二醛、二甲基亚砜(DMSO)等变性,不能用碱变性,因为碱会导致RNA降解。RNA印迹法可以用于定性或定量分析组织细胞内的总RNA或某一特定RNA,特别是分析mRNA的大小和含量,从而研究基因表达。避免RNase污染,包括抑制内源性RNase的活性,三、斑点杂交法和狭缝杂交法,将粗制或纯化的DNA或RNA样品变性之后直接点于固相膜表面,经过固定、预杂交之后与过量探针进行杂交分析印迹:圆斑(dot),短线(slot)用于检测DNA样品的同源性、细胞内特定基因的拷贝数和基因表达情况优点:用样量少,操作简便,不电泳和转移,在同一张固相膜上可以分
23、析多个样品缺点:特异性不高,不能分析样品的分子量,斑点杂交和狭缝杂交,制备样品点样固定(可用斑点杂交仪或直接点样)优点:简便、快速、灵敏、样本用量少缺点:特异性不高,有一定比例的假阳性,四、组织原位杂交(in situ hybridization),把组织切片进行适当处理,增加细胞膜的通透性,然后置于含探针的杂交液中,使探针进入细胞内,与DNA或RNA杂交以cDNA为探针检测与其互补的mRNA在细菌或其他真核细胞中的位置,称为RNA原位杂交,是分析基因表达的常用方法不需提取核酸,保持组织和细胞的形态,分析待测核酸的组织、细胞、亚细胞甚至染色体定位分析特定基因表达情况、病原体的存在部位和方式荧光
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