BD FACSCalibur流式细胞仪操作手册.docx
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1、BD FACSCalibur流式细胞仪FACS101 Handbook本课程介绍表面抗原流式分析有关之基础工作原理。如希望进一步了解流式细胞技术应用,请至本公司网站订阅 FACSinformation 电子报.tw/bdb/index.html如需要本课程手册,欢迎至本公司网站下载.tw/bdb/10-5-3-1.html如需要免疫荧光染色方法,请至本公司网站下载.tw/bdb/10-5-4-1.html一、BD FACSCalibur 基本结构1.1仪器本体:1.电源开关:在BD FACSCalibur仪器右侧下方,先启动仪器本体,再打开计算机。鲜流粮液流糜液2.光学系统:BD FACSCa
2、libur基本配有一支波长488 nm的氩离子雷射以BD FACSCalibur基本型为例 FSC Diode SSC PMT FL1 PMT FL2 PMT FL3 PMT只收488 nm波长散射光只收488 nm波长散射光荧光光谱峰值落在绿色范围(波长515-545 nm)荧光光谱峰值落在橙红色范围(波长564-606 nm)荧光光谱峰值落在深红色范围(波长650 nm)FACScan FACS Cali bur5FTluHtd站-L配和山ls.gr iw.rtartivt3. 仪器面板:仪器前方面板的右下方有三个流速控制键、及三个功能控制键。流谏控制:LO: 样品流速:12四1 /min
3、MED:样品流速:35四1 /minHI:样品流速:60四1 /min功能控制: RUN:此时上样管加压,使细胞悬液从进样针进入流动室。(正常显示绿 色;黄色时表示仪器不正常,请检查是否失压。) STANDBY:无样品或暖机时之正常位置,此时鞘液停止流动,雷射功率 自动降低。 PRIME :去除流动室中的气泡,流动室施以反向压力,将液流从流动室冲 入样品管,持续一定时间后,以鞘液回注满流动室。PRIME结束,仪器 恢复STANDBY状态。4, 储液箱抽屉:在主机左下方之储液箱抽屉。可向前拉开,内含鞘流液筒、废液筒、鞘液过滤 器Sheath Filter,及空气滤网Air filter。请注意气
4、路减压阀VENT TOGGLE之位鞘液筒:位于抽屉左侧,容积4升。装八分满鞘液筒,仪器可以运行大约3 小时。筒上装有液面感应器,鞘液用完时,仪器软件上会有显示。鞘液筒盖 上有金属环扣,保证鞘液筒密闭。废液筒:位于抽屉右侧,容积4升。筒上装有液面感应器,废液盛满时,仪 器软件上会有显示。注意废液可能有潜在的生物传染性。鞘液过滤器:0.22jim过滤器,去除鞘液中的杂质,保证进入流动室的鞘液 是干净的。气路减压阀:沿箭头方向移动阀门开关,鞘液筒减压,气压恢复正常。在鞘 液筒添加鞘液时,需要减压。 空气过滤网:用于过滤冷却雷射的空气。5. 上样品区:上样品区是样本管的上样位置。它包括三个部 分,一个
5、是进样针 Sample Injection Tube,将 样本输入流动室,还有就是支撑架Tube Support Arm、和液滴存留系统Droplet Containment System o进样针:是一根不锈钢管,将细胞从样本针中吸入流动室。进样管外有一套 管,是液滴保留系统的一部分。支撑架:用于支撑样本管、并负责启动液滴存留系统。支撑架有三个位置: 位于样本管之下的中位,样本管左侧或右侧。Bftl Seal上谏管液滴存留系统:系统由支撑架、真空帮浦和外套管组 成。当支撑架位于左侧或右侧位置时,真空帮浦就会启 动,将液体从外管吸入废液筒内。上样时,须注意将支 撑架位于中位,以避免过多样品被抽
6、吸到废液筒内(当 支撑架位于中位,真空帮浦停止工作)。更换样品时, 让仪器保持RUN的模式,使得进样针可以反冲;切换到 STANDBY模式前,确保液路已冲洗彻底以免碎片沈积到 流动室中。1.2 Macintosh计算机与打印机:准备您的细胞样品1. 理想样品浓度调至1-10 X 105 cells/ml? 一般实验只需0.5 ml的样品。2. 细胞样品务必放至BD FALCON 352052试管中,否则无法上机。3. 上机前务必去除样品中之细胞团块,以防止管路堵塞?可使用附滤网BD FALCON 试管(Cat. No.352235)或 35-55 |im 的尼龙筛网。4. 供流式分析的样品是单
7、细胞悬浮液,而且大部分样品都需经荧光染色。表面抗原 荧光染色的方法大致有两种:直接免疫荧光、间接免疫荧光染色。研究生可至本 公司网站下载染色方法 .tw/bdb/10-5-4-1.html直接免疫荧光染色 Lysed - No - Wash Procedure Lysed - And - Wash Procedure, SimulTEST & HLA-B27 Peripheral Blood Mononuclear Cell Procedure Leukemia and Lymphoma Procedure 1 Leukemia and Lymphoma Procedure 2, B-cell
8、 Clonality Assay间接免疫荧光染色滴定抗体浓度常用试剂5. 如因特殊因素无法下载上述实验方法,请e-mail: Jw或.tw。二、开机、关机标准操作2.1 FACS Calibur 开机1. 开启细胞仪电源。2. 开启其它周边配备电源,如打印机及MO机。3. 开启计算机。4. 确认鞘流液筒有八分满的FACS Flow,确实旋紧(鞘液筒容量为4L)。5. 将废液倒掉,并在废液筒中加入200 ml家用漂白水(废液筒容量为4L)。6. 将减压阀方向调在加压(Pressurize)位置。7. 排除液流管路与过滤器中的气泡。8. 取下样品管,执行PRIME功能两次。9. 使用 1ml PB
9、S,HIGH RUN 两分钟。10. 可开始分析样品。2.2 FACS Calibur 关机关机前必要动作:清洗进样管和外套管,防止进样管堵塞、或有染料残留。1. 将样品支持架左移,取2 ml FACSClean(10%Bleach)上样品,让仪器的真 空系统抽取约1 ml的液体。2. 将样品支持架回正,按HI RUN,然后让FACSClean清洗管路10分钟。3. 按Standby,取下样品管,执行PRIME功能两次。4. 取2 ml dH2O,重复上述步骤1-3。5. 注意最后只留约1 ml dH2O在试管中。6. 按STANDBY五分钟,使风扇冷却雷射后,关闭细胞仪(必要动作,以保护 雷
10、射光源。)7. 倒掉废液,并回填200 ml漂白水。8. 将减压阀放在VENT漏气位置。将鞘流液筒充填至八分满。9. 退出软件“ File” 土 “Quit”(如有对话选项,选择“ Dont sa能)。确认退出 计算机中所有BD应用软件,所有数据数据已储存备份。10. 关闭计算机。“Special” 9 Shutdown”。三、上机分析流程建议首次试机避免进行大量试验,仅需准备下列样品。(1)Negative Control (不加任何抗体)。(2)CD3-FITC(FL1 单染)。(3)CD19-PE(FL2 单染)。(4)CD3-FITC /CD19-PE(FL1/FL2 双染)。3.1
11、Calibur 开机1. 先开启细胞仪本体再打开计算机。*秘技1:如顺序相反,仪器和计算机之间无 法建立正常通讯,无法执行“connect to cytometer ”解决之道,两者都关机、 然后以正确方式重开。2. 向前拉开储液箱抽屉,检查鞘液筒、废液筒水量,如需充填鞘液,将减压阀方向调在VENT位置(箭头方向)。3. 仪器会对鞘流液筒打气加压,请确认筒盖确实旋紧。*秘技2:将减压阀方向调 在加压(向前)位置。减压阀如在VENT (箭头方向)位置,按RUN功能键时 将显示橙黄色(表示仪器不正常,请检查是否失压),正常为绿色显示。3.2开启CellQuest软件、编辑实验文件4.在苹果菜单下点
12、击CELLQuest启动软件。桌面会出现一Untitled实验文件,可 点击实验文件的右上角的放大钮,将实验文件窗口放大。J :ItJ原T卢笄r- +L_ J.:+L?i- 1r- +KA曰5.从工具板中点击散点图图示。在实验文件的空白区点击,拖曳对角线至适当大 小,然后放开鼠标。出现散点图对话方框。Fl I土| Acquisition 由rfBlysi FHX Psrameter:| pl 256Plot SOUrce:I* AnalyaLa Select File| Psrameter:| f2256Gate:! H: Gate:|6.在出现的散点图对话方框中点击Plot Source,选
13、择Acquisition (收取),确认X 和Y轴参数预设为FSC-H 1024、SSC-H 1024。在颜色方框中点击Multicolor Gating (收取样品时,门内细胞将出现颜色)。点击OK。此时实验文件会出现 FSC/SSC散点图。7. 说明:散点图(Dotplot),又称二维散点图是流式分析最常用图谱,它可以显 示两个独立参数的相互关系。在图中,横坐标X轴为为荧光1强度的相对值, 单位是道数,纵坐标Y轴则通常表示荧光2或光散射强度的相对值。仪器使用 者可因应实验需求来修改所有图谱中显示之参数。第一图X和Y轴参数分别设 为FSC-H 1024、SSC-H 1024;第二图X和Y轴参
14、数分别设为FL1-H 1024、 FL2-H 1024。修改动作为轻击图谱上X和Y轴参数,并依需要选择之(FSC: 细胞大小,SSC:细胞折射率,FL1: FITC绿色荧光,FL2: PE橙色荧光, FL3: PerCP红色荧光)。8.从屏幕上方Plots菜单中选择Dot Plot功能,可复制一个同样大小的散点图,在 出现的对话方框内选择X轴:FL1-H 1024, Y轴:FL2-H 1024。点击OK, FL1/FL2的散点图出现。完成后可将重制图移至原图右方。9.在工具板中选择四象限工具,在FL1/FL2散点图上拖动Quadrant的中心将它设 定在(X,y) = (101, 101 )处
15、,这些象限将指定阴性/阳性区域。建立仪器和计算机之间通讯10. 从 Acquire 菜单中选择 Connect to Cytometer,此时会出现 Acquisition Control 对话方框。如果无法选择Connect to Cytometer,参考秘技#1。如果没见到 Acquisition Control对话,可到屏幕上方Windows菜单中选择ShowAcquisition Control。仪器设置文件注意:实验数据质量,取决于最适化仪器设定文件。仪器设定文件不能在数据收取后再更改,研究人员必须在第一次就使用正确的仪器设定文件。仪器设定文件(Instrument settings
16、),含信号器高压(Detector/Amps),阈值(Threshold),荧光补偿(Compensation)等仪器条件的组合。一般而言,仪器 设定的顺序为 Detector/Amps - Threshold - Compensation。11.检查现有仪器条件,从Cytometer菜单中选择Detectors/Amps。出现 Detectors/Amps 窗口。在 Detectors/Amps 窗 口确认 FSC 与 SSC 为 LIN (线 性放大),其它FL1-3为LOG (对数放大),将其 拖至空白区。Plti姑 RCy tomstBrDetectars/HmpsThreshrId
17、HCompensatian StatusInstrument Setting:Sort CountersTime-DelayC ali bratJ; HHH :; Dettbrs/Amps 壬壬三三泌壬* 壬切ZTParam Detector Taltaje amt Gam HideP1 F3C E(JQ 三 J2 3 4 5 p p p po o o o5 0 5 53 6 5 6o o o o .0.0.0.0混 FL2-AP7 FL2-WITl-fl-*ffl#*gl#*-ffl#*-ffl#t.ff廿ftLin *Lin *1Lin *SecondaryLinPrimary.Pa ra
18、m:.FSC-HO 5SC-HO fli-hO FL2-HO FL3-HQi SSC-HQFL1-HFL2-H DM Purain: FLWO FL3-HO FL4-H Hone12. 从 Cytometer 菜单中选择 Threshold,出现 Threshold 窗口在 Threshold 窗 口:确认FSC为设阈参数,初步确认预设阈值52。将其拖至空白区。13. 从Cytometer菜单中选择Compensation,确认所有预设数值皆为零。将其拖 至空白区。3.3上样品、设置仪器14. 使仪器处于High RUN,支撑架左移,上阴性对照管样品,支撑架回位。确认 Acquisition
19、Control窗口中 Setup前需打叉或打勾(即不储存数据),点击 Acquire。调节FSC/SSC探测器(电压)15. 观察FSC/SSC图的变化。FSC电压(Voltage)预设为E00,可调节Amp Gain 从1.00-9.99使主要细胞群得以清楚显示(如细胞较大,将FSC电压设置于 E-1;较小细胞,将FSC电压设置于E01)。调节SSC电压使主要细胞群得以 清楚呈现。调节FSC/SSC图的原则,在于能得到一独立离散的细胞族群,该 细胞群不与其它族群、细胞碎片有重迭现象。调整定位后,点击Acquisition Control 窗口中的 Pause。Gating圈选细胞检品中,常含
20、有大小不同、性质相异的细胞群体。我们常用前方散射与侧方散射 的二维位图,即散射光图谱(Scatter Plot),来圈选出不同细胞群的范围,选择性显 示出有意义的细胞群体,如下图圈选白血球之淋巴细胞族群。16.在工具板中选择多边形的Region,在FSC/SSC散点图上划定淋巴细胞R1区域(如下图)。分析样品时,区域内细胞应会呈现成红色,可移动或改变形状来圈选 有意义的细胞。如果要删除R1区域,您可以在工具列中点选Gates - Region list,以鼠标点选R1,再按Delete键删除R1区域。删除R1区域 后,可用绘图工具板,重画R1。罩核球200 wlten1000ri| of ai
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