最新H5N1亚型禽流感病毒感染性克隆的构建PPT文档.ppt
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1、汇报提纲:,文献综述 RNA干扰对A型流感病毒基因表达及病毒复制 的抑制作用的研究 H5N1亚型禽流感病毒A/chicken/Hubei/327/2004 全基因组克隆、测序及其感染性克隆的构建,1 文献综述,文献综述,禽流感的发生与流行,文献综述,禽流感(Avian Influenza,AI),是由A型流感病毒引起的一种禽类的烈性传染性疾病或疾病综合征。1878年,首次在意大利发现了禽流感的流行。高致病性禽流感(Highly Pathogenic Avian Influenza,HPAI)是由A型流感病毒中H5、H7亚型流感病毒引起,目前已经呈世界性分布,全世界50多个国家和地区(OIE数据
2、)报道了高致病性禽流感的发生和流行。我国自1996年首次报道分离到H5N1亚型高致病性禽流感病毒之后,其流行一直呈上升趋势。,世界上高致病性禽流感感染人的发病与死亡情况(截至2006-6-03),文献综述,1995年康奈尔大学Guo Su博士试图(1995)用反义RNA 去阻断秀丽新小杆线虫(C.elegans)中的par1 基因的表达时,意外发现给对照实验组线虫注射正义RNA,不但不增加该基因的表达,反而产生与反义RNA同样的结果。1998年2月,华盛顿卡耐基研究院的Fire博士和马萨诸塞大学癌症中心的Mello博士才证实Guo Su博士发现的正义RNA 抑制基因表达的现象是由于体外转录的R
3、NA中污染了少量双链RNA 而引起。,RNA干扰的历史研究和发现过程,文献综述,Fire和Mello实验表明在线虫消化道中注入双链RNA不但可以阻断整个线虫的同源基因表达,还会导致其子一代的同源基因沉默。他们将这一现象首次称为RNA 干扰(RNA interference,RNAi)。RNA干扰现象随后在昆虫、锥虫、果蝇、涡虫、斑马鱼、真菌、植物拟南芥等生物及哺乳动物细胞株中也分别被发现。,RNA干扰的历史研究和发现过程,文献综述,RNA干扰的基本原理,文献综述,ATP、RNA解旋酶,通过作用于病毒特定基因的siRNA抑制病毒在细胞内的复制,siRNA可作用于细胞中病毒靶受体以干扰病毒的侵染,
4、期望达到治疗病毒性疾病的目标。RNA干扰技术已经在多种病毒研究中得到了成功的应用:人类免疫缺陷病毒型、乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、甲型流感病毒、口蹄疫病毒、西尼罗病毒和SARS冠状病毒等。,RNAi在病毒研究中的应用,文献综述,病毒的感染性克隆其实就是模拟病毒复制、转录等病毒生命周期,人工构建病毒的过程。病毒的感染性克隆也称为病毒的反向遗传操作技术(Reverse Genetic Manipulaton)。,病毒的感染性克隆,文献综述,反向遗传学及其操作技术,反向遗传学是直接从生物的遗传物质入手来阐述生物生命发生的本质现象,与之相关的各种技术统称为反向遗传学操作技术。病毒反向遗传操作技术解决了
5、对RNA 病毒基因组难以操作这一困扰研究者多年的难题,开创了病毒研究的新时代。,文献综述,禽流感病毒的复制,以辅助流感病毒为基础的反向遗传操作系统核糖核蛋白转染法RNA聚合酶方法完全以克隆的cDNA为基础的反向遗传操作系统RNA聚合酶系统:17质粒系统RNA聚合酶系统:12质粒系统双向RNA聚合酶/转录系统:8质粒系统,流感病毒反向遗传操作技术的发展历程,以辅助流感病毒为基础的反向遗传操作系统,核糖核蛋白转染法:采用T7 RNA聚合酶体外转录系统,NS-CAT-NS,体外转录 RNA聚合酶方法:RNA聚合酶I(pol I)启动子代替T7 RNA聚合酶启动子,完全以克隆的cDNA为基础的反向遗传
6、操作系统,17质粒系统,12质粒系统,2000年,Hoffmann等建立了RNA聚合酶/系统,vRNA和mRNA的合成来自于一个模板,不需要构建专门的蛋白表达质粒,为拯救病毒而构建的质粒数将大大减少。这一系统采用共培养的293T细胞和MDCK细胞,8质粒转染细胞后,RNA聚合酶转录产生负链vRNA,RNA聚合酶合成正链mRNA。转染的293T细胞中产生的病毒随后将感染MDCK细胞并大量复制。,RNA聚合酶/转录系统:8质粒系统,RNA聚合酶/转录系统:8质粒系统,双向RNA聚合酶/转录系统:8质粒系统,利用反向遗传学操作技术研究流感病毒的致病性利用反向遗传学操作技术研究流感病毒的生命周期利用反
7、向遗传学操作技术研究流感疫苗,流感病毒反向遗传操作技术的应用,“62”流感疫苗,2 RNA干扰对A型流感病毒基因表达及病毒复制的抑制作用的研究,2.1 研究目的和意义,本研究选用NP和M2基因作为RNA干扰的靶基因,针对NP和M2基因保守区段设计了5对siRNA。研究了siRNA对基因表达的影响及其对H1N1、H5N1和H9N2亚型流感病毒在体内和体外复制的影响,筛选出能有效抑制流感病毒复制的siRNA序列,为探索RNAi技术应用于抗禽流感研究奠定基础。,研究目的和意义,2.2 研究内容,禽流感病毒A/chicken/Hubei/327/2004 NP和M2基因的克隆及M2基因跨膜区的缺失(M
8、2).NP和M2 基因同eGFP共表达真核质粒的构建及其在HeLa细胞中的表达.NP和M2基因特异性siRNA的设计及其真核表达质粒的构建siRNA对NP和M2基因在HeLa细胞中表达水平影响的研究.siRNA在体外(MDCK细胞上)对流感病毒(H5N1,H9N2,H1N1)复制的影响.siRNA的体内试验和攻毒保护试验,研究内容,2.3 结果与分析,NP基因的PCR扩增及同报告基因(EGFP)融合表达质粒的构建,结果与分析,NP基因的PCR扩增结果,质粒pCDM-NP的酶切鉴定和PCR鉴定,PCR方法缺失M2基因跨膜区,结果与分析,M2基因的克隆、跨膜区的缺失及同报告基因(EGFP)融合表达
9、质粒的构建,结果与分析,M2基因跨膜区缺失的PCR扩增结果,质粒pCDM-M2的酶切鉴定和PCR鉴定,结果与分析,NP基因同EGFP在HeLa细胞中的融合表达,M2基因同EGFP在HeLa细胞中的融合表达,质粒pCDM-NP、pCDM-M2在转染HeLa细胞后12小时就可以检测到特异性荧光,转染后24小时发出荧光的细胞明显增多,荧光主要呈弥散性分布于整个细胞中,说明NP基因与EGFP,M2基因与EGFP均发生了融合表达。,NP、M2基因同报告基因(EGFP)在HeLa细胞中的融合表达,NP和M2 基因特异性siRNA的设计及其真核表达质粒的构建,BamHI+HindIII,结果与分析,NP和M
10、2 基因特异性siRNA真核表达质粒的构建,siRNA表达质粒bamHI+HindIII的双酶切鉴定M:DNA marker(DL-15000)1:pSCMV-M48 2:pSCMV-M7543:pSCMV-M949 4:pSCMV-NP749 5:pSCMV-NP1383,结果与分析,结果与分析,siRNA表达质粒与pCDM-NP共转染,siRNA表达质粒与pCDM-M2共转染,siRNA表达质粒与pCDM-NP或pCDM-M2共转染,siRNA对NP和M2 基因在HeLa细胞中表达水平影响,结果与分析,siRNA表达质粒同pCDM-NP共转染后24h的流式细胞检测,结果与分析,结果与分析,
11、siRNA表达质粒同pCDM-M2共转染后24h的流式细胞检测,半定量RT-PCR检测NP、EGFP mRNA的水平,结果与分析,A:pNP-EGFP+pS-NegativeB:pNP-EGFP+pS-NP749C:pNP-EGFP+pS-NP1383D:Cell Control,结果与分析,A:pM2-EGFP+pS-Negative B:pM2-EGFP+pS-M48C:pM2-EGFP+pS-M754 D:pM2-EGFP+pS-M949E:Cell Control,半定量RT-PCR检测M2、EGFP mRNA的水平,半定量RT-PCR检测看家基因GAPDH mRNA的水平,结果与分析
12、,A:pCDM-NP pSilencer 4.1-negativeB:pCDM-NP pSCMV-NP749C:pCDM-NP pSCMV-NP1383D:pCDM-M2 pSilencer 4.1-negativeE:pCDM-M2 pSCMV-M48F:pCDM-M2 pSCMV-M754G:pCDM-M2 pSCMV-M949H:Cell Control,Western blot 评价siRNA对目的基因表达的抑制作用,结果与分析,Western blot检测M2基因的表达水平 A:pCDM-M2 pSilencer 4.1-negative C:pCDM-M2 pSCMV-M754B:
13、pCDM-M2 pSCMV-M949 D:pCDM-M2 pSCMV-M48E:Cell Control,Western blot检测NP基因的表达水平A:pCDM-NP pSilencer 4.1-negative C:pCDM-NP pSCMV-NP1383B:pCDM-NP pSCMV-NP749 D:Cell Control,Western blot 检测GAPDH基因的表达,结果与分析,A:pCDM-NP pSilencer 4.1-negative E:pCDM-M2 pSCMV-M48B:pCDM-NP pSCMV-NP749 F:pCDM-M2 pSCMV-M754C:pCDM
14、-NP pSCMV-NP1383 G:pCDM-M2 pSCMV-M949D:pCDM-M2 pSilencer 4.1-negative H:Cell Control,siRNA对A型流感病毒在MDCK细胞中复制的抑制作用,结果与分析,在6孔板上培养MDCK细胞,待细胞长至80%满时分别转染siRNA表达质粒,同时设置pSilencer 4.1-negative对照和空白细胞对照。转染后18-24h分别接种流感病毒H1N1(106 TCID50),H5N1(104 TCID50),H9N2(106 TCID50),接毒后48-72h收获细胞及上清进行病毒TCID50的测定。,siRNA对A型
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