植物细胞工程精选文档.ppt

《植物细胞工程精选文档.ppt》由会员分享，可在线阅读，更多相关《植物细胞工程精选文档.ppt（252页珍藏版）》请在三一办公上搜索。

1、概 述,一、定义植物细胞工程是一门以植物组织和细胞的离体操作为基础的实验性很强的新兴学科。根据生物学原理及工程学原理，通过细胞、组织、器官培养以及细胞融合等，定向改造植物细胞，达到改良品种、快速繁殖或生产生物产品为人类生产名贵药品及提供服务的技术。,1,二、植物细胞工程的发展历史,2,德国植物学家 Haberlandt 植物细胞培养创始人1902年根据细胞学说提出植物体细胞有再生完整植株的潜在全能性,3,1902年，德国植物学家Haberlandt提出了高等植物的器官和组织可以不断分割，直至分到单个细胞的观点。他认为，如果每个细胞都有植物个体一样的性质和能力，那么可以通过植物细胞培养，把单个细

2、胞培养成一个新个体。,4,在此思想指导下，许多科学家从事组织培养研究。1904年，德国植物胚胎学家Hanning 用萝卜和辣根的胚进行离体培养，提早长成了小植株，首次获得胚培养成功。成熟 发芽常规，幼胚 种子 植物 培养 组织培养 幼胚 植株,5,1922年，Knudson 对兰花幼胚进行培养获得幼苗，克服了兰花种子发芽难的困难。1925年，Laibach 进行亚麻种间杂种幼胚培养，成功地得到了杂种植物。1934年，White 等用番茄根尖的组织培养，建立了第一个活跃生长的无性繁殖系。1934年，Gautheret 培养山毛柳、黑杨的形成层组织，获得愈伤组织形成。,6,1937年，White

3、和Went 等分别发现B族维生素和吲哚乙酸（IAA）对培养的离体根生长具有重要作用。1937-1938年，Gautheret 在1934年培养山毛柳、黑杨成功获得愈伤组织的基础上，在培养柳树的培养基中，加入IAA 和B族维生素等，使形成层的生长大为增加。1937-1938年，Nobecourt 培养胡萝卜根和马铃薯的块茎薄壁组织，获得愈伤组织。将愈伤组织置于琼脂培养基上继续培养，可无限发生细胞增殖，形成愈伤组织。首次从液泡化的薄壁细胞建立愈伤组织培养物。,7,White、Gautheret、Nobecourt 等科学家被誉为植物组织培养的奠基人。在此基础上建立了植物组织培养的综合培养基，包括无

4、机盐成分、有机成分和生长刺激因素。这是随后创立的各种培养基的基础，同时也建立了植物组织培养的基本方法，成为当今各种植物组织培养的技术基础。,8,40年代末开始，进行从脱分化细胞组织培养进入探讨器官再分化的研究。脱分化 细胞（组织、器官）再分化愈伤组织 不定芽 植株 不定根,9,10,11,1958年，Steward 和Shantz以胡萝卜根的悬浮细胞诱导分化成完整的小植株，首次获得植株再生成功。1960年，Cocking 等用真菌纤维素分离植物原生质体获得成功。1971年，Takebe 等从烟草原生质体得到再生植株，首次获得原生质体植株再生成功。1972年，Carlson 等通过两个烟草物种之

5、间原生质体的融合，获得了第一个体细胞杂种植株。到目前为止，组织培养、原生质体培养、细胞融合已在许多植物上获得再生成功。,12,三、植物细胞工程的应用,13,（一）、脱毒和快速繁殖 许多植物，特别是无性繁殖植物，带有病毒，并直接传给子代，严重影响产量和质量。一般茎尖生长点不带病毒。所以，利用茎尖培养再生的植株，可能不带病毒，再进行大量繁殖生产脱毒苗。脱毒苗用于生产可明显提高产量、质量和商品价值。目前已在许多植物上得到应用，如甘薯、马铃薯、草莓、果树、花卉等。,14,许多名贵植物，之所以名贵，是因为繁殖系数太低，种子结实率低或者不结种子，而营养繁殖又很慢。利用组织培养再生植株，进行大量繁殖，可以大

6、大提高繁殖系数。目前组织培养快速繁殖已在许多植物上应用，最早是兰花（60年代）。,15,16,17,18,（二）、细胞工程育种 1.利用培养变异，筛选优良突变体。植物离体培养，能够明显提高突变率，并且会有各种各样的生理和形态突变，如株高、花色、植株形态、生育期、耐性等等。可以从中选择优良突变体，培育新品种。,19,2、利用远缘杂交幼胚培养，获得杂种植株，克服其杂交不亲和性。有些植物远缘杂交，能正常受精，但受精胚往往败育。此种情况下，可以将幼胚在败育前进行离体培养，以获得缘远杂种植株。,20,3.利用细胞融合技术，克服远缘杂交不亲和性。野生种往往有许多优良性状，如抗干旱、抗病虫害、耐涝、耐瘠薄、

7、耐盐碱、抗冻等特性。但大部分野生种与栽培种杂交不亲和，严重影响了野生种优良遗传基因的应用。利用细胞融合，可以克服这种杂交不亲和性，获得体细胞杂种，使野生种的利用成为可能。,21,（三）、离体种质保存 随着地球不断开发、生态环境破坏，种植资源日趋枯竭，大量有用基因损失。利用组织培养法，低温保存（196）或试管保存，为保存和抢救濒临灭绝的生物带来希望。,22,（四）、细胞培养生产有用物质 利用细胞培养生产次生物质，如药物、色素、食品添加剂、酶、农药等。,23,植物细胞工程：以植物组织细胞为基本单位，在离体条件下进行培养、繁殖或人为的精细操作，使细胞的某些生物学特性按人们的意愿发生改变，从而改良品种

8、或创造新物种，或加速繁殖植物个体，或获得有用物质的过程。脱分化：离体培养条件下，一个已分化的细胞回复到原始无分化状态或分生组织细胞状态或胚性细胞的状态的过程。再分化：脱分化后的分生细胞（愈伤组织）在特定的条件（离体培养）下，重新恢复细胞分化能力，并经历器官发生形成单极性的芽或根，或经历胚胎发生形成双极性的胚状体，进一步发育成完整生物体。细胞全能性：一个细胞所具有的产生完整生物个体的固有能力。外植体：植物组织培养中用来进行无菌培养的离体材料，可以是器官、组织、细胞和原生质体等。愈伤组织：脱分化后的细胞，经过细胞分裂，产生无组织结构、无明显极性的、松散的细胞团。细胞分化：是指导致细胞形成不同结构，

9、引起功能改变或潜在发育方式改变的过程。,24,第一节 植物细胞培养,植物细胞培养特性：植物细胞较大，有纤维素细胞壁，细胞耐拉不耐扭，抵抗剪切力差培养过程生长速度缓慢，易污染，需用抗生素细胞生长中期及对数期，易凝聚成团块，悬浮培养较难培养时需供氧，培养液粘度大，不耐受强力通风搅拌具有群体效应，无锚地依赖性和接触抑制性细胞培养产物滞留于细胞内，且产量较低 细胞具有结构与功能全能性,25,植物细胞全能性是植物细胞工程的理论基础,根据细胞学说，德国植物学家 Haberlandt（植物细胞培养创始人）1902年提出立体培养的植物体细胞有通过胚胎发生过程而发育再生成完整植株的潜在全能性。五十年代，Skoo

10、g1958,Steward和Keiraert把培养的胡萝卜体细胞诱导成胚状体，细胞增生顺序通过原胚期，球形胚期，心形胚期，鱼雷胚期，和子叶期，最后形成完整的植株。证明了细胞的全能性。（发育全能性，物质代谢的全能性）,26,器官发生与体细胞胚胎发生,一器官发生（一）概念：离体培养的组织、细胞在诱导条件下经分裂和增殖再分化形成根和芽等器官的过程。（二）发生方式：有两种发生方式（1）直接发生：（具有初生分生能力的）外植体直接分化成器官的过程。（由茎尖、腋芽、原球茎、块茎、鳞茎等器官发生）（2）间接发生：外植体（已分化的成熟组织）经脱分化形成愈伤组织再分化形成器官的过程。,27,二）胚状体方式(som

11、atic embryo)指由培养细胞诱导分化出具胚芽、胚根、胚轴的胚状结构，进而长成完整植株。由外植体经胚状体形成完整植株可分三个不同发育阶段：1)外植体细胞脱分化。外植体发生细胞分裂，或进而形成愈伤组织。这一阶段同不定芽方式一样。2)胚状体形成 在植物有性生殖中，精子和卵子结合形成合子，合子进一步发育成胚。但在组织培养条件下胚状体的发育过程是：细胞经脱分化后，发生持续细胞分裂增殖，并依次经过原胚期、球形胚期、心形胚期、鱼雷形胚期和子叶期，进而成为成熟的有机体。我们把由愈伤组织的类似薄壁组织细胞不经有性过程而直接产生类似胚的这一结构，称为胚状体。3)胚状体再发育成完整植株 在外观上，这种方式和

12、不定芽均有光滑、圆形突起的形状。,28,29,1 实验室设置及仪器设备,实验室是细胞工程研究的主要场所，应能满足清洗、培养基制备、储藏、无菌操作、培养、鉴定等多方面的工作。,30,1基本实验室,1.1 洗涤间 根据工作量的大小决定其大小，一般面积控制在30-50m2。在实验室的一侧设置专用的洗涤水槽，用来清洗玻璃器皿。中央实验台还应配置2个水槽，用于清洗小型玻璃器皿。如果工作量大，可以购置一台洗瓶机。准备1-2个洗液缸，专门用于洗涤对洁净度要求很高的玻璃器皿。此外还应配置落水架、干燥箱、柜子、超声波清洗器等。地面应耐湿并排水良好。,31,32,1.2培养基配制间面积60平方米左右，配备的主要仪

13、器设备有：冰箱、天平、微波炉、pH计、培养基分装器、药品柜、器械柜、抽气泵、电炉、各种规格的培养瓶、培养皿、移液管、烧杯、量筒、容量瓶、储藏瓶等。冰箱以体积180-200L为宜，用于储存培养基母液、激素维生素等贵重药品、彩色胶卷、及保存植物材料。天平应有不同感量。,33,34,1.3消毒间 配备实验台、高压灭菌锅、排风灭火设备、细菌过滤设备、干热消毒柜、电炉等。灭菌锅的选择应根据不同的要求选择不同型号的灭菌锅。一般实验室可选用小型的医用手提式高压灭菌锅，较大的实验室可选用立式自动控制压力和温度的灭菌锅。生产性的实验室可选用大型的卧式灭菌锅。如果没有条件的话，可以将上述工作间合并成一个准备间，要

14、求是设备的安装和排列要合理、房间要宽敞、明亮、透风，地面要便于清洁、防滑。,35,36,1.4无菌操作室无菌操作室主要用于实验材料的接种操作，所以又叫接种室。通常由里外两间组成，外间是缓冲间，用于准备工作，还有防止污染的作用。缓冲间的门应该与接种室的门错开，两个门也不要同时开启，以保证无菌室不因开门和人的进出带进杂菌。缓冲间内应该设有水槽、实验台、鞋帽架、和柜子、紫外灯。无菌操作室的内壁应当用塑钢板或瓷砖装修，工作人员进入操作间前要穿上消过毒的工作服和拖鞋。室内应配有超净工作台，紫外灯、解剖镜、各种接种器械等。,37,38,1.5培养室 为了控制培养室的温度和光照时间及其强度，培养室的房间不要

15、窗户，但应当留一个通气窗，并安上排气扇。室内温度由空调控制，光照由日光灯控制。天花板和内墙最好用塑料钢板装修，地面用水磨石或瓷砖铺设，一般要分两间，一为光照培养室，一为暗培养室。培养室外应有一预备间或走廊。培养室应配有培养架、转床、摇床、光照培养箱、生化培养箱、自动控时器等。日光灯一般用40W，固定在培养架的侧面或搁板的下面，每层有两支日光灯，距离在20cm，光照强度为2000-3000lx。,39,40,41,2辅助实验室,2.1鉴定室 细胞学鉴定室 其功能是对培养材料进行细胞学鉴定和研究。要求清洁、明亮、干燥，使各种光学仪器不受潮湿和灰尘污染。应配置各种显微镜、照相系统等。生化分析室 在以

16、培养细胞产物为主要目的的实验室中，应建立相应的分析化验实验室，以便于对培养物的有效成分随时进行取样检查。离心机、酶联免疫检测仪、天平、PCR仪等。,42,43,2.2、温室为试管苗提供满足生长的适宜环境条件。,44,2 实验基本操作一.洗涤技术(1)洗涤液的配制,45,(2)洗涤方法A、新购买的玻璃仪器表面常附着有游离的碱性物质，可先用0.5的去污剂洗刷，再用自来水洗净，然后浸泡在12盐酸溶液中过夜（不可少于四小时），再用自来水冲洗，最后用无离子水冲洗两次，在100120烘箱内烘干备用。,46,B、使用过的玻璃仪器的清洗 先用自来水洗刷至无污物，再用合适的毛刷沾去污剂（粉）洗刷，或浸泡在0.5

17、的清洗剂中超声清洗（比色皿决不可超声），然后用自来水彻底洗净去污剂，用无离子水洗两次，烘干备用（计量仪器不可烘干）。清洗后器皿内外不可挂有水珠，否则重洗，若重洗后仍挂有水珠，则需用洗液浸泡数小时后（或用去污粉擦洗），重新清洗。,47,C、塑料器皿的清洗 聚乙烯、聚丙烯等制成的塑料器皿，在生物化学实验中已用的越来越多。第一次使用塑料器皿时，可先用8mol/L尿素（用浓盐酸调pH=1）清洗，接着依次用无离子水、1 mol/L KOH和无离子水清洗，然后用103 mol/L EDTA 除去金属离子的污染，最后用无离子水彻底清洗，以后每次使用时，可只用0.5的去污剂清洗，然后用自来水和无离子水洗净即可

18、。,48,D、金属用品洗涤 金属用品一般不宜用各种洗涤液洗涤（新的可以用热洗衣粉水洗净），需要清洗时，一般用酒精擦洗，然后火焰干燥。E、除菌过滤器用清水冲洗后，用洗液冲洗，再用清水冲洗，最后用蒸馏水冲洗，晾干备用。,49,二.灭菌（一）、灭菌工作是极其重要的。对于初学者来说，首先应建立有菌和无菌的概念有菌的范畴：凡是暴露在空气中的物体，至少其表面都是有菌的。如植物的表面、超净工作台的台面，未处理的工具和手等。无菌的范畴：高压高温处理（工具、器皿、培养基等）物理或化学处理；火烤后的物体；健康的动植物不与内外部表面接触的组织 内部可能是无菌的（有时也有内生菌，但 不会影响培养，也不会污染）,50,

19、（二）、灭菌的方法：1、物理方法：干热、湿热、过滤（0.25微米）、紫外灯、超声波等。2、化学方法：使用灭菌剂或抗菌素，如酒精、次氯酸钠、升汞、漂白粉、高锰酸钾、双氧水、福尔马林等,51,（1）干热灭菌适用于玻璃器皿和金属器械的灭菌。操作方法：150、40min或120、120min，如果发现芽孢杆菌，160、90120min,52,（2）湿热灭菌适用于各种器皿、培养基、器皿、蒸馏水、棉塞、纸等。121 维持2030min注意点：加足水、排尽气、气压降到0时，才能开盖,53,（3）过滤灭菌 培养基的灭菌一般用高压高温处理，但如果培养基中某些成分遇到高温分解（如某些生长调节剂GA3、玉米素等），

20、就需要过滤灭菌。另外酶、血清等也需要过滤灭菌 灭菌方法：将生长调节剂或酶配成一定浓度，用注射器注入微孔滤膜虑，滤膜孔径0.22-0.45微米。制培养基时，现将培养基高压灭菌，待降至50左右时，加入适量的激素，然后分装,54,（4）射线灭菌主要是利用紫外灯进行照射，适合实验室空气、操作台等，灭菌时间20-30min。注意：关灯后5min后再进入。超净工作台关灯后要打开风机。,55,（5）火焰灼烧灭菌用火焰灼烧达到灭菌目的，适用于接种器皿的灭菌。,56,（6）消毒剂适用外植体、实验器皿、操作表面、皮肤等。几种常用消毒剂的效果比较,57,注意：（1）实验器皿、操作表面、皮肤一般用 7075%酒精（2

21、）升汞为剧毒药品，一则使用时注意别溅到皮肤上，二则使用后要进行处理，不能直接导入下水道。升汞处理方法：升汞Na2S絮状沉淀（至絮状沉淀不再产生为止）FeSO4（中和过多的Na2S）,58,长期不用的培养室或接种室要进行熏蒸。方法：甲醛、高锰酸钾熏蒸。甲醛的用量通常按每立方米空间2-6毫升计算，高锰酸钾的用量是甲醛的一半。室内准备妥当后，把称好的高锰酸钾放在瓷碗或烧杯内(最好在碗或杯下面铺一张报纸，以利清洗)，然后将甲醛也倒入碗或杯内，立即出屋关门。几秒钟后，甲醛溶液即沸腾挥发。高锰酸钾是一种氧化剂，当它与一部分甲醛作用时，由氧化反应产生的热可使其余的甲醛挥发为气体。,59,甲醛熏蒸接种室应至少

22、在使用前24小时进行，熏蒸后密闭保持4小时以上再进入室内工作。甲醛对人的眼、鼻有强烈刺激作用。因此，可在使用前用氨进行中和。取与甲醛等量的氨水，倒在另一个烧杯里，迅速放入熏蒸室内，使甲醛和氨水发生中和反应，以消除甲醛味，减少对人体的刺激作用。使用氨水应在工作前2小时进行。对有材料的培养室，也可以采用乙二醇加热熏蒸,60,人为因素（工作人员本身）：工作服、帽、口罩、酒精擦手。,物品因素,器皿和用具,培养皿：洗热压 玻璃器皿：洗干热（干热箱）或晾干 接种用具：用CCL4布擦湿布擦 泡75%95%酒精烧,培养基：湿热,培养材料,外部细菌：用水冲洗化学药剂处理 内部细菌,茎尖培养 加抗生素：青霉素、利

23、福平,操作的空气：洗刷地板95%酒精擦超净工作台 用化学试剂薰蒸,污染来源,三、无菌操作技术,61,1、实验器具和材料的准备2、用75%的酒精擦拭超净工作台，然后室内及超净工作台用紫外灯杀菌20min-30min。注意：台面上的用品不要放置太多或重叠放置，以免降低灭菌效果。3、关紫外灯、打开风机，过5-10min进入缓冲间，以75%洗手和手臂，更换无菌服、帽子和口罩。进入接种室。（注：没有特别情况，尽量不要下工作台）,62,4、用7075的酒精拭擦台面并消毒双手。试验用具也应该用酒精消毒。点燃酒精灯，将金属器械在其火焰上灼烧，冷却待用。注意：所有操作应在火焰近处并经过灼烧进行。金属器械不能过度

24、灼烧，以防退火。移液管不能灼烧，培养瓶口、塑料材料、橡胶材料过火焰不能时间太长。,63,5、取流水冲洗（至少30min）过的外植体，用一定的消毒剂浸泡消毒，用无菌水冲洗34次，放入无菌培养皿中，置于酒精灯火焰下方，用无菌的接种器械进行分离、切割或其他处理。,64,6、打开培养瓶，瓶口在灯焰处旋转灼烧，用镊子将培养材料置于培养基上，灼烧镊子放回，灼烧瓶口，盖上瓶塞。7、用酒精擦洗工作台和手。进行下一轮操作。,65,注意（1）进行培养时，动作要准确敏捷，但又不必太快，以防空气流动，增加污染机会。（2）不能用手触及已消毒器皿，如已接触，要用火焰烧灼消毒或取备品更换。（3）为拿取方便，工作台面上的用品

25、要有合理的布局，原则上应是右手使用的东西放置在右侧，左手用品在左侧，酒精灯置于中央。（4）工作由始至终要保持一定顺序性，组织或细胞在未做处理之前，勿过早暴露在空气中。同样，培养液在未用前，不要过早开瓶；用过之后如不再重复使用，应立即封闭瓶口直立可增加落菌机会。,66,（5）吸取营养液、细胞悬液及其它各种用液时，均应分别使用吸管，不能混用，以防扩大污染或导致细胞交叉污染。（6）工作中不能面向操作区讲话或咳嗽，以免唾沫把细菌或支原体带入工作台面发生污染。（7）手或相对较脏的物品不能经过开放的瓶口上方，瓶口最易污染，加液时如吸管尖碰到瓶口，则应将吸管丢掉。,67,接种时在近火焰处打开瓶口，使瓶倾斜，

26、以免空气中微生物落入瓶中,正 确 错 误,68,整个接种操作应在近火焰处进行，且动作要迅速,正 确 错 误,69,接种过程中尽可能达到悬空要求,防止操作带来的污染,正 确 错 误,70,接种时不得用手接触瓶盖内壁或瓶口,正 确 错 误,71,瓶盖朝上放，接种完毕后立即盖好瓶口,正 确 错 误,72,接种完一瓶用火烧用具以防止交叉污染产生,73,种子和分生组织：培养时通常将其贴放在培养基表面，而不是插到培养基内部，以免供氧不足,正 确 错 误,74,接种茎段：注意形态学下端插入培养基内，而形态学上端露于空气中,正 确 错 误,75,四、外植体的选择与处理技术用于外植体分离的母体植物材料一般有3种

27、来源：一是生长在自然环境下的植物；二是在温室控制环境条件下生长的植物；三是无菌环境下已经过离体培养的植物。,76,（一）、外植体的选择 1、选择优良的基因型 试验首先要明确目的。例如，蔬菜、作物等的脱毒快繁，是为了脱去病毒，提高产量和质量，就应选择当地栽培确认的高产优质的品种作为脱毒的材料，并且品种一定要可靠。花卉、观赏植物的快繁，也应选择有价值的植物。2、取材 从生长旺盛、健壮、无病虫害的植株上取材。母柱代谢旺盛期切取的外植体再生能力强，试验容易成功。,77,3、外植体大小选择 因外植体不同而不同。如利用茎尖培养，茎尖大小对脱毒效果非常明显。再如幼胚培养，胚龄也非常重要。（以后具体讲）4、选

28、择外植体的时期 外植体的生长动态往往与该物种的生长规律（生物钟）有关。因此，最好在植物生长的最适宜时期取材培养。会得到较好的结果。,78,（二）、外植体的处理 1、取材母株的预处理 人工管理，促进母株生长旺盛、代谢活跃，从其上取材培养，容易成功。2、外植体休眠的处理 有些植物的种子、幼胚、或芽，存在休眠。为了打破休眠，可利用低温处理，或赤霉素等化学物质处理。因植物不同处理温度和时间有所不同。,79,3、组织内生菌的 处理（1）加入抗生素，注意抗生素的用量，高浓度容易造成培养物的死亡（2）取生长期旺盛的生长点部位作为起始培养的外植体。（3）取被内生菌污染的培养物的 茎尖不停的转接。,80,3.培

29、养基的成分及其配制 一、培养基的成分及其作用（一）无机营养物质 培养的植物组织、器官、细胞或者原生质体需要连续的供给某些无机化学物质，除了C、H、O之外，需要量比较多的元素叫大量元素，需要量比较少的元素叫微量营养元素。,81,大量元素 培养基的大量元素使用量一般在每升几十至几千毫克。大量元素包括N,P,K,Ca,Mg,S。培养基中加入量最多的是N，N一般以硝酸盐或氨盐，或者两者结合的盐提供,82,微量元素 微量元素的用量一般每升不高于几十毫克。植物所需的微量元素有Fe、Cu、Zn、B、Mo、Mn、Co，Cl其他一些化学药品常带有微量元素杂质，因此要注意微量元素的用量不能过多，多会引起生长抑制等

30、毒害现象。,83,（二）.有机化合物,有机物质包括维生素类物质、氨基酸类物质、糖类物质和一些其它的有机添加物 1、维生素类物质 维生素类物质在酶系统中有催化功能。硫胺素（VB1）与愈伤组织的产生和生活力有关，可能是所有植物组织培养初期需要的维生素，而盐酸吡哆醇（VB6）促进根的生长，烟酸（VB3，又称维生素PP）促进胚的发育。有的配方中还使用了泛酸钙（VB5）、生物素（VH）、钴胺素（VB12）、叶酸（VBc），Vc等。,84,2、AA类物质绝大多数AA适量时对培养效果都有正象效应。常用的有Gly、Asn、Gln。在植物组织培养中，有时也用水解乳蛋白和水解酪蛋白。,85,3、糖类糖在培养基的作

31、用：1）、为细胞提供合成新物质的碳骨架 2）、为细胞的呼吸代谢提供底物和能量 3）、维持渗透压蔗糖是广泛应用的一种碳源。葡萄糖和麦芽糖也是常用的碳源。,86,4、其它有机物质1）肌醇（环己六醇）肌醇可以形成果胶物质，是细胞壁的构建物质另外还可以形成植酸，与阳离子结合或形成磷脂，参与细胞膜的组成。利于胚和芽的形成2）天然有机物一些天然的有机物如椰乳、番茄提取物、酵母提取物、马铃薯煮汁也常用于植物组织培养，并表现出了良好的促进作用。,87,植物激素是在植物体内合成的，对植物生长发育有显著调节作用的微量有机物，而植物生长调节剂是外源的调节植物生长发育的物质。无机元素和有机营养构成的培养基仅保证培养物

32、的生存与最低生理活动，只有加入植物生长调节物质，才能诱导细胞分裂、脱分化和再分化。,（三）、植物生长调节物质,88,1、生长素类：1）吲哚类：IAA（吲哚乙酸）、IBA（吲哚丁酸）、IPA（吲哚丙酸）2）萘酸类：NAA（萘乙酸）3）苯氧羧酸类：2,4-D（2,4-二氯苯氧乙酸）、2,4,5-T（2,4,5-三氯苯氧乙酸）、2,4,5-TP（2,4,5-三氯苯氧丙酸）等。其中吲哚乙酸在植物体内普遍存在，是生理活性最强的生长素。,89,生长素的生理作用1、促进细胞生长和细胞分裂2、诱导受伤组织表面细胞恢复分裂能力3、形成愈伤组织，促进生根4、与一定量的细胞分裂素配合共同诱导不定芽的分化、侧芽的萌发

33、与生长、胚状体的诱导。,90,A：NAA 0mg/L，芽（少），根（无）B：NAA 0.1mg/L，芽（少），根（无），愈伤组织（少量）C：NAA 5.0mg/L，芽（少），根（多），愈伤组织（一定量,A B C,91,2、细胞分裂素,是一类腺嘌呤衍生物。主要有激动素（6-糠基氨基嘌呤KT）、6-苄基氨基嘌呤（6-BA）和玉米素（ZT）等。其中最常用的是6苄基氨基嘌呤。功能：1、促进细胞的分裂和分化 2、诱导芽的分化 3、促进侧芽的萌发和生长 4、抑制衰老,92,A B,A：BA(0mg/L)，芽（减少），根（增多）愈伤组织（一定量）B：BA(0.1mg/L)，芽（适量），根（适量）愈伤组织（

34、一定量）,93,控制植物细胞分化,分裂素/生长素的比例是控制芽和根形成的一个重要条件 比例高时产生芽,比例低时产生根,94,3、赤霉素（GA3）生理作用：1、诱导茎的细胞伸长，对矮生型植物恢复成高生型特别有效，对根无效2、对形成层的细胞分化有影响，往往同生长素有协同作用。IAA/GA比值高有利于木质部的分化，比值低有利于韧皮部的分化。3、破除种子、鳞茎、块茎休眠，使之提前萌发。4、对生长素和细胞分裂素的活性有增效作用注：不耐热，应采用过滤灭菌加入,95,96,4、脱落酸（ABA）生理作用：1、抑制蛋白质的合成2、抵消和抑制生长素、细胞分裂素、GA的作用3、诱导休眠、促进衰老和脱落,97,以上四

35、种生长调节物质，前两类用的多，后两类只是补充，对某些植物有利、对某些植物不仅没有利，还有害，实际工作中要具体分析。生长调节物质在生物体内存在甚微，浓度很低，一般用ppm表示 1ppm=1mg/L,98,（四）固化剂和悬浮剂1、固化剂 琼脂、琼脂糖（用于原生质体、细胞培养及某些作物的花药培养）琼脂的用量一般在4-10g/L，所购回的琼脂要先试一下它的凝固力，一般只要能稳定的凝固就不要多加。琼脂以颜色浅、透明度好、洁净的为上品。2、悬浮剂Ficoll（聚蔗糖）,99,二、培养基的配方及培养基的选择培养基的种类（根据无机盐的浓度）：1、高无机盐含量培养基 钾盐、铵盐及硝酸盐含量较高，微量元素种类齐全

36、，比例适当，离子平衡性好，具有较强的缓冲性，养分数量及比例比较合适，广泛用于植物的器官、花药、细胞及原生质体的培养。主要有MS、LS、BL、BM、ER培养基。(Murashige and Skoog),100,2、高硝态氮培养基 硝酸钾含量高，氨态氮的含量低，含有较高的VB1。主要适合与木本植物、十字花科植物和单子叶植物的组织和花药培养。主要有B5、N6、SH培养基。,101,3、中等无机盐含量培养基大量元素约为MS培养基的一半，微量元素种类减少，但含量较MS的高，维生素种类比MS多，如增加了生物素、叶酸等。适合于花药培养，主要有Nitch，NT、H、Miller培养基。,102,4、低无机盐

37、含量培养基大量元素含量大幅度降低而且种类减少，有机含量相对也很低。多数用于生根培养基，主要有White、Heller、WS、HE、HB。,103,根据培养物的培养过程，培养基分为初代培养基和继代培养基。初代培养基是指用来第一次接种外植体的培养基。继代培养基是指用来接种继初代培养物的培养基。,104,根据其作用不同，培养基分为诱导培养基、增殖培养基和生根培养基。,105,4、根据其营养水平不同，培养基可分为基本培养基和完全培养基。基本培养基（就是通常称呼的培养基）主要有MS、White、N6、B5、改良MS、Heller、Nitsh、SH、Miller等。完全培养基就是基本培养基的基础上，根据试

38、验的不同需要，附加一些物质，如生长调节物质和其他复杂有机物质等。MS+6-BA0.5+KT0.5+NAA0.5+Su3%+Ag0.7%,106,培养基的筛选：1.无机营养成分：一般在现有培养基配方中选择。可以参考前人的经验，例如：MS是广谱性培养基，N6用于单子叶植物的培养。豆科多用B5培养基。2、植物生长调节剂：必须进行筛选试验。总体原则-当诱导愈伤组织形成时，细胞分裂素和生长素相对平衡；诱导芽分化时，细胞分裂素水平应高于生长素，诱导根则要低。3、有机成分要根据培养类型考虑，如进行器官和组织培养，一般不加复杂有机成分，而进行细胞和原生质体培养则要加,107,三、培养基的配制（一）、贮备液（母

39、液）的配制 为什么要配制母液？1）、方便 2）、准确（有些成分量太小）以MS培养基配制为例：,108,1、大量元素母液的配制各成分按照表1培养基浓度含量扩大10倍，按顺序逐步混合。后用蒸馏水定容到1000ml的容量瓶中，即为10倍的大量元素母液。倒入细口瓶，贴好标签保存于冰箱中。配制培养基时，每配1L培养基取此液100ml。,109,注意：(1)某些无机成分如Ca2+、SO42一、Mg 2十和H2PO4一等在一起可能发生化学反应，产生沉淀物。为避免此现象发生，母液配制时要用纯度高的重蒸馏水溶解，药品采用等级较高的分析纯，各种化学药品必须先以少量重蒸馏水使其充分溶解后才能混合，混合时应注意先后顺

40、序。特别应将Ca2+、SO42一、Mg 2十和H2PO4一等离子错开混合，速度宜慢，边搅拌边混合。(2)CaCl22H2O要在最后单独加入，在溶解CaCl22H2O时，蒸馏水需加热沸腾，除去水中的CO2，以防沉淀。另外，CaCl22H2O放入沸水中易沸腾，操作时要防止其溢出。,110,、微量元素母液的配制MS培养基的微量元素无机盐由7种化合物（除Fe）组成。微量元素用量较少，特别是CuSO45H2O、CoCl26H2O，因此在配制中分微量、配制。按照表2，表3配方，用感量为0.0001g的分析天平称量，其它同大量元素。配制培养基时，每配制1L培养基，取微量10ml，微量ml,111,112,3

41、、铁盐母液的配制铁盐不是都需要单独配成母液，如柠檬酸铁，只需和大量元素一起配成母液即可。目前常用的铁盐是硫酸亚铁和乙二胺四乙酸二钠的螯合物，必须单独配成母液。这种螯合物使用起来方便，又比较稳定，不易发生沉淀。配制方法同上，直接用蒸馏水加热搅拌溶解。配制培养基时，配制1L取此液10ml。,113,在配制铁盐时，如果加热搅拌时间过短，会造成Fe S 04和Na2EDTA鳌合不彻底，此时若将其冷藏，Fe S 04会结晶析出。为避免此现象发生，配制铁盐母液时，Fe S 04和Na2EDTA应分别加热溶解后混合，并置于加热搅拌器上不断搅拌至溶液呈金黄色(约加热20-30 min)，调pH值至5.5，室温

42、放置冷却后，再冷藏。,114,4、有机母液的配制MS培养基的有机成分有甘氨酸、肌醇、烟酸、盐酸硫胺素和盐酸吡哆素。培养基中的有机成分原则上应分别单独配制。配制直接用蒸馏水溶解，注意称量时用电子分析天平。并贮存在棕色无菌瓶中。配制生物素、叶酸，用稀氨水溶解，然后定容。,115,5、植物生长调节剂母液配制一般植物生长调节剂母液的配制的终浓度以0.5mg/ml为好，需要注意的是：（）配制生长素类，例如IAA、NAA、2.4-D、IBA，应先用少量95%乙醇或无水乙醇充分溶解，或者用1mol/L的NaOH溶解，然后用蒸馏水定容到一定的浓度。以后者效果好。（）细胞分裂素，例如KT，应先用少量95%乙醇或

43、无水乙醇加34滴1mol/L的盐酸溶解，或直接用1mol/L HCl溶解，再用蒸馏水定容。（）GA3以95%酒精溶解（不耐高温，过滤灭菌）保存在棕色试剂瓶中。,116,注意：所有母液都要贴上标签，注明名称、配制倍数、日期，所有的母液都应保存在04冰箱中，若母液出现沉淀或霉团则不能继续使用。,117,在培养基的配制过程中，常需要用氢氧化钾或氢氧化钠和盐酸来来调整培养基的酸碱度：（1）、1摩尔/升KOH液的配制:称取57.1克KOH,加蒸馏水至1000毫升.（2）、1摩尔/升NaOH液的配制:称取40克NaOH,加蒸馏水至1000毫升.（3）、1摩尔/升HCL液的配制:取浓盐酸(比重1.19)、8

44、2.5毫升加蒸馏水至1000毫升.配制时先将浓盐酸缓缓加入约800毫升的蒸馏水中,然后用蒸馏水补足至1000毫升.,118,（二）、培养基的配制 1、计量 根据配制培养基的量和母液的浓度计算需要吸取母液的量，计算公式：吸取量 ml=培养基中物质的含量（mg/L）1000ml/母液浓度（mg/L）。2、移液取医用瓷缸一只，加入少量的蒸馏水，按照计算吸取母液的量依次吸取各母液置于医用瓷量杯中备用。,119,注意（1）用量筒或移液管量取培养基母液之前，必须用所量取的母液将量筒或移液管润洗2次。（2）量取母液时，不要漏掉或多加。（3）移液管不能混用。,120,3、称取琼脂蔗糖备用4、融化用搪瓷量杯量取

45、600700ml的蒸馏水放在电炉上，加入琼脂，边加热边用玻璃棒搅拌，直到液体呈半透明状将其取下，加入蔗糖。大烧杯底的外表面不能沾水，否则加热时烧杯容易炸裂，使溶液外溢，造成烫伤。,121,5、混合将融化的琼脂和母液充分混合，用蒸馏水定容到1000ml，来回混合几次。6、调pH用滴管吸取物质的量浓度为1 mol/L的NaOH或HCl溶液，逐滴滴入溶化的培养基中，边滴边搅拌，并随时用精密的pH试纸(5.47.0)测培养基的pH，一直到培养基的pH达到要求为止(在调制时要比目标pH值偏高0.20.5个单位，因为培养基在灭菌过程中由于糖等物质的降解，pH值会下降0.20.5个单位左右)。,122,7、

46、分装溶化的培养基应该趁热分装。注意不要让培养基沾到瓶口和瓶壁上。锥形瓶中培养基的量约为锥形瓶容量的1/51/4。每1L培养基，可分装2030瓶。8、包扎用封口膜封口，外边可加一层牛皮纸，扎好绳子，用铅笔或碳素墨水笔在牛皮纸上写上培养基的代号。9、培养基的灭菌,123,4 培养条件的选择 培养中温度、光照、湿度等各种环境条件，培养基组成、pH值、渗透压等各种化学环境条件都会影响组织,124,一.光照的影响,培养中光照也是重要的条件之一，主要表现在光强、光质、以及光周期等方面：光周期：黑暗与光照交替的时间 光 量：光照强度 光 质：光的波长,125,1、光周期对植物细胞脱分化和再分化的效应例1：黑

47、暗中培养的烟草花药，其胚状体的分化与幼植物的 生长，同经光照培养一样的多例2：短日照敏感的葡萄品种，它的茎切段，仅在短日照条 件下才能分化成根例3：对日照不敏感的葡萄品种，可在任何光周期下分化成 根结论：光周期的需要与否，应根据植物种类、培养的目的来决定,126,离体培养中光周期的调节最常用的周期是16h的光照，8h的黑暗。愈伤组织诱导阶段，一般采用三种做法：全暗、周期性光照、散射性光照。依据植物种类不同做法不同，多数植物适合全暗或周期性光照，器官发生阶段：一般给予周期性光照比较好。,127,2、光量的影响 光照强度对培养细胞的增殖和器官的分化有重要影响，从目前的研究情况看，光照强度对外植物体

48、、细胞的最初分裂有明显的影响。一般来说，光照强度较强，幼苗生长的粗壮，而光照强度较弱幼苗容易徒长。离体培养条件下常用的光量，一般为1000-4000lx（勒克斯）。离体培养中通常难以达到4000lx，一般光量在2000-3000lx。光照强度的高低直接影响器官分化的频率。高光量可以降低植物体内生长素水平，低光量使植物体内生长素素水平较高，容易生根,128,3、光质的影响 光质对愈伤组织诱导，培养组织的增殖以及器官的分化都有明显的影响。如百合珠芽在红光下培养，2周后，分化出愈伤组织。但在蓝光下培养，几周后才出现愈伤组织，而唐菖蒲子球块接种15天后，在蓝光下培养首先出现芽，形成的幼苗生长旺盛，而白

49、光下幼苗纤细。离体培养条件下，一般用日光灯进行光照，光谱成分主要是蓝紫光，波长为419-467nm。对芽分化有效光谱成分为蓝紫光，根分化则受600-680nm所刺激。,129,二.温度的影响,培养都是在2327之间进行，一般采用252。喜温性植物：茄科、禾本科、兰科等。培养温度一般控制在26-28 冷凉性植物：百合科、十字花科、菊科等。通常培养温度控制在18-22 或25,130,三.湿度的影响,组织培养中湿度的影响有两个方面：一是培养容器内的湿度条件，容器内主要受培养基水分含量和封口材料的影响。一是环境的湿度条件。环境的相对湿度一般要求7080%。常用加湿器或经常洒水的方法来调节湿度。,13

50、1,四.pH值,不同的植物对培养基最适PH值的要求也是不同的（见表），大多在5.5-6.5左右，一般培养基皆要求5.8，这基本能适应大多数植物培养的需要。,132,133,一般来说PH值高于6.5时，培养基全变硬；低于5时，琼脂不能很好地凝固。因为高温灭菌会降低PH值（约0.2-0.3个PH值）因此在配制时常提高PH值0.2-0.3单位。,134,五.渗透压,培养基中由于有添加的盐类、蔗糖等化合物，因此，而影响到渗透压的变化。通常1-2个大气压对植物生长有促进作用，2个大气压以上就对植物生长有阻碍作用，而5-6个大气压植物生长就会完全停止，6个大气压植物细胞就不能生存,135,渗透压调节物质