[工学]产壳聚糖酶菌株的筛选.doc
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1、毕业设计(论文)开题报告理工类题 目: 壳聚糖酶产生菌的筛选 学 院: 海洋学院 专业班级: 生物工程 生工081 学生姓名: 查玉龙 学 号: 040822136 指导教师: 赵玉巧(教授) 2012年 3 月 2 日淮海工学院毕业设计(论文)开题报告1.课题研究的意义,国内外研究现状、水平和发展趋势(1) 课题研究的意义:远在几千年前本草纲目中早已有蟹壳粉的记录,可见古人早已将壳聚糖做为医疗之用。根据现代医学研究。壳聚糖是继蛋白质、脂肪、碳水化合物、维生素、矿物质之后人体不可缺少又一生命要素,对人体健康有八大作用;壳聚糖是目前宇宙中发现的唯一带正电荷的阳离子食物纤维,与人体具有良好的亲和性
2、。是现代病、常见病的克星,临床验证它对人体的健康有八大功能。 减肥调脂;美容护肤、靓丽容颜;强化免疫系统、抑制肿瘤;保肝护肝、防醉酒;防治糖尿病;防治高血压;促进肠道有益菌繁殖吸附;排出体内重金属。 (2) 国内外研究现状、水平:自1967年第一篇壳聚糖文献报道以来,国际上关于壳聚糖公开发表的研究论文专利接近3000篇,以日本、韩国及中国的文章专利报道居多。目前壳聚糖已在日本、韩国、美国、加拿大等国家应用于日常食品、保健品中。我国壳聚糖的研究开发虽起步较晚,但2000年后国内文献专利数量明显增加,壳聚糖产品种类数量快速增长,目前正处在快速发展阶段。国外对壳聚糖酶的研究已深入到分子水平,侧重于研
3、究不同来源的壳聚糖酶的晶体结构与催化作用机理;国内对壳聚糖酶的研究日益增多,主要是从自然界中筛选产酶活性较高的微生物菌种,进行诱变选育,优化发酵工艺与酶解条件,以期获得产酶量较大的菌种和活性较高的壳聚糖酶。(3) 发展趋势: 壳聚糖是一种新材料,对人类社会的发展与进步有着巨大的作用。壳聚糖已应用于许多领域中,其中化妆品,保健品,食品工业等行业对壳聚糖的需求增长最快;在医药、化工、造纸、农业、环保、轻纺等领域中正在得到广泛的应用。淮海工学院毕业设计(论文)开题报告2.课题的基本内容,可能遇到的困难,提出解决问题的方法和措施(1) 课题的基本内容:调查并充分查阅资料预实验设计实验方案采样富集培养纯
4、种分离斜面保藏复筛较优菌株斜面保藏复证菌株保藏。(2) 可能遇到的困难: 富集,初筛,复筛,复证培养基的选择。 纯种分离:平板划线时,分离不出单菌落。 测出酶活的大小不如意。(3) 提出解决问题的方法和措施: 调查和搜集各方面资料,多做预实验并咨询老师,调整不同的培养基。 确保无菌操作,掌握平板划线分离法,要多练多做。 积累前面取样的经验,找到富含目标菌种的样品源。3.课题拟采用的研究手段(途径)和可行性分析(1) 研究手段: Minoru Yabuki 方法制胶体壳聚糖; DNS测还原糖; 生产性能实验测酶活。 (2) 可行性分析: DNS测还原糖通过DNS显示剂与还原糖结合显色,测其OD值
5、,显色与还原糖含量,OD成正比。 生产性能实验测酶活,通过测定酶活,鉴定菌种优良以及生产的可行性。 淮海工学院毕业设计(论文)开题报告指导教师意见(对课题的深度、广度及工作量的意见和对设计结果的预测)指导教师(签名) 年 月 日系审查意见:系主任(签名): 年 月 日毕业设计(论文)外文资料翻译学 院: 海洋学院 专业班级: 生物工程 生工081 学生姓名: 查玉龙 学 号: 040822136 指导教师: 赵玉巧(教授) 外文出处:Process Biochemistry 43 (2008) 132-138 附 件:1.外文资料翻译译文; 2.外文原文 指导教师评语:签名: 年 月 日从纳豆
6、激酶产生菌TKU007提取出的壳聚糖酶的分离纯化及性质研究摘 要:从以对虾壳为唯一C/N源的Bacillus subtilisTKU007菌的培养上清液纯化出来的一种表面活性剂稳定的胞外壳聚糖酶。TKU007壳聚糖酶受到纳豆激酶的抑制,这种抑制作用出现在第一天。用SDS-PAGE和凝胶过滤法测得TKU007壳聚糖酶分子质量分别为25kDa和33kDa。这种酶的最适pH、最适温度、pH稳定范围以及热稳定性分别为pH7、37、pH 49以及37。TKU007壳聚糖酶第226个氨基酸到第229个氨基酸与B.Subtility D gamma- DL-glut-amyl水解酶的氨基酸序列相似,该酶的氨
7、基酸序列与B.Subtil-is纳豆激酶的氨基酸序列相似。关键词:Bacillus subtilisTK;壳聚糖酶; 纳豆激酶简介在加工的过程中对虾的头部、外壳以及尾部被去除并且这些质量占了虾的50,由于无节制的堆积,随着不可食部分的增加,这些正在造成环境的污染。因此,为了处理上述问题,生产出虾的副产品必须得以关注。通过利用几丁质和干贝壳中的蛋白质,工业加工虾过程可以使经济分别从14增加到32,从18增加到42。甲壳类材料的生物转换已经被提议作为甲壳类动物废料处理的手段。为了进一步提高对海洋中甲壳类动物废料的利用,最近我们研究了甲壳类废料的生物的转化,进而产生一种蛋白酶式壳聚糖酶。为了获得有用
8、的碱性蛋白酶式壳聚糖酶,我们成功的分离出了一些嗜碱菌,这种菌通过利用以对虾壳作为唯一C/N源,可以产生胞外蛋白酶式壳聚糖酶,这些酶中有一种TKU007的细菌,在培养液上清液中第二天可以最大地产生且有表面活性剂的和溶解稳定性的碱性蛋白酶,壳聚糖酶的活性出现在培养基第一天,而随着蛋白酶活性的出现而消失。壳聚糖酶已经在各种细菌包括在芽孢杆菌中发现。在这些已经公布的壳聚糖酶产生菌中,没有发现一种可以同时产生纳豆激酶和壳聚糖酶的菌株。因为由于随着蛋白酶的出现,壳聚糖酶的消失,因此,在本论文中,我们尝试使用对虾壳粉作为廉价的C/N源来优化TKU007的培养条件,让其最大量生产壳聚糖酶。此外,这种新的壳聚糖
9、酶再此研究中也可以纯化、描述并且与从其他菌中产生的壳聚糖酶进行比较。材料和方法材料如前所述,鱿鱼粉(spp),虾壳粉(asp),蟹壳粉(sc sp)用于这些实验的准备,鱿鱼粉、虾壳和蟹壳从 Shin-Ma Frozen Food Co. (I-An, Taiwan)购买,KM和KB 从Ai-Cu Food Co. (I-An, Taiwan)购买。在spp、asp和sc sp的准备过程中,鱿鱼、虾壳和蟹壳先用自来水冲洗干净,然后烘干。干燥的原料磨成粉末作为C源来生产蛋白酶。来自CFSS和CFCS的几丁质从 Biotech Co. (Eau-squooshy, Taiwan),溶解性壳聚糖(82
10、脱乙酰度)从Penwell Biotech Co.(Tau-Tyumen, Taiwan)获得。几丁质粉末从Sigma Chemical Co. (St. Louis, MO)购买。胶体壳聚糖按照 Jennerian的方法从粉末壳聚糖制取。 DEAE-Agarose CL-6B和Acrocephaly S-100从Amer sham Pharmacy Biotech AB (Uppsala,Sweden)购买,所有其他试剂用最高等级的。方法菌体和酶的生产TKU007是一种蛋白酶产生菌,从台湾的土壤中分离出来并且在37营养琼脂平板上生长。在已知的培养条件中,该菌可以在包含0.1KHPO 4 和
11、0.05 MgSO4.7H2O (pH 7),并且补充0.5-2的碳源的基础培养基上生长,碳源包括SPP、SSP、SCSP、CFSS、KM、KB和酪蛋白。100ml的组合培养基放在250ml的锥形瓶中,在有氧的条件下,摇床(150rpm)培养1-5天。然后在4、12000r/min离心20分钟后,上清液收集用来测量酶活。壳聚糖酶的纯化壳聚糖酶的产生为了产生壳聚糖酶,将TKU007在200ml的液体培养基中生长,该培养基成分包含1.5SSP、0.1K2HPO 4、0.05MgSO4.7H2O (pH 7),两毫升的种子液注入到200ml的培养基中,30在pH 7摇床培养一天。然后将培养液在4、1
12、2000r/min离心20min,上清液用色谱分析进一步提纯。阴离子交换树脂管柱(DEAE-色谱分析);CL-6色谱分析将(608g/L)(NH4)2SO4加入上清液中,混合液在4下放置一夜,然后在4、12000r/min离心20min,并且形成沉淀该沉淀物通过离心收集起来。然后将沉淀物溶于50mm的磷酸钠缓冲液,并在缓冲液中透析。将透析液上柱,并与pH7的磷酸盐缓冲液平衡,如图一所示,壳聚糖酶被洗掉并且在包含NaCl缓冲液的柱中重新测得,通过(NH4)2SO4沉淀,高酶活部分结合并集中到了一起。通过离心分离收集沉淀物,并将其溶于50mm的磷酸钠缓冲液(pH7)。葡聚糖凝胶S-100层析法将生
13、成的酶液加到葡聚糖凝胶S-100凝胶过滤柱,并且与50mm的磷酸钠缓冲液(pH7)平衡,然后用同样的缓冲液洗涤,这样就得到壳聚糖酶活性的一个高峰,组合,作为纯化制备C1。蛋白质测定蛋白质含量可以用Bradford法测定,通过BioRad染色剂浓缩,并且用牛血清蛋白作为标准,柱层析法后,通过测定280nm吸光度来估测蛋白质浓度。酶活的测定壳聚糖酶活性测定以壳聚糖为底物,将0.5毫升酶液加入1.0毫升的底物溶液中,其中包括0.2(pH7溶于50mm的磷酸钠缓冲液)的胶体壳聚糖。混合液于37培养30min,离心后,上清液中还原糖的量用 Imoto 和Yagishita方法测得。其中Yagishita
14、以氨基葡萄糖作为参考。一个酶活力单位定义为每分钟催化1mmol酪氨酸的酶量。分子量的测定纯化的蛋白酶分子量用SDS-PAGE测定。标准蛋白使用磷酸化酶(b)(分子量97.4kDa),清蛋白(66.2kDa),卵清蛋白(45kDa),碳酸酐酶(30kDa),胰蛋白酶抑制剂(20.1kDa)和-乳清蛋白(14.4kDa)作为标准。在电泳之前,蛋白暴露在含有-m的10mm磷酸盐缓冲液中一夜。凝胶剂在甲醇-乙酸水溶液中被考马斯亮蓝R-250染色,并被7醋酸脱色。TKU007壳聚糖酶分子量通过凝胶过滤测定,样品和标准蛋白被应用于葡聚糖凝胶S-100柱与50mm磷酸盐缓冲液平衡。牛血清蛋白一分子量67kD
15、a,芽孢杆菌属-淀粉酶(50kDa)和鸡蛋清溶菌酶(14kDa)作为分子质量数指示器。氨基酸序列测定纯化的酶通过SDS-PAGE分离并且依靠印记转移到聚乙二烯二氟化物膜上。模糊蛋白从膜上剪掉,并且应用生物系统491蛋白测序模型进行N-末端氨基酸序列测定。结果与讨论培养条件和酶的产生为了讨论通气率对壳聚糖酶产生的影响,在我们初步的试验中,我们发现200ml的基础培养基0.1K2HPO 4、0.05MgSO4.7H2O (pH 7)包含1.5SSP在30更有利于TKU007菌株产生壳聚糖酶。为了研究C/N对壳聚糖酶产生的影响,在200ml的基础培养基包含额外的C、N源。分别为0.5-2的SPP、S
16、SP、SCSP、CFSS、KM、KB和酪蛋白。在30培养1-5天。结果表明1.5SSP(0.03U/ml,1天)是 最适合作为壳聚糖酶产生的诱导物,换句话说,200ml包含1.5SSP的基础培养基于30培养一天,是TKU007菌株产生壳聚糖酶很好的培养条件。结果表明,壳聚糖酶和几丁质酶最大的酶活都出现在第一天,并且从那以后随着蛋白酶的出现,活力在显著地降低。为了研究壳聚糖酶的活力随着蛋白酶出现而降低的原因,TKU007分别培养在壳聚糖酶和蛋白酶产生的最适条件下。TKU007在150r/min摇床培养,100ml两天(为了蛋白酶产生);200ml一天(为了壳聚糖酶产生)。通过TKU007的上清液
17、,我们检测蛋白酶和壳聚糖酶的活力,相同量的蛋白酶和壳聚糖酶液混合在一起,并在37分别反应0、15、30、60min。结果如表1所示,反应60min后,蛋白酶保留了71活力。但是,壳聚糖酶活力只有23。以此来推测壳聚糖酶活性下降原因。可能是该壳聚糖酶的热不稳定性。用50mm磷酸盐缓冲液来替代蛋白酶,并且与壳聚糖酶于37反应60min。结果表明,壳聚糖酶仍然保留68的活力。因此,可以推知,蛋白酶对壳聚糖酶的水解作用是该酶活性下降的主要原因。如果壳聚糖酶可以被蛋白酶以任意内切形式降解,这时它就可以用SDS-PAGE检测。因此,蛋白酶和壳聚糖酶反应液的任意反应时间用SDS-PAGE分析。结果并不能显示
18、蛋白质分子量的任何重大改变。以上结果表明,蛋白酶可以外切水解壳聚糖酶N-末端和C-末端其他部位,并且引起壳聚糖酶活力下降。与这个研究相似,B. subtilis IMR-NK1也是蛋白酶和壳聚糖酶产生菌株,由于恢复产量要低于纯化的壳聚糖酶,作者推测蛋白酶的水解作用引起壳聚糖酶活力下降。在进一步纯化壳聚糖酶之前,用100ml上清液作为初步实验的样品来调查包含壳聚糖酶和蛋白酶在DEAE-Sep上的吸附作用。这两种上清液A(蛋白酶)和B(壳聚糖酶),依据以上规定的最适条件都能产生。结果如表2所示,蛋白酶不能被DEAE-Sep吸附,然而壳聚糖酶可以被DEAE-Sep吸附。换句话来说,通过DEAE-Se
19、p,两种酶可以有效的分开,并且恢复的壳聚糖酶量可以高达69,因此,DEAE-Sep用于TKU007壳聚糖酶纯化的进一步研究。分离和纯化从上清液中纯化的TKU007壳聚糖酶在第二部分得到描述。如表3所示,纯化的步骤结合起来,可以纯化17.2倍。纯化酶总体上活力产量达到48,特定的酶活力为0.0603U/mg。最终获得TKU007壳聚糖酶量为680mg,纯化的酶用SDS-PAGE也被证实是均质的。TKU007的分子量用SDS-PAGE和凝胶电泳分别测得是25kDa和33kDa。如图二。TKU007壳聚糖酶分子量与其他杆菌壳聚糖酶有明显的不同,如:B. subtilis IMR-NK1 (41 kD
20、a)、B. cereus S1(45 kDa)、B. ehimensis EAG1 (31 kDa)、B. Megaterium P1 (43, 39.5, 22 kDa)、Bacillus sp. KCTC0377BP (45 kDa)、Bacillus sp. MET1299 (52 kDa)、Bacillus sp. 739(46 kDa)、Bacillus sp. P16 (45 kDa)和Bacillus sp. 7-M (41 kDa)、B. subtilis GM9804(27 kDa)、B. subtilis KH-1 (28 kDa)和Bacillis sp.DAU101 (
21、27 kDa)壳聚糖酶是唯一产Bacillus壳聚糖酶菌株,它们与B. subtilis TKU007有相似的分子量。pH和温度对酶活的影响在标准实验条件下,通过使用溶解性壳聚糖作为底物来研究pH对催化作用的影响。pH7时酶活性达到最大值,在不同pH值下37培养60min后通过测定pH7时剩余酶活来测定壳聚糖酶活的pH稳定值,壳聚糖酶的活力在pH4-9。(如图3) 通过以可溶性壳聚糖作为底物来研究温度对壳聚糖酶活性影响。TKU007壳聚糖酶的最适温度是37,为了研究TKU007壳聚糖酶的热稳定性,在pH7、50mm磷酸盐缓冲液中的酶液在各种温度下放置60min。然后测定残存的酶活,在25到30
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