植物原生质体培养课件.ppt
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1、植物原生质体培养,第一节 原生质体的用途,植物原生质体(protoplast)是没有细胞壁的裸露细胞,它在一些研究方面具有独特的优势。,1.原生质体是研究细胞骨架、细胞壁的形成、细胞膜的结构、大分子物质进出细胞过程与机理等问题的良好实验体系。2.转基因的良好受体:与外源DNA(如质粒)共培养时,原生质体可以直接吸收外源DNA,并整合到染色体上,从而实现对植物细胞的遗传转化,进一步通过植株再生就可得到转基因植物。,GFP质粒浓度对烟草原生质体转基因效率的影响,GFP=绿色荧光蛋白,PEG介导的甜橙原生质体转GFP,PCR分析,Sothern杂交分析,3.体细胞杂交(somatic hybridi
2、zation):由于原生质体没有细胞壁,所以不同的原生质体可以相互靠近,发生融合。2种不同植物体细胞发生融合的过程,称为体细胞杂交。所得到的融合细胞为杂种细胞,再通过植株再生就可能创造出新的植物个体。,Tomato-potato hybrid,第二节 原生质体的分离,要进行原生质体培养和操作,就必需有大量高质量的原生质体。分离原生质体主要采用酶解法。酶解法:利用酶降解植物细胞壁而获得原生质体。酶解法分离原生质体的效率高,用少量的材料就可以得到大量完整的原生质体,已成为分离原生质体的最主要方法。,一、材料的选择,用于分离原生质体的植物材料应是细胞分裂旺盛的材料,如幼嫩小苗的根、胚轴、子叶、幼叶等
3、;处于快速生长期的愈伤组织或悬浮细胞。对于容易培养、再生能力强的叶植物(如烟草、菊花、胡萝卜、矮牵牛等)也可用完全展开的叶片作材料。,二、酶解处理,1.酶解液准备:由于植物细胞壁的主要成分是纤维素、半纤维素和果胶质组成的,所以酶解液中一般应含有纤维素酶、半纤维素酶和果胶酶,浓度为0.5-2.0%。在配酶解液时可以用原生质体培养基作溶解剂,也可用专门的溶液(CPW溶液)作溶解剂。,CPW=Cell-Protoplast Wash Medium KH2PO4 27.2 mg/LKNO3 101.0 mg/LCaCl22H2O 148.0 mg/LMgSO47H2O 246.0 mg/LKI 0.1
4、6 mg/LCu SO45H2O 0.025 mg/L,为了保持释放出来的原生质体的活力和膜稳定性,必须使原生质体处于一个等渗环境中。因此,酶解液中 必须加入渗透压调节剂。常用的渗透压调节剂有葡萄糖、甘露醇和山梨醇等,浓度一般为0.35-0.8mol/L。具体用什么浓度,可根据材料的水势来确定。,酶解液配制好后,要用过滤灭菌的方法进行灭菌,并且随配随用。,2.酶解:将植物材料放入酶解液中、释放出原生质体的过程。叶片、幼茎和根等材料要切成小片;叶片最好撕去下表皮。悬浮细胞要离心后再酶解。材料与酶解液的比例:2-10g/100ml酶解液。一般在252、黑暗中酶解,期间轻轻摇动几次,或放在50rpm
5、的摇床上。酶解时间因材料而异,2小时十几小时。,苜蓿叶片的酶解法分离原生质体,三、原生质体的收集与纯化,过滤:酶解结束后,将酶解物通过孔径为20-80m的不锈钢筛网过滤,除去未被酶解的组织块和细胞团。离心:滤液转到离心管中在50g下离心5min。反复洗涤:离心结束后,弃去上清液,用培养基和原生质体洗液重新悬浮沉淀的原生质体,再离心。如此反复2-4次,就可以将残留的酶液去掉。纯化:用含高浓度(21%)蔗糖的培养基进行离心、纯化,完整的原生质体漂浮在上清液的上部。,苜蓿叶片原生质体的纯化,完整的原生质体,5.收集原生质体:,完整的原生质体,四、原生质体活力的测定,原生质体活力的高低对后来的原生质体
6、培养和融合影响极大。原生质体分离过程中的任何一个步骤都会影响到原生质体的活力,因此,必须十分小心。测定原生质体活力的方法常用荧光素双醋酸酯(FDA)染色法。原生质体活力(%)=发荧光的原生质体数/原生质体总数100,FDA,FDA,荧光素,酶水解,紫外光,荧光素,完整、有活力的原生质体,细胞核,荧光素双醋酸酯,第三节 原生质体培养,原生质体制备好后,用培养基将原生质体调至一定的密度(最低起始细胞密度以上),及时地进行培养。,在适宜的培养条件下,原生质体数小时后开始形成新的细胞壁,在显微镜下可见原生质体由圆球形逐渐变为方形、多边形等。约24-36h后,原生质体开始发生第一次分裂;以后随着细胞分裂
7、,原生质体就形成细胞团,进一步诱导出植株。,苜蓿原生质体分裂,6 weeks,8 weeks,苜蓿原生质体形成细胞团,苜蓿原生质体再生植株,转GFP基因的苜蓿原生质体再生植株,夜来香原生质体植株再生,1天,5天,7天,10天,4周,5周,7周,单倍体烟草原生质体培养与植株再生,杨树原生质体培养植株再生,7000,000cells/g fresh leaves25000cells/ml;NH4NO3-free MS+5 M 2,4-D+0.05 TDZ M.PE:34.7%at day 14,杨树原生质体培养植株再生,Liquid MS+5 M 2,4-D;MS+10 M KT or 1 M T
8、DZ.,杨树原生质体培养植株再生,1/2MS,将含原生质体的培养液倒入培养皿底部,使其成一薄层,封口后进行培养。,1.液体浅层培养,原生质体的培养方法,含原生质体的液体培养基,特点:操作简单,对原生质体的损伤小;容易添加新鲜培养基和转移培养物;原生质体分布不均匀,易发生原生质体之间粘连;原生质体的位置不能固定,所以不能跟踪观察单个原生质体的生长过程。,2.固体培养(平板培养),35左右的琼脂或琼脂糖培养基与原生质体溶液混合,摇匀,倒入培养皿中,琼脂或琼脂糖凝固后,就成一薄层。进行平板培养时,要注意混合时培养基的温度。温度高对原生质体的伤害大;温度低,培养基凝固,原生质体与培养基不能混匀。特点:
9、原生质体被固定,易观察、统计原生质体的分裂情况;添加新鲜培养基和转移培养物比较麻烦。,含原生质体的固体培养基,(1)液体浅层固体平板培养双层培养法:培养皿底部铺一层琼脂或琼脂糖培养基,再将原生质体悬浮液倒入或滴入固体培养基表面。优点是固体培养基中的营养可以缓慢释放倒液体培养基中。如果在固体培养基中加入活性炭,还可以吸附培养物分泌的有毒物质,促进原生质体的生长和分裂。,3.液体固体结合培养,固体培养基,含原生质体的液体培养基,(2)琼脂糖珠培养:用移液管吸取含原生质体的琼脂糖培养基,滴在培养皿或三角瓶中,待其凝固后,再加入适量的液体培养基,进行旋转培养。也可以等含原生质体的琼脂糖培养基凝固后,用
10、刀将其切成小块,再放入液体培养基中培养。改进了培养物的通气和营养环境,从而促进可以促进原生质体的分裂及细胞团的形成。,含原生质体的琼脂糖珠,液体培养基,在培养过程中,原生质体分裂开始以后,培养基中的甘露醇或山梨醇的浓度要逐渐降低,否则会影响细胞的继续生长、分裂。待原生质体形成的细胞团(愈伤组织)达到1mm时,应将细胞团转移到新鲜的培养基上继续培养。所形成的愈伤组织就可以按照普通的愈伤组织进行培养和植株再生。,三、影响原生质体培养效果的因素,原生质体培养效果的好坏,也可以用植板率来衡量。1.植物材料:用于分离原生质体的植物材料对原生质体后来培养的效果影响极大。不同的植物、同一植物不同的品种,其遗
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