实验五 根系活力的测定.docx

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1、实验五 根系活力的测定实验五 根系活力的测定 一、意义 根系具有吸收养分、水分、支持植株和合成有机物的能力。它是作物赖以生存的基础。根系的生长和地上部的生长是密切相关的和互为依存的，根系生长好才能保证地上部各器官也相应地繁茂茁壮。因此，研究根系的活力对于搞清作物的根部营养，提高作物根系吸收养分、水分能力等具有重要的实际意义。 在科学研究中常把根系的呼吸强度、阳离子代换量、对有色物质的吸附量和ATP酶的活性等作为作物根系活力的指标。 二、测定原理及方法 根系表面积的测定 1甲烯兰吸附法 原理：根据植物根系吸收矿质养分的理论，根系对溶质的最初吸收具有吸附的特性。假定吸收时在根系表面均匀地覆盖了一层

2、被吸附物质的单分子层，因此能根据根系对某物质的吸附量来测定根的吸收面积。常用甲烯兰作为被吸附物质，已知1mg甲烯兰胶单分子层时占用l.1平方米的面积。故可由它被吸附前后溶液的浓度变化用比色法准确地测定根系总吸收面积。 当根系在甲烯兰溶液中已达饱和并仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把已吸附在根表的甲烯兰吸收到细胞中去，并继续吸附甲烯兰。因此,又可以从后一吸附量中求出根系的活跃吸收面积。 方法： 取出完整根系，小心地清洗掉根表吸持的砂粒和土粒，洗诤后用吸水纸除去根表水分。 将根放入有刻度的容器中试管或置筒，缓缓加水至某一刻度，取出根系待水从根上流入容器中，准确用滴定管加水至刻度处，加入水量即为根系

3、的总体积，并记载。 根据根系的总体积，吸取0.0002 N的甲烯兰溶液，吸取量约为根系总体积的十倍，分别放入三个有1、2、3编号的小烧杯中，准确记下每杯所取溶液的毫升数。 取量好体积的根系，用吸水纸小心吸去根表水分，切忌损伤根系，依次浸入盛有甲烯兰溶液的小烧杯中，在每杯中浸泡的时间为l.5分钟。注意每次取出时都要使甲烯兰溶液从根表流回到原烧杯中。 从三个烧杯中各取1ml溶液放入刻度试管中，再稀释至l0倍，用光电比色计在660nm结果计算： 总吸收面积= (ClC1)V12 1.1 活跃吸收面积= V3 1.1 活跃吸收面积 ()活跃吸收面积根的体积cm 3321l波长处测定其光密度，并根据标准

4、曲线，求出每杯浸过根系后溶液中剩下的甲烯兰毫克数。 ： Cl、C2、C31、2、3号烧杯中加入甲烯兰溶液的浓度mgml Cl1、C21、C311、2、3号烧杯中浸根后甲烯兰溶液的浓度mgml Vl、V2、V31、2、3号烧杯中加入甲烯兰溶液的量mL）。 仪器试剂及标准溶液的配制： 刻度试管或量筒。 50 ml小烧杯：3个 光电比色计：一台 0.0002N甲烯兰溶液：精确称取0.0640g甲烯兰，放入烧杯中加水溶解，并转入1000ml容量瓶中，加水定容。 甲烯兰标准溶液：吸取0.0002 N的甲烯兰溶液15.6ml，放入100ml容量瓶中，加水至刻度摇匀。此液每毫升含甲烯兰0.010mg，取刻度

5、试管7支，编号，依次吸取该溶液0,1.0，2.0， 4.0，6.0，8.0，10.0ml，分别加水至l0ml，依次相当于每毫升含甲烯兰0，0.000l，0.002，0.004，0.006, 0.0008，0.010 mg，依同法比色。 2.硝酸钙重量法： (1)原理：当干燥的植物根系浸入一种溶液中，然后捞出淋干表面的溶液，那么就会有一部分溶液被吸附在根系表面，溶液的重量就会减少。硝酸钙是经过研究后筛选出的最为理想的物质，因为它是中等分子分子量64.1且极易溶解于水。当硝酸钙和水以6:1的比例配制成溶液时，很易吸附在根系表面，这样可以通过重量差减法求出被根系吸附的量，以此表示根系的表面积。 (2

6、)方法步骤： 将植物根系冲洗干净，然后风干备用。 将6份的Ca(NO3)2加入1份R 的水中，轻微的加热使其溶解，配制成Ca2 ：H2O为6 ：1的溶液备用。 根据根系的大小在烧杯中取一定量的上述溶液，要充分保证根系全部浸入，放在天平或台秤上，记录其重量。 将风干的根系浸入溶液l0秒钟，然后取出根系在烧杯上方停留30秒钟，使表面的多余溶液淋进烧杯，记录其重量，两次重量差GG0- Gl就表示被根系吸附的量，即根系表面积的大小。 仪器和试剂 天平或台秤：一架。 镊子：一把 烧杯 玻棒 Ca(NO3)2溶液 二根系活力的测定 l.- 萘胺法 原理：根对- 萘胺的氧化力与其呼吸强度有着密切关系，根据研

7、究认为根表对- 萘胺的氧化作用是在过氧化物酶的催化下进行的，使部分根表染成红色，其反应如下： 故可根据一萘胺溶液与根系接触一定时间后，测定溶液中未被氧化的- 萘胺含量，确定根的活力。 溶液中未被氧化的- 萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成了红色的偶氮染料，可用比色法测定- 萘胺含量。反应如下： 方法 取出完整根系小心洗净，再用吸水纸吸干根上的水后，淮确称取鲜根l- 2.0g，放入100ml三角瓶中，加入40ppm的一萘胺溶液和磷酸缓冲液的等量混合液50ml，轻轻摇动。 静置5l0分钟，根的迅速吸附业已完成，从瓶中取出2 ml溶液，放入20 ml刻度试管中，以此刻作为零时，将其余的

8、溶液塞好瓶塞，放在25的振荡机上，振荡36小时。 振荡完毕后再从瓶中吸取2 ml溶液放入另个20ml刻度试管中。 在讲行上述步骤时，因萘胺溶液会自动氧化，必须同时作无根的同样操作下的空白试验。 在上述二次所取及空白试验二次所取的2 ml测定液中，各加蒸馏水I0 ml，混匀后再加人1的对氨基苯磺酸1ml和10ppm的亚硝酸钠溶液1mL，混匀，置室温，然后加入蒸馏水，定容至20 ml。在20-60分钟内在510 nm波长比色，记下光密度，由标准曲线查出- 萘胺含量。 (3)结果计算： 一萘胺氧化总量g=第一次吸取液测定值- 第二次吸取液洇定值gml 24 ml 一萘胺自发氧化量g一 空白试验第二次

9、吸取液溺定值gml）2 4 ml 一萘胺生物氧化强度= 4仪器试剂及萘胺标准溶液的配制 三角瓶：100ml 2个 刻度试管： 20m l 2个 移液管： 2 ml 1支，10ml 1支，1ml 2支 振荡机 光电比色计：一台 40ppm 一萘胺溶液：精确称取0.1000g分析纯萘胺放入50 ml蒸馏水中溶解须微微加热，冷却后定容至100 ml即为l000PPm，保存于棕色瓶中，置低温黑暗处保存，用前稀释25倍，即为40 ppm溶液。 l对氨基苯磺酸溶液：称取lg对氨基苯磺酸溶于100ml 30的乙酸中。 100 ppm亚硝酸钠溶液：称0.1g亚硝酸钠溶于l000ml蒸馏水中。 磷酸缓冲液(pH

10、7)，A液称取纯Na2 HPO42H2O 11.876g，溶于l000ml蒸馏水中;B液称取纯KH2PO4 9.078g溶于l000 ml蒸馏水中，A、B两种溶液以6:4的比例混合。 一萘胺标准溶液的配制： 用40ppm的一萘胺溶液，配制好40，30，20，15，5 ppm的标淮溶液。另取20ml刻度试管6支，编号，15管各加入不同浓度的萘胺标准溶液l ml，磷酸缓冲液1 ml，在第6支试管中，加蒸馏水l ml，磷酸缓冲液1ml，作为参比管。然后于每支试管中加入10 ml蒸馏水，1%对氨基苯磺酸1 ml和100 ppm的亚硝酸钠溶液1ml ,混匀。置室温下5分钟使之显色，然后加蒸馏水定容至20

11、ml，摇匀,在2060分钟内用510 nm波长下比色，以参比管光密度为零，读取各管的光密度，将结果绘制标准曲线。 2氯化三苯基四氮唑法 原理：氯化萘基唑是标准氧化还原电位为80毫伏的氧化还原物质，溶于水中为无色溶液，但还原后生成不溶于水的三苯基甲。生成的甲 呈稳定的红色，不会被空气中的氧自动氧化。所以被广泛用作酶试验的受氢体。植物根引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到加强，而被丙二酸、碘乙酸所严重抑制，所以，它能够测定琥珀(根活力) (ugh-1gFW-1) 一萘胺氧化总量(g) -萘胺自发氧化量(g) 反应时间根鲜重 酸脱氢酶的活性。由该酶活性表示根系活力。 方法步骤： T

12、TC标淮曲线的制作： 吸取0.2 ml 0.5的TTC标淮液放入10ml量瓶，加少许Na2S2O4粉末，摇匀后即产生红色甲 ，再加乙酸乙酯10ml，摇匀。然后分别取此液0.25，0.50，l.00，1.50，2.00 ml，置10 ml量瓶中，以乙酸乙酯定容至刻度，即得到TTC 0.025，0.05；0.10，0.15，0.20mg 的标准比色系列，以空白作参比，在485nm，光径1 cm下测定光密度，绘制标准曲线 。 称取样品0.5g，放入称量瓶，加入0.4TTC溶液和0.1M磷酸缓冲液的等量混合液l0ml，把根充分浸在溶液中，在37下保温1小时，然后加入1M硫酸2ml终止反应。 把根取出，

13、用粗滤纸吸干水分，投入研钵，加少量石英砂和乙酸乙酯研碎，以提取甲 ，将红色乙酸乙酯提取液移入l0 ml量瓶中, 并用少量乙酸乙酯洗残渣至白色，最后用乙酸乙酯定容至10ml，以空白试验作对照，在分光光度计上测定光密度，查标准曲线,求出TTC还原量。 结果计算： 仪器及试剂： 分光光度计。 分析天平托盘天平 4cm漏斗：l个 研钵：一套 量筒： 10ml 1个 刻度移液管：0.5ml l支，5ml 2支，2ml 3支。 容量瓶：l0ml 高型称量瓶：2个。 乙酸乙酯 连二亚硫酸钠分析纯。 lTTC溶液：准确称取TTC 1.000克，溶于99ml水中，用时稀释至需要刻度。 0.1 M，pH 7.5磷酸缓冲液。 lM硫酸：用量筒取比重为l.84的浓硫酸55.6 ml，边搅拌边加入到盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml. 注意事项： 每次测定的保温时间和温度要一致，否则各样品结果无可比性。 乙酸乙酯要分析纯，否则影响显色。 TTC还原强度= TTC还原量 根量时间