动物细胞培养生物反应器(可编辑).doc
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1、动物细胞培养生物反应器 动物细胞培养生物反应器 随着基因工程的发展,通过动物细胞的培养所生产出多种疗效高的药物、灵敏的诊断试剂及生物技术制品,目前在这一方向上正发展成为一支高新技术产业。由于动物细胞与微生物细胞有很大的差异,对体外培养有严格的要求,如动物细胞对剪切非常敏感,反应器的设计不能像微生物细胞那样高的剪切力,因此,传统的微生物细胞反应器应该经过改造才能适用动物生物反应器,根据动物细胞的特点,开发新型的生物反应器显得十分重要和迫切。一、动物细胞培养过程 (一)动物细胞培养概论 动物细胞培养(cell culture)是从动物体内取出细胞并分散成单个细胞,模拟体内的生长环境,在无菌、适温和
2、丰富的营养条件下,使细胞在体外继续生存、生长、增殖并维持结构和功能的一门技术。体外培养可分为原代培养(primary culture,亦称初代培养)和传代培养(subculture,亦称继代培养)。原代培养是指从机体内取出的细胞进行初次培养的过程。培养的细胞大约增殖10代左右称为原代细胞(primary cell);从原代培养的细胞继续转接培养称为传代培养。 动物细胞体外培养的历史可追溯到1907年,美国生物学家哈里森Harrison在无菌条件下,以淋巴液为培养基成功地在试管中培养了蛙胚神经组织达数周,并观察到细胞突起的生长过程,创立了体外组织培养法。1923年,法国学者卡勒尔设计的卡氏培养瓶
3、用于培养鸡胚的心肌组织取得成功,也使得多种动物组织培养获得成功。20世纪80年代以来,随着基因工程技术和细胞融合技术的迅速发展,人们已经能够把特定的外源基因通过PCR扩增,并转染到动物细胞内,得到高质量的表达,由此可生产各种特殊的生物制品。德国生物技术公司Hauser用一个含人的IFN-基因的科斯质粒pCOSIFN-NDA(36000碱基对)与质粒pHC792COS/tk+DNA(含有单疱疹病毒的tK基因)通过磷酸钙沉淀技术,共转移进入小鼠LK-细胞,从而得到含干扰素基因的能分泌干扰素的细胞克隆。近年来发展起来的淋巴细胞杂交瘤技术,能大量繁殖并生产单克隆抗体,品种不下万种,其中数百种已在医学和
4、生物学的各个领域得到了广泛的应用,使动物细胞培养进入了一个新的领域。到了90年代初期,世界单克隆抗体的销售已超过30亿美元,取得了明显的社会效益和经济效益。利用人工培养的动物细胞,可以分离和鉴定病毒,进行遗传工程、代谢及其调节方面的研究,并能根据其表达产物方面的优点(如转录后修饰和产物胞外分泌等),生产出许多与人类健康和生存密切相关的生物技术产品。因此,动物细胞培养工程正在逐步形成一支独特的高新技术产业,并显示出巨大的工业发展前景。 动物细胞的体外培养有三种类型,一类是悬浮培养,指细胞在培养器中自由悬浮生长的过程,主要用于非贴壁依赖性细胞,此类细胞体外生长不需贴壁,可采用微生物的方法在培养基中
5、悬浮培养。来源于血液、淋巴组织的细胞,许多肿瘤细胞(包括杂交瘤细胞)和许多重组细胞都属于此类细胞。由于是悬浮生长,细胞密度一般都较高,易于大规模生产,便于过程的控制。另一类是贴壁培养,指必须贴附在固体介质表面上生长的细胞培养,主要适用于贴壁依赖型细胞(亦称贴附型细胞),大多数动物细胞都属于这一类型。这类细胞生长需要附着于某些带适量正电荷的固体和半固体表面,细胞贴附生长后,不再是原有的形态,形态上一般单一化,主要有成纤维细胞型、上皮型、游走型和多形型等。再有一类是固定化培养,这类培养既适用于贴壁依赖性细胞,又适用于非贴壁依赖性细胞的包埋培养方式,具有细胞生长密度高、抗剪切力和抗污染能力强等优点。
6、由于所培养的细胞的不同,固定化培养的方式也有所不同,一般对于贴壁依赖性细胞通常采用胶原包埋,而对于非贴壁依赖性细胞则常用海藻酸钙包埋。常用的细胞固定化的方法主要有吸附、共价贴附、离子/共价交联、包埋和微囊化等。 (二)动物细胞体外培养的特点 动物细胞属于真核细胞,与细菌等原核细胞相比,其进化程度更高,结构和成分更复杂,功能也更全面。虽然动物细胞培养的基本原理和微生物细胞相同,但动物细胞对营养的要求更为苛刻,除氨基酸、维生素、盐类、葡萄糖或半乳糖等基本营养元素外,还需要血清。动物细胞对于培养环境的适应性更差,对环境更加敏感,包括pH、溶解氧、温度、剪切力等都比微生物有更高的要求,需要严格控制。另
7、外,动物细胞相对于微生物来说,生长比较缓慢,因而培养时间较长。在细胞培养中,离体细胞对任何毒性物质都十分敏感,所以还需要防治污染问题,微生物、细胞残余物以及非营养的化学物质都有可能导致动物细胞培养物的污染。这些都给动物细胞的培养带来了一定的难度。 (三)动物细胞培养条件 1.无污染环境 细胞一旦离开机体,对环境无毒、无菌的要求也更高。因为动物体内存在着强大的免疫系统和肝脏等解毒器官,对侵入体内的少量的有毒物质,可进行抵抗和消毒,使细胞不受危害。当细胞被置于体外培养时,由于失去了抵抗能力,一旦污染便很容易导致细胞死亡。因此,在动物细胞进行体外培养时,保持无污染的环境是维持细胞生存的基本条件。 2
8、.温度 温度是细胞在体外生存的基本条件之一,来源不同的动物细胞,其最适的生长温度是不尽相同的,例如人和哺乳动物的体内的温度为35-37,昆虫细胞的最适温度是25-28,培养细胞的最合适的温度也在这个范围,偏离这一温度范围,细胞的正常生长和代谢将会受到影响,甚至导致细胞死亡。一般来说,培养细胞对低温的耐受能力比高温强。温度不超过39时,细胞代谢强度与温度成正比;若高于40,细胞受到严重损伤,几小时内细胞便会死亡。细胞代谢随温度的降低而减缓,温度不低于0时,能抑制细胞代谢,但细胞仍能生存和生长,但速度缓慢。 3.pH值 大多数动物细胞培养的最适pH一般为7.2-7.4,偏离此范围对细胞将产生有害影
9、响,严重时可导致细胞退变或死亡。不同的细胞对pH的要求也不完全相同,一般原代培养细胞对pH的耐受力更差一点。总的说来,细胞的耐酸性比耐碱性强一些。因此培养过程一定要控制pH,为维持培养液的pH恒定,最常用的是加入磷酸缓冲剂的方法。 4.溶氧及气体环境 细胞的生长代谢离不开气体,所需气体主要是O2和CO2,氧参与三羧酸循环,产生能量供给细胞生长和繁殖。CO2是细胞代谢产物,它能调节培养环境的pH。当细胞代谢旺盛时,不断释放CO2,培养液变酸;反之,当CO2外溢时,会使pH升高。 5.营养物质 动物细胞体外培养所需的营养物质与体内培养的基本相同,对营养的要求较高,需要多种氨基酸、维生素、辅酶、核酸
10、、嘌呤、嘧啶、激素和生长因子。大多数培养细胞对渗透压都有一定的耐受性,对大多数细胞来说,渗透压在260-320mOsm/kg每kg细胞耐受的溶质浓度为260-320mmol/L范围都适宜。在保证细胞渗透压的情况下,培养液里的成分要满足细胞进行糖代谢、脂代谢、蛋白质代谢及核酸代谢所需要的各种营养,只有满足了这些基本条件,细胞才能在体外正常生存、生长。 (四)动物细胞培养基 动物细胞培养基是细胞赖以体外生长、增殖、分化的重要因素。动物细胞的培养基一般可分为天然培养基、合成培养基、无血清培养基几种,此外,动物细胞培养还需要一些常用的溶液。 1.天然培养基即直接取自动物体液或从组织中提取的成分做培养基
11、,主要有血浆、血清、胚胎浸出液、鼠尾胶原等。天然培养基使用最早,营养成分最高,也最为有效,但成分复杂,个体差异大,来源也缺乏,因此使用受到限制。 动物血清是天然培养基中最常用的,血清含有许多维持细胞生长繁殖和保持生物学特性不可缺少的营养物质,包括蛋白质和核酸等。另外,血清能中和培养基中的有毒物质的毒性,使细胞免受伤害。常用的动物血清主要有胎牛血清、犊牛血清、小牛血清、人AB血清、兔血清等。其中胎牛血清质量最好,但来源少,价格较高,最常用的是小牛血清。血清中主要含蛋白质、氨基酸、葡萄糖、激素、金属离子、促贴附物质等。 2.合成培养基合成培养基是参照天然培养基的成分,根据细胞生存所需物质的种类和数
12、量,用化学物质人工模拟合成的。合成培养基成分已知,便于实验条件的控制。但由于天然培养基的有些成分尚未知,加上有些成分尚无法用已知的化学成分代替,因此,要想细胞更好的生长和繁殖,还需加入一定量的天然培养基,一般是加入小牛血清。 3.无血清培养基 无血清培养基不加动物血清,在已知细胞所需营养物质和贴壁因子的基础上,在基础培养基中加入适宜的促细胞生长因子,保证细胞的良好生长。动物血清成分复杂,对细胞培养易造成污染和毒性作用,不利于产品的纯化和检测,再加上来源有限、成本高等限制了它的大规模使用。无血清培养基的优势在于避免了血清的这些缺点。在生产单克隆抗体、细胞生长因子和疫苗等生物制品的应用领域中,优化
13、无血清培养基的成分可使不同的细胞在最有利于细胞生长和表达目的产物的环境中维持高密度培养。但无血清培养基并不适用于广泛的细胞类型,不同类型的细胞甚至不同的细胞系或细胞株都有可能有各自的无血清培养基构成。在细胞早期培养阶段,细胞对于无血清培养基的适应性往往是克隆特异性的,每个新的克隆常需要重新配制培养基和适应过程。最近研究表明,先使野生型宿主CHO细胞适应无血清培养基培养,然后转染这些细胞得到的重组克隆在基因扩增后保持了在无血清培养基悬浮培养中的生长能力,其产品在生化和结构上类似于未处理的宿主细胞产物。 4.无蛋白培养基 无血清培养基中添加的蛋白成分价格昂贵,且有的成分如牛血清蛋白含有很多种杂质,
14、因此,在无血清培养成功以后,科学家们又开始研究从培养基中减去这些成分。在对细胞的营养需求有比较深入认识的基础上,化学成分明确的无蛋白培养基已被用于中国仓鼠卵巢细胞CHO和杂交瘤细胞的培养。 5.细胞培养常用液 (1)消化液 主要用于细胞培养前的组织块解离和细胞的分散以及传代培养时细胞脱离贴壁表面并分散细胞。常用的消化液有胰蛋白酶溶液和二乙烯四乙酸二钠(EDTA)溶液。 胰蛋白酶溶液:呈黄色粉末状,易潮解,应冷藏干燥保存。胰蛋白酶来源于牛、猪等动物的胰脏,能使细胞间的蛋白质水解,使细胞分散。不同的细胞对胰蛋白酶的浓度、温度、作用时间的要求不一样。在pH8.0,37时胰蛋白酶的效果最好。常用的溶液
15、的浓度是0.25%和0.125%两种。Ca2+,Mg2+的存在和血清、蛋白质的存在会降低胰蛋白酶的活力。所以用无Ca2+,Mg2+的溶液配制,消化结束时,用血清来阻制酶作用。 EDTA溶液:又称Versen,是一种化学螯合剂,对细胞有一定的解离作用。它毒性小,易配制,使用方便。常用的浓度是0.02%。如将EDTA和胰蛋白酶溶液按一定的比例混合使用,效果更好。 此外,胶原蛋白酶溶液、链酶蛋白酶溶液等也可用于消化细胞,但价格昂贵,保存困难,因而使用较少。(2)pH调整液 各种细胞对培养基的酸碱要求是十分严格的,因此,培养前一定要用pH调整液将培养基的pH调整到合适的范围。pH调整液应单独配制,单独
16、灭菌,使用前加入灭菌的培养基。常用的pH调整液有Na2CO3溶液(7.4%、5.6%、3.7%)、10%醋酸溶液和HEPES液(20mmol/L,一种氢离子缓冲剂)。 (3)抗生素液 细胞培养的过程中,需向培养液中加入适量的抗生素液,以防止微生物的污染,而不影响细胞的生长。常用的抗生素有: 青、链霉素(双抗)液:取青霉素G100万单位、链霉素100万单位溶于50mL 灭菌的Hanks或三蒸水中作为母液。使用时在100mL培养基中加入0.5mL母液,则最终浓度为每毫升含100单位青霉素、100g链霉素。 卡那霉素液:取5万微克卡那霉素溶于50mLHanks液中,即成10,000g/mL的母液。使
17、用时在100mL培养基中加入0.5mL母液,则最终浓度为50g/mL。 制霉菌素液:因其不溶于水,将其制成5,000g/mL的悬液,使用时在100mL培养基中加入0.5mL悬液,则最终浓度为25u/mL。 (五)动物细胞常用的培养方法 1.贴壁培养技术 大多数细胞在离体培养的条件下,都要附着在固体表面上才能生长。原来是圆形的细胞一经贴壁就迅速铺展成各种形态,一般在数天后就铺满生长表面,形成致密的细胞单层(monolayer cell)。当细胞生长到表面相互接触时,就停止分裂增殖,这种现象称为接触抑制(contact inhibition)。所以如需继续培养,需将单层细胞再分散,稀释后再重新接种
18、,进行传代培养。贴壁培养的表面要求有带有适量的正电荷和高度的表面活性,主要材料有明矾?硅硼酸玻璃、聚苯乙烯、不锈钢等。贴壁培养的系统主要有转瓶、中空纤维、玻璃珠、微载体系统等。 贴壁培养的一般步骤是,先将组织块消化,使之分散成细胞团或单个细胞状态,经过滤、离心、纯化、漂洗后接种到有适宜营养液的培养系统中。然后放入CO2培养箱培养。 2.悬浮培养技术 少数非贴壁生长型细胞,如杂交瘤细胞,能在培养器中自由悬浮生长。将采集到的活体组织分散、过滤、离心、纯化、漂洗后接种到适宜的培养液中,置于特定的培养条件下培养。传代时不需再分散,只需按比例稀释即可继续培养。对于小规模多采用转瓶和滚瓶培养,大规模培养可
19、采用类似发酵罐的生物反应器。悬浮培养设备要求简单、细胞增殖快,可借鉴微生物发酵的成功经验。但是,只有极少数的细胞适合这种悬浮培养。 (六)动物细胞大规模培养技术 动物细胞大规模培养技术始于20世纪60年代初Capstick及其同事为生产FDM 疫苗而对BHK细胞的研究。它是在传统的培养技术的基础上,融合固定化细胞、流式细胞技术、填充床、生物反应器技术以及人工灌流和温和搅拌技术等发展起来的。 1.中空纤维细胞培养法 1972年,里查德?克瑞克(Richard Kncazek)等模拟体内微环境,设计了中空纤维细胞反应器。中空纤维是由聚枫或丙烯的聚合物组成的半透膜,水分子、营养物质和气体可以透过,细
20、胞能在表面生长。细胞能在中空纤维上不断从流动的培养液中获得营养物质,细胞代谢产物和培养物又可随培养液的流走而运走。与前面介绍的细胞生长在二维空间的培养技术不同,中空纤维细胞培养技术是模拟细胞在体内生长的三维状态。培养系统的核心部分由3至6层这样的中空纤维组成,细胞接种于中空纤维的外腔。细胞向三维空间繁殖,形成类似组织的多层细胞群体,细胞密度可达109个/ml。培养一段时间后,可逐渐用无血清培养基代替天然培养基。此时细胞不在增殖,但可继续分泌产物,分泌物的纯度可达60%-90%。这种培养系统具有所占空间小,产物的分离纯化比较方便,细胞保持高度活性等优点,适合多种细胞的培养。 2.微载体培养技术
21、大多数动物细胞,都具有贴壁生长的特性,而传统的适于贴壁生长的细胞培养系统,由于表面积的限制,很难达到大规模生产的目的。最初采用的滚瓶系统,虽然能增加细胞生长的贴壁面积,但所占的空间大,劳动强度大、细胞产率低、不易监控等缺点限制了他的进一步发展。1967年,凡?维茨儿(Van Wezel)开发了微载体培养系统Microcarrier,MC培养贴壁细胞。经过几十年的研究,微载体培养已广泛地应用于动物细胞的培养,其中尤以Pharmacia生物技术公司生产的微载体Cytodex、Cytopore、Cytoline等使用范围最广。微载体培养是细胞在由葡聚糖制成的小球表面成单层生长,通过轻轻搅拌使细胞维持
22、悬浮状态。这种培养较传统的单层细胞培养,面积大大增加。如将这种微载体在流化床式、固定床式反应器中进行培养,则可获得比原来多2050倍的高密度细胞。另外,这种培养的劳动强度减少,1升微载体培养生产的细胞相当于50个转瓶490cm2/瓶所生产的细胞,省却了玻璃容器等的清洗和准备工作。而且细胞与培养液的分离简单,一旦搅拌停止,3分钟后细胞即能依靠其重力而沉淀,只要去除上清液,而无须进行离心操作。减少了繁复的操作步骤,降低了污染率。目前,狂犬病毒精制灭活疫苗就是采用Cytodex培养Vero细胞而进行大规模生产的。 常用的微珠载体是DEAE-交联葡聚糖微粒。近年来,国外新开发的MC主要有液体微载体、大
23、孔纤维素微载体、PHEMA微载体、聚苯乙烯孔微载体、聚氨酯泡沫微载体、磁性微载体。其中磁性微载体是由铁、钴或镍的磁性氧化物与经戊二醛处理的明胶混合、研磨,并用水解蛋白酶处理后制成,对疫苗、干扰素、生长素的生产均具有应用潜力,且产品质量较高。 但是,实心微载体的比表面积还是太小,于是人们设计了用微载体内部固定细胞。如海藻酸钠系统、琼脂糖系统、琼脂糖?海藻酸钠系统等。这类技术能维持很高的细胞密度,但很难达到2L以上的规模。1985年,Verax公司开创了大孔微载体培养技术,接着有了Percell系统和Siran系统。1986年,Nssina报道了明胶大孔微载体的制备及其在细胞培养中的应用。大孔微载
24、体除了有利于细胞高密度大规模培养外,在外源蛋白的长期高效表达方面也明显的优势。 大多孔微载体以纤维素为基质,内部有许多网状的相互连通的小孔通向载体表面,细胞在接种后,易于进入微载体内部生长分裂,以避免剪切力或气泡的影响,即使大部分细胞免受机械损伤,又为细胞提供了充分的生长空间。Onderwater等报道,使用大多孔微载体培养能表达人类细胞色素P450同功酶的V79细胞,细胞量从接种时的2105/ml,增加到六天后的1107/ml。Zhaolie C等用多孔微载体Cytopore培养重组CHO细胞系4B3,最高细胞密度达到8.83106/ml11。胡显文等将Cytopore多孔微载体用于中试规模
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