论文(设计)基于细胞穿透肽技术对p38 丝裂原活化蛋白激酶蛋白功能的研究.doc
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1、基于细胞穿透肽技术对p38丝裂原活化蛋白激酶蛋白功能的研究 作者:杨丽萍;刘志锋;黎永明;李志杰;姜勇(南方医科大学病理生理学教研室/广东省功能蛋白质组学重点实验室,广东 广州 510515)摘要:目的构建基于TAT技术的p38 MAPK蛋白转运系统并对导入细胞的融合蛋白的功能进行鉴定。方法 采用亚克隆方法构建重组质粒pHis-TAT-p38和pHis-TAT-p38(AF)无活性突变体,并诱导原核表达纯化融合蛋白;将这两种蛋白加入培养的ECV304细胞,在高渗刺激下,通过检测p38底物ATF2的磷酸化水平,以观察由TAT转导进入细胞His-TAT-p38及其无活性突变体对内源性p38活性的影
2、响。结果 酶切和测序结果表明,载体构建正确;SDS-PaGE凝胶电泳可见原核表达纯化得到高纯度目的蛋白;Western blot表明,融合蛋白His-TAT-p38及其突变体能够以一种时间和浓度依赖性方式高效转导进入细胞;导入His-TAT-p38蛋白后,结果发现导入的野生型p38可增强内源性p38的功能,而无活性突变体则竞争性抑制了内源性p38 MAPK蛋白的功能,从而阻止或抑制其对内源性底物ATF2的磷酸化,使得信号不能传递下去,进而抑制p38 MAPK通路的活动。结论 成功建立了基于TAT的蛋白转运系统,并证实TAT能够以浓度和时间依赖方式高效转运蛋白进入真核细胞;进入细胞的 His-T
3、AT-p38和His-TAT-p38无活性突变体蛋白均具有较高的生物学活性,在高渗刺激作用下前者可以增加p38磷酸化水平,而后者则显著抑制p38信号通路的活性。关键词:I型人免疫缺陷病毒转录激活蛋白;p38丝裂原活化蛋白激酶;蛋白转导中图分类号:Q291文献标识码:A文章编号:1673-4254(2006)05-0553-05Cell-penetrating peptide-based functional study of p38 MAPKYANG Li-ping; LIU Zhi-feng; LI Yong-ming; LI Zhi-jie; JIANG YongDePartment of
4、 Pathophysiology and Guangdong Provincial Key Laboratory of Functional Proteomics, Southern Medical University, Guangzhou 510515, ChinaAbstract: Objective To construct a p38 MAPK protein delivery system based on TAT protein and study its functions in eukaryotic cells. Methods Recombinant vectors pHi
5、s-TAT-p38 and pHis-TAT-p38(AF) were constructed, and two recombinant proteins, His-TAT-p38 and His-TAT-p38(AF), were expressed and purified in E.coli. The two fusion proteins were then incubated with ECV304 cells, respectively. The phosphorylation of ATF2 was detected to assay the effect of His-TAT-
6、p38 on endogeneious p38 activity after the cells were stimulated by sorbitol. Results The results of restriction enzyme digestion and DNA sequencing showed that the two recombinant vectors were correctly constructed. The recombinant proteins of His-TAT-p38 and His-TAT-p38(AF) were isolated and purif
7、ied by SDS-PaGE, and Western blotting suggested that His-TAT-p38 and its mutant with dual phosphorylation sites could enter the cells efficiently in a time- and concentration-dependent manner. His-TAT-p38 was found caPable of increasing the activity of endogenous p38 in ECV304 cells, but His-TAT-p38
8、(AF) inhibited the phosphorylation of ATF2 so as to block the transduction of p38 signal Pathway when the cells were stimulated with sorbitol. Conclusion p38 MAPK protein delivery system based on TAT protein has been constructed successfully. It is confirmed that TAT can transfer the proteins into t
9、he cells in a time- and dose-depended manner. TAT-p38 and its dominant negative form possess high biological activity after transduction into ECV304 cells by TAT protein delivery system, and the former can increase the activity of endogenous ATF2, but the latter inhibits the transduction of endogene
10、ious p38 signal Pathway in ECV304 cells with high osmotic stress.Key words:human immunodeficiency virus type-1; p38 mitogen-activated protein kinase; protein transduction收稿日期:2005-10-31基金项目:广东省科技计划项目( A1090202);广州市科技计划项目(2001-z-035-01-1);广东省自然科学基金重点项目(13058)Supported by Sci-Tech Research Development
11、 Program of Guangdong Province(A1090202), Natural Science Foundation of Guangdong Province(13058), and Science and Technology Development Program of Guangzhou MuniciPality(2001-Z-035-01-1)作者简介:杨丽萍(1972-),女,硕士研究生,从事炎症的信号转导通路的研究通讯作者:姜勇,教授,电话:020-85148231, E-mail:yjiang 应激激活的丝/苏氨酸蛋白激酶p38属于丝裂原活化蛋白激酶(mit
12、ogen-activated protein kinase, MAPK)超家族。各种细胞外刺激,包括紫外线、放射、热休克、高渗压、致炎细胞因子和某些病原体,能触发应激调节的蛋白激酶级联,最终通过磷酸化激酶活化环(Loop 12)上的TGY基团而激活p38 MAPK。p38在凋亡、细胞因子产生、转录调节和细胞骨架重构中起重要作用,还与败血症、缺血性心脏病、关节炎、人免疫缺陷病毒感染及阿尔茨海默氏病有密切联系1,2。人类免疫缺陷病毒(HIV)1型的反式激活因子(TAT),是一种正调控蛋白质,可以极大的提高HIV 基因组的转录和复制水平,还能够调节细胞基因及细胞的行为3。近年来,TAT融合蛋白转导技
13、术系统是研究蛋白质功能的的一种重要的技术手段,利用该方法来提高目的蛋白穿透生物膜的方法简单可行,不影响生物大分子的活性,可高效地介导目的蛋白穿透生物膜进入细胞。本研究应用TAT蛋白技术,建立了一个高效转导p38 MAPK及其活性突变体地高效工作系统,并探讨使用外源性TAT蛋白调节p38通路活动的可行性。1材料1.1主要仪器及试剂ABI310型DNA测序仪(美国PE公司)、微量DNA/RNA定量仪(瑞典Pharamacia公司)、低温离心机(美国Beckman公司)。DNA纯化回收试剂盒(Vitagene公司)、凝胶回收试剂盒(Vitagene公司)、LB培养基(Gibco)、异丙基-D-硫代半
14、乳糖苷(IPTG,华运公司进口分装)、Ni2-NTA亲和树脂(Qiagen公司)、羧苄青霉素(Novagen)、1 kb DNA 标准物(NEB公司)、限制性核酸内切酶和T4连接酶(ToYoBo公司)、胎牛血清(Hyclone公司)、DMEM(Gibco BRL公司)。兔源抗p38抗体、兔源抗ATF2抗体、抗磷酸化ATF2抗体和兔源抗actin抗体购自Cell Signaling公司;HRP标记的抗兔IgG购自Santa Cruz公司;其它试剂均为国产分析纯或试剂盒附带。1.2质粒、菌种和细胞表达载体pET-14b-His-TAT由本室郭爱华博士构建4,野生型及双磷酸化位点突变的flag标记的
15、质粒pcDNA3-Flag-p38、pcDNA3-Flag-p38以及pET14b-His-p38原核表达质粒由本室构建,DH5 和BL21(DE3)大肠杆菌和ECV304细胞由本实验室保存。2方法2.1 pET14b-His-TAT-p38和pET14b-His-TAT-p38(AF)重组质粒的构建用Nde和BamH限制性核酸内切酶消化pcDNA3-Flag-p38、pcDNA3-Flag-p38 (AF)质粒6 h,琼脂糖凝胶电泳将目的片段p38和p38 (AF)切胶回收,用上述同样的内切酶消化pET14b-His-TAT载体使之线性化,二者通过T4连接酶16 条件下连接16 h。连接产物
16、10 l转化感受态菌DH5,铺琼脂糖LB平板,37 孵箱倒置培养1216 h。待平板长出菌落后,挑取单菌落于5 ml LB培养基中(加相应抗生素),置37 摇床培养12 h,小量制备质粒,利用酶切和测序鉴定重组质粒。2.2 His-TAT-p38和His-TAT-p38 (AF)融合蛋白的原核表达与纯化将鉴定正确的重组质粒转化大肠杆菌BL21(DE3),挑取转化后单菌落置于2 ml的LB/Amp+ 培养液中,室温振摇培养至D600值约为0.6时加入终浓度为1 mmol/L的IPTG诱导,继续振摇3 h。诱导结束后取诱导前和诱导后菌液0.5 ml经10% SDS-PaGE鉴定融合蛋白表达的情况。
17、对有融合蛋白表达的菌落进行大量(500 ml)扩增诱导,用Ni2离子亲和树脂层析纯化得到蛋白,最后用10% SDS-PaGE电泳鉴定蛋白的纯度。His-p38蛋白和His-TAT-EGFP蛋白的表达与纯化方法同上。用CB-Protein AssayTM试剂盒测定蛋白含量。2.3TAT介导的融合蛋白跨膜转导进入真核细胞效率的检测将纯化得到的蛋白放入预先配好的1PBS透析液中,4 透析过夜,透析完毕后蛋白经过滤器过滤除菌备用。将ECV304细胞传代至6孔板内,然后将过滤后的融合蛋白分别按照以下方法加入细胞。浓度依赖性实验:将His-TAT-p38蛋白分别按15 g/ml, 30 g/ml,45 g
18、/ml的浓度加入细胞孵育2 h。时间依赖性实验:将His-TAT-p38蛋白以每孔终浓度为1000 nmol/L加入6孔板内与细胞分别孵育180 min, 120 min, 60 min,30 min。TAT介导的融合蛋白进入细胞实验:以每孔终浓度为500 nmol/L分别将His-p38,His-TAT-p38,His-TAT-p38(AF)突变体蛋白加入细胞孵育2 h。孵育结束后,彻底吸去原培养基,用冰预冷PBS将6孔板内细胞小心冲洗3遍。加入100 l/孔冰预冷的Triton/甘氨酰甘氨酸裂解缓冲液,冰上裂解细胞30 min。用细胞刮小心刮下裂解细胞,用移液器将细胞裂解物迅速移入冰预冷的
19、1.5 ml微量离心管中。12000 r/min、4 离心10 min后,取上清分别以兔源抗p38抗体(11000稀释)和兔源抗actin抗体(11000稀释)为一抗,HRP标记的抗兔IgG(11000稀释)为二抗行Western blot检测。2.4His-TAT-p38及其突变体对p38活性的影响将ECV304细胞传代至6孔板内,待细胞进入对数生长期后,实验分四组:对照组不加任何蛋白;第二组加入His-TAT-p38(AF)突变体蛋白;第三组加入His-TAT-EGFP蛋白;第四组加入His-TAT-p38蛋白,每组又分为刺激组和无刺激组。按照分组分别加入终浓度为750 nmol/L的融合
20、蛋白与细胞孵育12 h,孵育结束后撤掉原培养基,用无血清培养基培养稀释Sorbitol至终浓度0.4 mol/L,分别加入各组中刺激0.5 h,裂解细胞取上清分别以兔源抗ATF2抗体、抗磷酸化ATF2抗体(均为11 000稀释)为一抗,HRP标记的抗兔IgG(11 000稀释)为二抗行Western blotingt检测。3结果3.1pET14b-His-TAT-p38和pET14b-His-TAT-p38(AF)重组质粒的构建将重组质粒用Nde和BamH双酶切后进行1%琼脂糖电泳,可以看到两条带,大小分别约为4 740 bp与1 080 bp,与预期大小一致。测序证实构建正确(图1)。 图1
21、重组质粒pET14b-His-TAT-p38和pET14b-His-TAT-p38 (AF)酶切鉴定图Fig.1 Identification of pET14b-His-TAT-p38 and pET14b-His-TAT-p38 (AF) vectorsM: 1 kb DNA marker; Lane 1: pET14b-His-TAT-p38 digested with Ndeand BamH; Lane 2: pET14b-His-TAT-p38(AF) digest with Ndeand BamH3.2 融合蛋白的原核表达与纯化pET-His-p38、pET-His-TAT-p38
22、和pET-His-TAT-p38 (AF)质粒转化大肠杆菌BL21(DE3),挑取单个菌落培养经IPTG诱导后,经Ni2+-NTA磁珠亲和层析纯化,10%SDS-PaGE凝胶电泳可见在41 kD左右见到一特异性蛋白条带。His-p38蛋白约40 kD(图2)。 图2His-TAT-p38、His-TAT-p38 (AF)蛋白以及His-p38蛋白表达纯化Fig.2 Expression and purification of His-TAT-p38, His-TAT-p38(AF) and His-p38M: protein marker; Lane 1: First elution of H
23、is-TAT-p38; Lane 2: Second elution of His-TAT-p38; Lane 3: First elute of His-TAT-p38(AF); Lane 4: Second elution of His-TAT-p38(AF); Lane 5: First elution of His-p38; Lane 6: Second elution of His-p383.3His-TAT-p38、His-TAT-p38(AF)蛋白转导进入细胞的检测首先将ECV304细胞传代至6孔板内,待细胞进入对数生长期后,将过滤好的His-TAT-p38蛋白,His-TAT-
24、p38(AF)蛋白和His-p38蛋白分别加入培养的细胞孵育2 h,用兔源抗p38抗体(11 000稀释)和兔源抗actin抗体(11000稀释)为一抗行Western blot检测,结果见图3。对检测得到的蛋白条带进行灰度扫描并根据净灰度值比值计算得到两种蛋白的导入效率分别为65%和69%,这一结果证实了TAT介导的融合蛋白p38及其突变体能够高效地进入ECV304细胞。按照一定的浓度梯度将His-TAT-p38蛋白加入细胞培养上清,37 孵育2 h,同样用兔源抗p38抗体(11 000稀释)和兔源抗actin抗体(11 000稀释)为一抗行Western blot检测,结果见图4;然后,按
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