转基因动物技术原理与应用ppt课件.ppt
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1、利用小鼠动物模型研究基因表达与病理发育,郑耀武转基因动物实验中心综合实验楼85098583,转基因动物技术原理与应用,第一部分:常规转基因技术原理第二部分:基因定位修饰技术原理第三部分:CRISPR/Cas9技术原理与应用,第一部分,常规转基因动物原理与应用,什么是转基因?,狭义:人为将DNA片段插入基因组广义:人为的对生物基因组的修饰,包括随机的基因片段插入,基因定位敲除,基因定位敲入,基因定点突变等,动物转基因的重要性,基础理论研究 (小鼠)研究基因调节,包括启动子功能基因功能追踪(Knockout,Gene Trap)细胞追踪,如癌细胞转移(如EGFP基因敲入)基因表达与胚胎发育,器官发
2、育基因表达与生物学功能、病理发育基因突变体表达功能研究基因相互作用应用研究 (大动物)生产活性蛋白:酶,疫苗,抗体,生长因子,蛋白药(蛋白活性要求特异的翻译后修饰)低生产成本:转基因动物可以传代,可以连续生产,如血浆蛋白,乳蛋白,比细胞培养成本低病理动物模型,利用动物模型研究疾病发生机理、药效测试器官移植:解决器官不足,重复感染问题,如猪肝脏品种改良(GMO):抗病,高产,营养价值提升疾病治疗:治疗遗传缺陷,组织再生,转基因技术研究历史,第一个转基因小鼠:1974年第一个小鼠干细胞:1981年第一个基因捕获小鼠:1989年第一个基因敲除小鼠:1997年第一个克隆动物:2008年第一个CRISP
3、R/CAS9小鼠,Rudolf Jaenisch in 1974. Jaenish successfully managed to insert foreign DNA into early-stage mouse embryo resulting mice carried modified gene in all their tissues and progeny.,Gossler, A., A. L. Joyner, et al. (1989). Mouse embryonic stem cells and reporter constructs to detect development
4、ally regulated genes. Science 244(4903): 463-5.,Martin GR. Isolation of a pluripotent cell line from ealry mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Natl Acad Sci (USA). 1981;78:7634-8.,Hooper M, Hardy K, Handyside A, Hunter S, Monk M. HPRT-deficient (Lesch-Nyh
5、an) mouse embryos derived from germline colonization by cultured cells. Nature. 1987;326:292-5.,Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Cong L, Ran FA, Cox D, Lin S, Barretto R, Habib N, Hsu PD, Wu X, Jiang W, Marraffini LA, Zhang F.Science. 2013 Feb 15;339(6121):819-23. doi: 10.1126/
6、science.1231143. Epub 2013 Jan 3.,Dolly (5 July 1996 14 February 2003) was a female domestic sheep, and the first mammal to be cloned from an adult somatic cell, using the process of nuclear transfer.,常见转基因技术,常规方法 :受精卵细胞核DNA显微注射,随机插入,预见性低,但多样性利用精子转染DNA,效率低,重复性差利用转坐子进行DNA在基因组的插入,方法复杂,受限多病毒感染:效率高,随机性低
7、,可带DNA大小受限制,安全隐患,常用于大动物干细胞胚胎显微注射:常用于小鼠基因定位修饰,预见性高,费时,大动物不成功核移植动物克隆:大动物基因定位修饰唯一途径CRISPR/Cas9技术:最新发展的,快速、简便、高效基因组修饰技术,真核基因结构与调节,真核基因结构(cis element):启动子(promoter),外显子(exon),内含子(intron),polyA信号, 活化信号(enhancers), 沉默信号(silencers),封闭区(Insulators)转录因子(trans element)(transcription factors),活化因子(activators),抑
8、制因子(inhibitors)真核mRNA结构:Cap,5非编码区(5-UT),编码区(coding region),3非编码区(3-UT),polyA组织专一性调节(tissue-specific regulation, spatial)发育阶段调节(developmental regulation, timingly)诱导性调节(inducible)转录后调节: mRNA剪接和修饰, mRNA的稳定性,蛋白质合成效率,蛋白质半衰期,基因结构图示,mRNA结构,基因转录复合体,转基因载体构建,启动子选取cDNA 选取Poly A 选用内含子和封闭区载体构建,启动子的类型和选取,特异启动子:研
9、究基因调节(lacZ),启动子功能,调节其它基因表达。用于其它基因表达,一定要查询启动子在转基因动物应用文献,了解启动子完整性高表达启动子选用:用于高表达某个基因,高表达蛋白生产广谱启动子应用:显示基因细胞标记(EGFP)可诱导启动子的应用:用于基因调节,有毒蛋白表达,致命基因的调控复合启动子:可诱导、高表达、组织专一基因调节系统,用于调节基因或高表达蛋白,表达基因(cDNA)的类别,显示基因(reporters): lacZ, GFP, CAT, AP等 调节基因: Cre, ER-Cre, tTA, tTR,PTX等蛋白质功能研究:蛋白突变体的表达基因剪接:研究外显子、内含子功能商业基因:
10、药用蛋白,改良基因等 生理功能基因: 基因治疗,干细胞移植等非编码基因:非编码RNA功能研究,siRNA基因沉默, CRISPR/Cas9 gRNA基因组修饰抗性基因:细胞筛选,其它转基因载体构件选取,oly A :提供稳定的mRNA常用poly A: SV40 poly A, -Globin poly A内含子选用:第一个内含子,如-Globin 内含子封闭区应用:增加表达几率,减少对周围或被周围基因影响Loxp, FRT, tetO序列,基因A启动子,典型转基因结构(Heterologous),CCAAT box,TATA box,Enhancer,转录起始点,基因B cDNA,翻译起始点
11、,基因C polyA,5-UT,3-UT,拼接区域:,转基因动物(Founders)鉴定,检测转基因在基因组插入:PCRSouthern拷贝数:Southern, Real time PCR插入位点:Inverse PCRmRNA表达:In SituRT-PCRNorthern蛋白表达:显示基因:酶活性分析lacZ,Luciferase,AP, 荧光EGFP, RFP功能分析:结构变化:石蜡切片,H&E染色免疫组织化学、免疫荧光定位:冰冻切片,抗体染色免疫沉淀:Western,小鼠生物学基础及转基因优越性,小鼠免疫力强,繁殖率高,体型小,为经济有效动物模型小鼠遗传表型多样,全基因组序列解析,经
12、典哺乳类实验动物模型多种自交系孕期1921天性成熟时间:母45周,雄5-6周母鼠发情周期5天左右成鼠体重:20-50克母鼠平均产子56窝,自交系每窝6-8只,远交系10-14只,产生转基因鼠标准条件和要求,洁净动物房,高蛋白,高脂肪饲料(Breeder chows) 供卵鼠:4-6周杂交子一代母鼠(C57B6xCBA or DBA),每次10-12只,每周两次种鼠:年龄两月到一年的杂交子一代雄鼠(C57B6xCBA or DBA) 20-24只代孕母鼠:每次见栓2-5只,2-6月高繁殖率母鼠(CD1)50-100只结扎公鼠: (C57B6xCBA or DBA)子一代或 (CD1)雄鼠,各需求
13、10-20只,适用年龄2-18月,转基因小鼠具体操作过程,构建载体,纯化DNA片段,去除原核载体序列促排卵激素超排卵,合笼,分离E0.5 受精卵DNA显微注射胚胎培养过夜胚胎回移代孕鼠切尾鉴定传代杂交表达分析,性成熟,供体受精卵收集,每次100200个 供体受精卵细胞核DNA显微注射浓度: 2-5ng/ul 受精卵回移代孕母鼠: 每只移植20-30个左右双细胞卵 PCR或Southern 筛选转基因鼠(founders), 15-50%, 随机插入,拷贝数1-100 第一代下传(F1) 0-100%,有卵裂后插入或两个以上的插入位点 第二带下传,蒙德尔遗传,50 表达功能分析:从E10到5个月
14、,转基因鼠产生相关的数据,转基因常见问题,启动子不完整,造成基因不表达或错误表达DNA插入随机性造成不表达、低表达、鼠系间差异封闭区(insulaters)序列基因高表达毒性,得不到转基因鼠或不表达第一个内含子重要性转基因片段的大小:2kb到1000kb 大部分2-10kb,容易注射P1质粒(PAC),70kb左右,黏度大细菌人工染色体BAC,120kb左右, 黏度更大酵母人工染色体YAC,500kb-1000kb,非常难注射同时注射两个以上的转基因:效率高,一般插入同一位点多拷贝插入方式:头尾相接拷贝数与表达水平:无紧密关联,多数拷贝被甲基化,转录因子浓度限制其它因素:DNA浓度(2-3ng
15、/ul),酒精、嗅化乙锭和EDTA残留载体骨架DNA对转基因表达影响:原核序列不稳定 C57/BL6纯系转基因鼠受精卵注射:效率略低,转基因动物原理及应用,第一部分:常规动物转基因技术原理第二部分:基因定位修饰技术原理第三部分:CRISPR/Cas9技术原理与应用,第二部分:基因定位修饰,基因定位修饰原理基因定位修饰过程基因定位修饰应用,基因定位修饰重要性,基因功能研究:随着基因组解析,基因敲除和基因定位修饰进行基因功能解析基因调节:可以人为控制基因位点准确修饰,基因调节更为精确,研究结果更确定,病理模型更有价值基因修饰稳定性,低拷贝,对基因组影响小,表达特定蛋白,大动物克隆,抗体基因组置换基
16、因治疗:准确定位修饰,结合人类干细胞培养和CRISPR/Cas9技术,是将来基因治疗(Gene Therapy)、组织再生(Regeneration Medicine) 重要途径,小鼠早期发育示意图,3.5天,干细胞特性,祖细胞 (projenitor cells)的特性可以分化成少数不同种类细胞的原性细胞,可以进行有限次数的不等分裂干细胞(stem cell)的特性可以分化成多种组织器官、不断增殖的少数细胞胚胎干细胞(ES)具有全能性每个细胞可以发育分化成任何组织器官、个体小鼠胚胎干细胞来源:囊胚内细胞群(ICM)来源种系:多数129SV/jae, 少数 C57/BL6 毛色:棕色(129)
17、, 黑色(C57/BL6)性别:雄性干细胞更稳定,Gene Trap (基因捕获),源于小鼠干细胞全能性的发现标示基因高通量小鼠基因组随机插入,基因分析利用无启动子标示基因表达框,前端有内含子/外显子剪接信号,后面有PolyA,中间有抗性基因随机插入内含子后会剪接成融合表达蛋白,标示基因表达原基因位点失活公数据共平台库: International Gene Trap Consortium is centralizing data and cell lines can be requested from them.,基因定位修饰载体类型,简单基因敲除载体构建原理条件性敲除载体构建原理点突变显示
18、基因敲入组织专一基因位点敲入(LacZ, EGFP),研究基因表达广谱loxp敲入,与调节基因Cre结合,进行组织特异性敲除,NEO,1,3,TK,X,X,1,NEO,3,载体,重组后,基因敲除载体设计原理,NEO,TK,FRT,FRT,loxP,loxP,野生型,载体,用Flipase去NEO,FRT,CRE杂交失活基因,loxP,FRT,条件性敲除载体构建原理,Gene targeting in embryonic stem cells has become the principal technology for manipulation of the mouse genome, off
19、ering unrivalled accuracy in allele design and access to conditional mutagenesis. To bring these advantages to the wider research community, large-scale mouse knockout programmes are producing a permanent resource of targetedmutations in all protein-coding genes. Here we report the establishment of
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