血清IgG的分离和制备ppt课件.ppt

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1、血清IgG的分离和制备,盐析法,实验原理,1. IgG： 是免疫球蛋白 (Immunoglobulin， IgG，E，M，A，D )的主要成分之一。（免疫球蛋白也叫-球蛋白 ）,盐析（salting-out),盐溶（Salting in）:蛋白质在纯水或低盐溶液中溶解度较低，若稍加一些无机盐则溶解度增加，这种现象称为“盐溶” .盐析（salting-out):而当盐浓度继续增加到某一浓度时，蛋白质又变得不溶而自动析出，这种现象称为“盐析”（Salting out）,原理,蛋白质是亲水胶体，带有羧基解离的负电荷或氨基解离的正电荷，其极性基团使分子间相互排斥，同时与水分子形成水膜，这些因素保证蛋白

2、质形成溶于水的溶胶状态。 当加入少量盐时，增多了蛋白质分子上的极性基团，因而增大了蛋白质在水中溶解度，出现“盐溶”现象,但当盐浓度增加到一定浓度时，一方面大量的水同盐分子结合，使得蛋白质没有足够的水维持溶解状态，破坏了维持蛋白质亲水胶的水膜，容易沉淀出来 ；另一方面加入的盐离子中和了蛋白质分子相互碰撞时即发生相互聚集沉淀出来，这样就出现了“盐析”现象。,盐析,各种蛋白质“盐析”出来所需的盐浓度也各异，盐析所需的最小盐量称做盐析浓度。盐析法就是通过控制盐的浓度，使蛋白质混合溶液中的各个成分分步“盐析”出来，达到分离目的蛋白质。,Prof. Olof Hammarsten (18411932),P

3、ROF. OLOF HAMMARSTEN, the celebrated Swedish biochemist, was born at Norrkoping in Sweden on August 21, 1841. He received his medical education at Uppsala, where he qualified in 1869, and was assistant at the laboratory for clinical chemistry and the physiological institute. In 1877 he was appointed

4、 extraordinary professor of physiology at Uppsala, where he became professor of medical and physiological chemistry in 1883; he held this post until his retirement in 1906. His chief work was his textbook on physiological chemistry, which for many years stood almost alone as a work of reference and

5、was translated into several foreign languages.,盐析法,盐析法是1878年Hammarsten首次使用的，他用硫酸镁成功地将血清蛋白分成为清蛋白、球蛋白两部分。 以后曾使用过硫酸钠、氯化钠、磷酸钠和硫酸铵等中性盐来盐析蛋白质，其中运用最广的是硫酸铵。,硫酸铵（NH4)2SO4,硫酸铵有许多其他盐所不具备的优点，如在水中化学性质稳定；溶解度大，25时能达到4.1mol/L的浓度；溶解度的温度系数变化较小，在030范围内溶解度变化不大. 而且硫酸铵价廉易得，分段效果比其他盐好，性质温和，即使浓度很高时也不会影响蛋白质的生物学活性。 现在所指的盐析法实际

6、上多为硫酸铵盐析法。,用硫酸铵分级盐析蛋白质时，盐析出某种蛋白质成分所需的硫酸铵浓度一般以饱和度来表示。实际工作中将饱和硫酸铵溶液的饱和度定为100%或1。盐析某种蛋白质成分所需的硫酸铵数量折算成100%或1饱和度的百分之几，即为该蛋白盐析的饱和度。,1饱和硫酸铵溶液法,式中: V0蛋白质溶液的原始体积； C2所要达到硫酸铵饱和度； C1原来溶液的硫酸铵饱和度； V应加入饱和硫酸铵溶液的体积。,将计算所得体积的饱和硫酸铵溶液加入到混合蛋白质溶液中，即可达到盐析的目的。严格讲，混合两不同溶液时，混合后的总体积并不等于混合前两种溶液体积之和，而上式中是按相等于计算的，所以会产生误差。但实验证明所造

7、成的误差一般小于20%，故可忽略不计。,2固体硫酸铵法,X是将1L饱和度为C1溶液提高到饱和度为C2时，需要加入固体硫酸铵的重量（g）。G和A为常数，数值与温度有关。现在已将达到各种饱和度所需固体硫酸铵的数量列成表，使用时不需计算可直接从表中查出。,注意事项,市售固体硫酸铵中一般残留有硫酸，所以制备的饱和硫酸铵溶液的PH常在4.5 5.5之间，作用之前应该用氢氧化铵调节，使其PH为7；用固体硫酸铵盐析时，蛋白质应溶解于具有一定缓冲能力的溶液中；在硫酸铵中还含有一些重金属离子，用量过大时易使蛋白质变性，在这种情况下可加入一些EDTA等螯合剂以螯合这些金属离子。,注意事项,硫酸铵盐析法可使蛋白质的

8、纯度提高约5倍，而且可以除去DNA，RNA等。但盐析后的蛋白质中仍含有一些杂蛋白，所以盐析产生的产品为粗分离产品需要进一步纯化。一般利用离子交换层析法纯化。在离子交换层析之前，由于盐析所得的蛋白质中含有大量硫酸铵，将影响离子交换层析。所以，在层析之前需要“脱盐”。“脱盐”有凝胶过滤法和透析法。,层析（chromatography）,原理：溶液中的分子能与固体表面进行结合及解离，但由于蛋白质在分子量、带电性和结合特异性方面的差异，与固体表面结合与解离的难易程度不一样，所以流动的速度也不一样。固定相由圆球形小珠密集堆积而成。这些小珠的性质决定了可以分离哪种成分。,流动相,固定相,层析（chroma

9、tography）,. 凝胶过滤层析（gel filtration chromatography ）. 离子交换层析（ion-exchange chromatography）. 亲和层析（affinity chromatography）,. 凝胶过滤层析（gel filtration chromatography ）,分离分子量有差异的蛋白质；多孔小珠由聚丙烯酰胺（polyacrylamide）、葡聚糖（dextran）或琼脂糖（agarose）组成；小分子能进入小珠内部，而大分子被排阻在外部，因此小分子在层析柱中流动速度慢，从而把混合物按不同分子量分开可根据洗脱体积（elution volu

10、me）估计蛋白质分子量，分子量大洗脱体积小。,大分子,小分子,葡聚糖小珠,凝胶过滤层析（gel filtration chromatography ）,操作方法 （1）,在1支离心管中加入1ml血清和1ml 0.01mol/L，PH7.0 磷酸盐缓冲液，混匀。用皮头滴管吸取饱和硫酸铵溶液，边滴加边搅拌于血浆溶液中，使溶液的最终饱和度为50%（应加入饱和硫酸铵溶液多少毫升？）用滴管边加边搅拌，是为防止饱和硫酸铵1次性加入或搅拌不均匀造成局部过饱和的现象，使盐析达不到预期的饱和度，得不到目的蛋白质。搅拌时不要过急以免产生过多泡沫，致使蛋白质变性。加完后应在4放置15min，使之充分盐析（蛋白质样品

11、量大时，应放置过夜）。加完后在4放15min，以3000r/min离心10min，清蛋白在上清液中，沉淀为球蛋白。弃去上清液，留下沉淀部分。,操作方法 （2),将所得的沉淀再溶于2ml0.01mol/L，PH7.0磷酸盐缓冲液中。滴加饱和硫酸铵溶液，使溶液的饱和度达35%（应加入饱和硫酸铵溶液多少毫升？）。加完后4放置20min，以3000r/min离心15min，球蛋白在上清液中，沉淀为IgG。弃去上清液，即获得粗制的IgG沉淀。为了进一步化，操作（2）可重复12次。将获得的粗IgG沉淀溶解于1ml0.0175mol/L，PH6.7磷酸盐缓冲液中备用。,操作方法（3）,凝胶过滤层析: 准备层

12、析柱子： 装柱注意事项： 洗柱和平衡 上样注意事项： 洗脱 收集（透析法浓缩收集的蛋白样品） 样品蛋白测定 聚丙酰胺凝胶电泳。,试剂和器材,（1）饱和硫酸铵溶液：取化学纯（NH4)2SO4 800g，加蒸馏水1000ml，不断搅拌下加热至5060，并保持数分钟，趁热过滤，滤液在室温中过夜，有结晶析出，即达到100%饱和度，作用时用浓NH4OH调至PH7.0。（2）0.01mol/L，PH7.0，磷酸盐缓冲溶液：取0.2mol/L Na2HPO4溶液61.0ml，0.2 mol/L Na2HPO4溶液39.0ml，混合，用酸度计检查PH应为7.0。取该混合液50ml，加入7.5gNaCl，用蒸馏水加至1000ml。（3）0.0175mol/L，PH.7，磷酸盐缓冲溶液：取0.2 mol/L Na2HPO4溶液43.5ml与0.2 mol/L Na2HPO4溶液56.5ml相混合，用酸度计检查PH应为6.7。取该混合液87.5ml，用蒸馏水稀释至1000ml。,思考题,在操作步骤（1）、（2）、中所加入的硫酸铵各为多少毫升？,