Western_Blot详解及问题分析解析课件.ppt
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1、蛋白质免疫印迹技术及常见问题分析,蛋白质免疫印迹技术及,Western Blot简介Western Blot一般流程Western Blot常见问题分析,Western Blot简介,Western Blot 简介:,印迹法(blotting)是指将样品转移到固相载体上,而后利用相应的探测反应来检测样品的一种方法。1975年,Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜(NC膜)上,并利用DNARNA杂交检测特定的DNA片段的方法,称为Southern印迹法。而后人们用类似的方法,对RNA和蛋白质进行印迹分析,对RNA的印迹分析称为Northern印迹法,对单向电泳后的蛋白质分子的印迹分析
2、称为Western印迹法,对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析称为Eastern印迹法。,Western Blot 简介:印迹法(blotting)是,Western Blot 基本原理:首先利用SDS-PAGE对蛋白质样品进行分离,然后转移到固相载体(例如NC膜)上,固相载体以非共价键形式吸附蛋白质,且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。,转移后的NC膜就称为一个印迹(blot),用于对蛋白质的进一步检测。印迹首先用蛋白溶液(如5%的BSA或脱脂奶粉溶液)处理以封闭NC膜上剩余的疏水结合位点,而后用所要研究的蛋白质的抗体(一抗)处理,印迹中只有待研究的蛋白质与一抗特异结合形成抗原抗体复合
3、物,而其它的蛋白质不能与一抗结合,这样清洗除去未结合的一抗后,印迹中只有待研究的蛋白质的位置上结合着一抗。,Western Blot 基本原理:转移后的NC膜就称为一个,Western Blotting方法,直接法:优点: 1.快速(一种抗体) 2.没有二抗交叉反应引起的非特异性条带 缺点: 1.免疫反应性降低 2.无信号二级放大 3.抗体标记费时昂贵,使用不方便,Western Blotting方法直接法:,间接法:优点: 1.免疫特异性不受标记影响 2.信号放大,灵敏度高(多个二抗结合位点) 3.多种标记的二抗可供选择 4.可选择不同的Marker缺点: 1.有交叉反应引起的非特异性条带
4、2.额外的二抗孵育以及条件优化,间接法:,处理过的印迹进一步用适当标记的二抗处理,二抗是指一抗的抗体,如一抗是从鼠中获得的,则二抗就是抗鼠IgG的抗体。处理后,带有标记的二抗与一抗结合形成抗体复合物可以指示一抗的位置,即是待研究的蛋白质的位置。,目前有结合各种标记物的抗特定IgG的抗体可以直接购买作为二抗,最常用的一种是酶连的二抗,印迹用酶连二抗处理后,再用适当的底物溶液处理,当酶催化底物生成有颜色的产物时,就会产生可见的区带,指示所要研究的蛋白质位置。该技术广泛应用于检测蛋白水平的表达。,处理过的印迹进一步用适当标记的二抗处理,二抗是指一抗的抗体,,直接法与用二抗的间接法相比有诸多不足,标记
5、二抗可用于很多种不同特异性的一抗,避免了标记很多一抗的需要,同时因为一抗结合不止一个二抗分子,所以二抗可以增强信号。所以一般情况下都釆用间接法进行检测。,直接法与用二抗的间接法相比有诸多不足,标记二抗可用于很多种不,Western Blot 优点:结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种优点,高分辨率的电泳技术 特异敏感的抗原-抗体反应 1-5ng (最低可到10100pg)中等大小的靶蛋白,Western Blot 优点:结合了凝胶电泳的高分辨率和固,Western Blot应用,目的蛋白的表达特性分析目的蛋白与其它蛋白的互作目的蛋白的组织定位目的蛋白的表达量分析,Wester
6、n Blot 被广泛地应用于蛋白质研究,基础医学和临床医学的研究。,Western Blot应用目的蛋白的表达特性分析Weste,Western Blot 流程,蛋白样品的制备SDS-PAGE转膜封闭一抗杂交二抗杂交底物显色,Western Blot 流程蛋白样品的制备,通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白水溶液提取法 针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白质。稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂 。有机溶剂提取法 对于分子中非极性侧链较多的蛋白质可用有机溶剂提取,包括乙醇、丙酮和丁醇等。通过层析或电洗脱法制备目的蛋白,蛋白样品的提取,通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白
7、蛋白样品的提取,蛋白样品的定量,目前常用比色法测定样品蛋白的含量:Bradford法(考马斯亮蓝法)、Lowry法(Folin-酚试剂法)、 BCA法等。但各有优缺点,大家可以根据具体情况选取。按相应蛋白质定量试剂盒操作说明操作,测定样品浓度。蛋白质浓度测定的各种方法汇总:http:/,蛋白样品的定量目前常用比色法测定样品蛋白的含量:Bradfo,1.SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,丙烯酰胺和N,N-亚甲双丙烯酰胺 SDS配胶的Tris缓冲液TEMED过硫酸铵Tris-甘氨酸电泳缓冲液,凝胶成分,1.SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳丙烯酰胺和N,N-亚甲双丙烯,1.1 PAGE:聚丙烯酰胺凝胶,聚丙烯酰胺凝
8、胶(polyacrylamide gel)是由单体丙烯酰胺(acrylamide,简称Acr)和交联剂(crosslinker)N,N-亚甲基双丙烯酰胺(N,N-methylenebisacylamide,简称Bis)在催化剂和加速剂作用下聚合交联而成的三维网状结构的凝胶。化学惰性强,具有一定的机械强度和透明度。是良好的电泳介质。,1.1 PAGE:聚丙烯酰胺凝胶 聚丙烯酰胺凝胶(p,聚丙烯酰胺凝胶的聚合方式:,单体:丙烯酰胺(Acr);交联剂:甲叉双丙烯酰胺(Bis); 催化剂:过硫酸胺或核黄素(AP);加速剂:四甲基乙二胺(TEMED);产物:三维网状结构凝胶,聚丙烯酰胺凝胶聚合机理是通过
9、提供氧游离基(free radicals)的催化,使体系发生氧化还原作用(catalyst-redox systems)来完成的。催化体系主要有化学催化(APTEMED)和光化学催化(核黄素TMTED)体系。,影响聚丙烯酰胺凝胶聚合的因素:试剂的纯度;温度;氧气;AP、TEMED原则:尽量少的催化剂并在最佳时间内聚合。,聚丙烯酰胺凝胶的聚合方式:单体:丙烯酰胺(Acr);聚丙烯酰,1.2 蛋白样品的变性,2SDS-PAGE上样缓冲液:DTT可临用前以1:4比例混合加入,亦可全部配好分装,-20冻存。按1:1比例与蛋白质样品混合,95100加热515min,冰上冷却后再上样,使蛋白充分变性,保证
10、蛋白质从空间结构变为一级结构。电泳样品已准备就绪,可立即使用也可以分装冻存,-20存放的样品可稳定保持数月。,100mM Tris-HCl(pH6.8)200mM DTT4%SDS0.2%溴酚兰20%甘油ddH2O,1.2 蛋白样品的变性2SDS-PAGE上样缓冲液:1M,SDS-PAGE 是在蛋白质样品中加入SDS和含有巯基乙醇的样品处理液,SDS是一种很强的阴离子表面活性剂,它可以断开分子内和分子间的氢键,破坏蛋白质分子的二级和三级结构。强还原剂巯基乙醇(或二硫苏糖醇,DTT)可以断开二硫键破坏蛋白质的四级结构。使蛋白质分子被解聚成肽链形成单链分子。解聚后的侧链与SDS充分结合形成带负电荷
11、的蛋白质-SDS复合物。蛋白质分子结合SDS阴离子后,所带负电荷的量远远超 过了它原有的净电荷,从而消除了不同种蛋白质之间所 带净电荷的差异。蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基 的相对分子质量,而与其所带电荷的性质无关。,【SDS-PAGE基本原理】,SDS-PAGE 是在蛋白质样品中加入SDS和含有巯基乙醇的,SDS:,阴离子去污剂 变性剂氨基酸侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS胶束。蛋白质-SDS胶束所带的负电荷大大超过了蛋白质分子原有的电荷量,消除了不 同分子之间原有的电荷差异。与强还原剂一起使蛋白分子氢键、疏水键打开,使蛋白质分子线性化。,SDS:阴离子去污剂 变性剂,蛋白
12、质-SDS胶束的特点:,(1)具有相同的形状,形状像一个长椭圆棒(2)平均1g 蛋白质结合1.4g SDS(3)短轴对不同的蛋白质亚基-SDS胶束基本上是相同的(4)长轴的长度则与亚基分子量的大小成正比,蛋白质-SDS胶束的特点:(1)具有相同的形状,形状像一个长,不连续的电泳缓冲体系。SDS蛋白质复合物在凝胶电泳时,不再受蛋白质电荷与形状的影响,而只取决于蛋白质分子量的大小。,SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,不连续的电泳缓冲体系。SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,1.3 不连续电泳:,电泳缓冲液:pH8.3 Tris-甘氨酸系统。,1.3 不连续电泳: 作用缓冲液PH凝胶浓度浓缩胶使蛋,1.4 凝胶浓度与
13、蛋白分离范围,SDS-PAGE浓缩胶(5% Acrylamide)及分离胶配方表:http:/,1.4 凝胶浓度与蛋白分离范围凝胶浓度()线性分离范围(K,1.5 SDS-PAGE凝胶配制 配制相应浓度的SDS-PAGE分离胶,TEMED加入后迅速混匀制胶,沿壁迅速灌注分离胶溶液,留出积层胶所需空间(梳齿长再加1cm)。覆盖5mm水(或异丙醇)层于分离胶溶液上,约30-60min后分离胶和水层之间会出现清晰界面,表明分离胶充分聚合(可微微倾斜模具,检测凝胶是否聚合)。 ddH2O轻轻洗涤凝胶顶部数次,以除去未聚合的凝胶,再用滤纸吸净残留液体,注意不要接触胶面。,灌制分离胶,1.5 SDS-PA
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