染色体荧光原位杂交技术.ppt

染色体荧光原位杂交技术,摘 要 FISH（Fluoresence In Situ Hybridization）技术是80年代开始发展起来的一种新的定位技术。在人类基因组研究中得到了广泛的应用通过中期染色体的FISH可以进行SCP，Cosmid和YAC的染色体定位，嵌合克隆的鉴别，通过间期核的FISH可以在50kb的分辨率下进行基因作图，最新的研究进展已可以进行伸展的染色质丝(chromatin fibre)的FISH，直接测量基因的长度、从而达到高精度基因作图的目的。随着FISH技术发展，它将在人类以及其它物种基因组研究中发挥更大的作用。,荧光标记的染色体原位杂交技术提供了一种快速而有效的手段，将DNA片段和特定的真核生物细胞的染色体区带联系了起来，并将这些DNA片段排序，这是研究DNA顺序在染色体上位置的最直接的方法。最早，人们根据Gall和Pardue在1969年的工作，于70年代，建立起了同位素原位杂交技术，但当时只是用于DNA顺序在多线染色体上的定位或是重复顺序在中期染色体上的定位。1981，Gerhard和Harper等首先证明有可能将从个体基因中得到的单拷贝顺序(SCP，single copy probe)通过同位素原位杂交技术定位到中期染色体上。在此基础上，80年代初起，荧光标记的原位杂交技术开始起步并得到运用且不断地发展起来。,1、FISH技术简介,FISH技术包括下列几个步骤：1、探针的准备和标记；2、探针和染色体的杂交；3、信号检测；4、杂交信号与分带染色体的比较。,1.1 探针的准备,探针标记时可采用两种基本方式：（1）直接标记法：将荧光分子直接标记于探针DNARNA上，杂交后可直接在荧光显微镜下检测。这种方式快速简捷，由于杂交信号较弱、且不能进一步放大，以前这种方法用得不多，但它有背景少的优点，近来在一些公司的试剂盒中得到应用。,（2）间接标记法：常用的间接法是将一些类似于半抗原(hapten)的标记分子掺入探针分子中。用的较多的试剂有生物素，地谷新(digoxigenin)，二硝基苯(dinitrophenyl，DNP)，氨基乙酰茐(aminoacetylfuorene，AAF)，汞和磺酸盐(sulfonate)。就掺入方式来说，生物素，地谷新等是以核苷酸衍生物的形式掺入的，可用切口平移法来进行。现在更多的人开始用随机引物法。用这两种方法标记好的探针大小在200一500bp范围内，是用于杂交的最佳大小。另外，也可以在已知顺序的两个引物之间用PCR法来扩增，或从合适的载体上通过RNA转录而来。,1.2 探针和染色体的杂交,染色体原位杂交：标记后的探针经变性后加于变性的中期染色体分裂相标本上。于37摄氏度、50的甲酰胺2XSSC条件下进行杂交最适的杂交条件主要取决于探针与靶基因的性质。对于单拷贝基因的杂交，特别是较长的来自基因组的序列，一般在杂交之前应进行预复性过程，标记的探针与过量的基因组DNA或Cot1重复序列一起孵育1小时，使探针中非特异的重复序列被封闭。从而抑制该部分探针与染色体之间发生非特异性杂交，上述过程又称为抑制性染色体原位杂交。经预复性之后已标记好的变性探针(200一500bP)再与变性的染色体在含有甲酰胺，盐和醋酸葡聚糖的杂交缓冲液中杂交过夜。接着是柔和的洗涤，以去除未杂交或错配对的探针。,1.3 信号的检测,在洗去未杂交和错配对的探针分子之后，载片培养在免疫荧光试剂中，使其在探针杂交的位置上产生荧光信号，偶联了荧光素分子的抗生物素蛋白被用来标记已掺入到探针分子中的生物素、地谷新、二硝基苯、AFF和磺酸盐则可以用相应的标上了荧光素的抗免疫球蛋白来标记。最常用的荧光素分子有FITC，rhodamine和Texas Red等。,1.4 分带和信号定位,染色体的分带可以在杂交前，也可以在杂交后，高分辨的染色体标本是取得好的带形的基础。常用的分带方法有：G(Giemsa)带、Q(Quinacrine)带、R(Reverse)带，包括色霉素chromomycin A3偏端霉素distamycin A 法；hoechst33258propidium iodide3，8二氨基53(二乙基甲基氨)丙基6苯菲碘法，DAPIDAPI：4，6diamidino，2phenylindole 2HClpropidium iodide法，染色体的分带也可以直接用AluLIHs(LI homo sapiens)或Alu之间的顺序和染色体杂交而得到类似R带的条带，更多的人在努力使杂交信号和分带可以同时在显微镜下看到。,由于杂交和分带同时进行效果不佳，有人采用FL(fractional length)来测量。以杂交信号相对于某固定位置(如端粒)的长度占该染色体长度的比例来表示。在不分带的情况下，特定的染色体可以通过着丝粒特异，或端粒特异的探针进行共杂交来确定。复杂的探针族，如从一个染色体特异的DNA文库中得来的克隆，可以用来修饰和确认染色体，称为染色体绘图。,影响杂交结果的参数有下列几个：探针浓度，杂交时间，探针大小，杂交温度，染色质变性条件，染色体的制备和硬化程度，RNase作用条件，用于降低背景的非特异性竞争DNA和醋酸酐处理其中有几个因素影响杂交信号的强度和特异性，具体的讲是DNA探针的纯度；用于杂交反应的探针的大小小心掌握好这些条件，我们就能得到没有荧光背景的特异性信号。,FISH的结果还有一个重要的方面，就是分辨率的问题。影响结果分辨率的因素有两个，染色体上的特定位置和染色体的浓缩程度。着丝粒和端粒的变化比其他的染色体位置的变化要多，在分析结果时就比较容易辩认。特定的染色体结构在其杂交结果的分辩率上起着重要的作用。制备染色体较伸展状态的展片，如早中期染色体或中期染色体，将会得到较高的分辩率，另外，光学系统的先进程度也是提高分辨率的有效手段。,2、FISH技术的优点,首先，从探针的制备杂交来看，生物素和其他标记分子没有放射性，标记过程和杂交过程没有污染的危险，比较安全。而且用生物素或其他的标记分子标记好以后的探针分子相当稳定，没有半衰期的限制，可以长期保存。荧光显色时间短，不象同位素杂交那样要求长时间曝光，背景简单。灵敏度也毫不逊色。,另外，FISH可以用多种颜色同时显色，这是同位素杂交不可比拟的。这种多色作图，可以便染色体分带和探针信号显不同的颜色而同时观察；也可以用不同荧光标记不同的探针，以确定探针在染色体上酌相对位置。,间期核作图也是FISH的一个特色，因为它常常是和多色技术结合在一起的。中期染色体的FISH的分辨率大约为1Mb，而间期核作图的精度一般为50kb。这一精度的变化使FISH有可能直接用于基因作图。可以说间期核作图技术是遗传研究和脉冲电泳结果的桥梁。与遗传图谱不同，它不依靠多态性标志和大的家系；也不象脉冲电泳后的稀切点酶物理图谱分析，它不依靠稀切点酶位点的存在和甲基化程度，并且不受CpG岛出现频率的影响。它的原理是间期核上DNA顺序间的距离与线性DNA分子上该两个顺序间的距离呈对应曲线性关系。由于这些原因间期核作图可以作为遗传作图和物理作图分析的辅助结果来构建染色体亚区的基因图。间期细胞原位杂交还可用于不能制备中期染色体的细胞的研究，如肿瘤细胞和非周期细胞。,信号扩增也是FISH所特有的。为了使杂交信号足够强，可以进行信号扩增。扩增的方法是加上一层荧光标记的标记分子的抗体，再加上一层偶联了标记分子的抗抗体，然后再加一层荧光标记的标记分子的抗体，形成三明治结构以生物素标记为例，在加荧光标记的抗生物素蛋白avidin之后，加一层山羊生物素标记抗抗生物素D，然后再加一层荧光标记的抗生物素蛋白。,用于人染色体作图的典型探针是cDNA或克隆的基因组DNA片段，大多数的cDNA由单拷贝顺序组成，SCP由单拷贝的基因组顺序组成。而大多数的克隆基因片段中除了单拷贝顺序外还有插入重复顾序（interspersed repeatitive sequence，IRS），如A1u，据分析每35Kb就有一个A1u顺序。所以在用cos质粒和YAC（yeast artificial chromosome，酵母人工染色体）做为探针时，就会有一些重复顺序干扰单一顺序产生特异性信号。通常将标记好的探针片段变性，与过量的非标记的竞争DNA一起复性，常用的有人总DNA或cot1DNA。这时探针中的IRS就很快地与竞争DNA中的IRS结合，剩下的是已标记了的单拷贝顺序，所看到的染色体上的杂交信号就表明是单拷贝顺序所在的位置，这一过程在FISH中叫做抑制性杂交。抑制性杂交的使用使FISH的应用更加广泛，并可能在人类基因组的研究中发挥其作用。,3、FISH在人类基因组研究中的应用,FISH作为确定基因片段在染色体上位置最直接的方法，在人类基因组研究中的应用日益广泛深入。所研究的基因片段通常克隆在质粒，phage，cosmid和YAC中，可以用FISH技术知道其在分带染色体上的位置，也可以以此手段进行某种遗传病的诊断。,3.1 SCP(single copy probe)的定位：,SCP的定位是染色体骨架图构建的主要内容之一。当SCP用生物素标记之后，与中期染色体杂交，用免疫荧光标记的试剂检测，就可以明确地知道某个SCP在做好分带的中期染色体上的位置。SCP的定位是应用FISH技术进行人类基因组研究中的最简单的一种。但是太小的片段在实际工作中的难度较大。FISH不仅可使SCP直接定位于染色体上，也可以定位于间期核，为高分辨的基因作图和核组织分析提供了有力的手段。,3.2 Cos质粒的定位,Cos质粒的克隆容量约为3545kb，在FISH刚开始应用时这大小是很适合于做探针的，在使用抑制性杂交之前，是先分离cos质粒的插入片段中的单拷贝顺序，然后才进行杂交。应用了抑制性杂交步骤之后一切就方便多了。1992年Fan报道了他们将50个cos质粒克隆用FISH定位到了染色体上的结果。其中38个在X染色体上分布于长臂或短臂上，另外10个分布于中心粒上。这些结果促进了X染色体的作图，同时分布于X和8号染色体的中心粒上的那些cos质粒，将有利于这些区域的结构和组成的研究。1990年，Lichter等人报道，运用数字图像技术分析cos质粒为探针的FISH结果，所用的染色体是早中期染色体，结果和杂交细胞株系列的结果一致。当3个或3个以上的cos质粒同时杂交时，可以得出它们在染色体上的顺序。1991年，Trask报道，将2个或3个cos质粒经两种不同颜色的荧光标记之后，与间期核进行杂交，由此排出了7个cos质粒的顺序，精度在50kb。,3.3 YAC的定位和YAC重叠群(contig)的构建,YAC的容量比起cos质粒来就更大了，最大的可达2Mb。定位YAC的方法有三种。有些探针在染色体上的位置已知(可以用FISH来定位)，而又可以肯定它在某个YAC中，那么这个YAC在染色体上的位置就确定了；YAC也可以直接进行FISH。先抽提酵母的DNA，然后脉冲电泳分离出YAC的插入片段，用此插入片段进行FISH；现在PCR技术越来越成熟，可以用Alu PCR法扩增YAC上的插入部分，将A1u PCR产物来进行FISH。在多个YAC分别定位的基础上，或根据几个YAC经多色标记后同时与染色体杂交后的结果，可以按YAC间的相对位置来构建YAC重叠群。所得的结果可通过一个YAC经标记后与YAC库内的其它YAC进行杂交的结果来验证。1991年，Montanaro报道，他们用FISH的方法定位了102个YAC。这些YAC覆盖了Xq24Xq28的50的区域。他们定位的精度是0.5带，所以这l02个YAC就分布在9个区段内(半条带为一个区段)。这些结果综合起来为YAC重叠群的构建提供了一条道路。,YAC DNA的FISH不仅可以为构建YAC contig提供数据同时也可以用这一方法来检测YAC中的嵌合(chimeric)YAC。YAC克隆可以克隆大片段的DNA，但是随之也带来了缺点，其中主要的一点就是嵌合DNA的出现。在染色体上处于不同位置的DNA片段，在克隆过程中相互连接或转化过程中同源重组，克隆进了一个YAC，应用FISH就是可以发现一个YAC经标记荧光后原位杂交可以在一个以上的染色体区域产生特异性信号。这是发现嵌合YAC的最简便而直接的方法。这对于人类基因组的研究有很重要的意义。,定位一个克隆片段在染色体上的位置的另外一个方法是探针与杂交细胞株系列(Somatic cell hybird Panel)进行杂交，因为各个细胞株所含的人染色体区段不同，杂交结果就可以说明克隆片段在染色体上的位置。研究结果表明FISH定位的结果和杂交细胞株系列的结果一致。在今日，FISH技术日趋成熟，精度越来越高的情况下，使用杂交系细胞株系列定位的人越来越少了。,FISH技术的其它应用,1细胞遗传学的研究（1）实体肿瘤的染色体研究比较困难，这是由于获取足够量的分裂期肿瘤细胞比较困难。使用染色体着丝粒特异探针，对问期细胞进行染色体数量变异分析，可获得较好的结果”。,Fig.2.Example of the SKY analysis of metaphase chromosomes prepared from the GRANTA-519 cell line.The RGB image(A)and the DAPI-stainedchromosomes(B)are shown.Identification of chromosomes and chromosomal alterations is possible after chromosome classification.Chromosomes inRGB(left)and classified colors(right)are shown in the lower panel.,Fig.3.Multicolor banding analysis of chromosome 1 revealed an inversion in 1p that was not detectable by conventional cytogenetic analysis and SKY.This is shown on the right in comparison with a normal chromosome 1 in a healthy person(left).The breakpoint in the inverted chromosome isindicated by an arrowhead.,（2）选择按一定顺序排列的基因探针，可以帮助确定染色体倒位，尤其是臂间倒位的性质，如急性白血病有16号染色体的倒位。,2基因图谱的绘制（1）采用FISH技术，不仅可以直接确定某一DNA链在染色体上的位置而且应用多种颜色荧光素标记探针，还提供了一个简单的确定基因顺序的方法。可用不同颜色荧光素标记两个不同的DNA链，而且他们在染色体上的距离大于1Mbp时，可以依据不同探针信号的排列关系分辨它们在染色体上的顺序。（2）标记同一DNA链与不同种属细胞的染色体杂交，可以找出不同种属之间的同源基因以及基因在染色体上的位置，从而了解种属之闯的进化关系。,3基因扩增的检测 DNA扩增通常表现为异常的显带区域(ABRS)或异染色质区(HSRS)以及无着丝微小体(DM)，这些基因扩增的细胞遗传学表现出现在许多恶性肿瘤中。搞清楚肿瘤细胞中特定DNA链(基因)的扩增，有助于了解肿瘤的恶性增生过程。恶性增生过程。在肿瘤细胞中某些肿瘤基因(Oncogene)的扩增，可作为预测肿瘤进展及预后的临床指征。如乳腺癌细胞中Her2一nell基因的扩增常预示着患者预后较差。,4FISH技术的新进展,1993年9月，美国德克萨斯州癌症治疗和研究中心的Parra和Windle报道了迄今为止精度最高的FISH。这是一种新的作图方法，在这一技术中，双链DNA完全伸展并依附在载片上，与生物素或地谷新标记的探针杂交之后，用荧光抗生物素蛋白或其它抗体检测DNA探针在伸展的DNA链上的分布是可见的，并可以用荧光显微镜记录下来。从这一图象，可以作出一图谱，称为直视杂交DNA图谱(direct visual hybridization DNA Map，DIRVISH)。这一作图技术遵循这样一个原理，一个小的DNA区域(假定为5kb)，当它伸展到一定的长度时，这是可以在显微镜下看见的。基于这样的数据：对于完全伸展的双链DNA来讲，每对碱基所占的长度为0.34nm，那么5kb的DNA长度为17m，一个40kb的cos质粒将占136Pm，一个500kb的YAC将占据170m。在制备载片时，先将细胞固定在载片的一端，然后用去污剂消化，让溶液中的DNA动态地流到另一端，就得到了伸展的DNA双链，结合常规FISH就可以得到DIRVISH图。这篇文章报道了他们在两天内做出的一个结果，一个跨度为200kb，含有五份拷贝的扩增的二氢叶酸还原酶基因的图谱。,在进行与疾病有关的某个基因片段的FISH时，除了与中期染色体杂交外，还以肿瘤细胞为材料。在美国，有人成功地进行了单个细胞的FISH和单个精于的FISH。更有甚者，将试管中的八细胞胚胎上的一个细胞取下做FISH。再把七细胞胚胎植入体内。,除了在人类基因组研究中的应用之外，FISH在其他方面也大有用武之地。如：病毒检测，应用FISH方法可以了解细胞内的病毒是否已整合，如果整合了其取向如何，拷贝数目多少。定量分析，用于研究表达，如mRNA在细胞中的分布及量的多少，更大而言之，可以用此方法检测和定位某一特定核酸在组织，细胞和基因组中的分布。在细胞分裂过程中，异质性及其产生机制也可以用此法来研究。,荧光标记的原位杂交作为一项技术已经成熟，但是它也是在不断发展的，其应用范围也在不断扩大，随着杂交试剂的商品化，FISH已成为基因定位的常规而必不可少的手段。在人类基因组的研究中更是越用越多，现在已发展到这样的情况，每发表一个DNA片段的研究结果或每报道一个基因，就有一张相应的FISH图。1993年，在人类基因组研究神户会议上，有人提出，要用24种不同的颜色来标记24条不同的染色体。随着应用的广泛，FISH也在不断得到发展人类基因组研究新的五年计划中提出要完全人类基因组分辨率为l00kb的STS(sequence tagged sites)图，对于完整基因组将需要30000个STS。到目前为止我们还只有1500多个，也就是说还缺少95新的STS。每个新的STS都需要定位数据，这些数据都需要用FISH来完成。,5FISH技术展望,随着标记手段、检测试剂以及荧光观察 等技术的发展，染色体FISH的应用范围在不断拓宽，激光共执聚焦显微技术的发展，使得核的三维重建可以在计算机的辅助下得以实现。染色体FISH不仅可用来定位基因，而且可用以研究基因在间核中的位置。初步的结果提示，染色体上基因的拓朴结构，有可能影响基因的生物学功能。,人类基因计划的进展，使得越来越多的基因需要通过染色体FISH技术加以定位。YAC克隆容量的不断扩大，一方面使得FISH的成功率大为提高，另一方面，YAC文库的鉴定与分析，也越来越依赖于FISH技术。近来，采用可在哺乳类细胞中复制的基因原件，构建了哺乳类细胞人工染色体(MAC)，用来克隆更大的基因片段。MAC的发展，将为FISH展示更为广阔的应用前景。,FISH的进一步发展，还将开发稳定有效的方法，以定位更短的基因片段(501000bp)，使研究者们可以方便地定位来自cDNA的基因，从而大大加快物理图谱与基因图谱的绘制。一般认为，原位延伸FISH技术，可能是有希望的候选方法。首先使短片段探针与染色体发生结合，然后在聚合酶、dNTP、标记物以及其它条件下，原位使探针延伸、掺人标记物，再进行荧光检测，由此，该方法又被称为引物介导的原位标记(PRlNS)。PRINS的建立，将接通细胞遗传学与分子遗传学之间的鸿沟，为从染色体水平原位研究基因转录、重排、扩增、基因组结构与调控等诸多分子生物学课题开辟新的途径。,