欢迎来到三一办公! | 帮助中心 三一办公31ppt.com(应用文档模板下载平台)
三一办公
全部分类
  • 办公文档>
  • PPT模板>
  • 建筑/施工/环境>
  • 毕业设计>
  • 工程图纸>
  • 教育教学>
  • 素材源码>
  • 生活休闲>
  • 临时分类>
  • ImageVerifierCode 换一换
    首页 三一办公 > 资源分类 > PPT文档下载  

    基因操作的主要技术原.ppt

    • 资源ID:6262964       资源大小:1.62MB        全文页数:50页
    • 资源格式: PPT        下载积分:15金币
    快捷下载 游客一键下载
    会员登录下载
    三方登录下载: 微信开放平台登录 QQ登录  
    下载资源需要15金币
    邮箱/手机:
    温馨提示:
    用户名和密码都是您填写的邮箱或者手机号,方便查询和重复下载(系统自动生成)
    支付方式: 支付宝    微信支付   
    验证码:   换一换

    加入VIP免费专享
     
    账号:
    密码:
    验证码:   换一换
      忘记密码?
        
    友情提示
    2、PDF文件下载后,可能会被浏览器默认打开,此种情况可以点击浏览器菜单,保存网页到桌面,就可以正常下载了。
    3、本站不支持迅雷下载,请使用电脑自带的IE浏览器,或者360浏览器、谷歌浏览器下载即可。
    4、本站资源下载后的文档和图纸-无水印,预览文档经过压缩,下载后原文更清晰。
    5、试题试卷类文档,如果标题没有明确说明有答案则都视为没有答案,请知晓。

    基因操作的主要技术原.ppt

    第一章 基因操作的主要技术原理,第二节 凝胶电泳,凝胶电泳是一种分析鉴定重组DNA分子、蛋白质、蛋白质与核酸相互作用的重要实验手段,同时也是分子生物学研究方法的技术基础。,1 凝胶电泳,凝胶包含复杂的孔道网络,DNA分子必须通过这些孔道才能够到达阳极。小的DNA分子,在凝胶中迁移的更快。,按凝胶材料分:聚丙烯酰胺凝胶 琼脂糖凝胶电泳(普通和低熔点琼脂糖)按电泳装置分:水平式/琼脂糖凝胶 竖式/聚丙烯酰胺凝胶两种方法比较:分离效果和分离范围;操作难易,凝胶电泳的种类,基本原理带有负电荷的DNA或RNA核苷酸链,依靠稳定的无反应活性的介质(琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶)和缓冲液,在电场中以一定的迁移率从负极移向正极。根据核酸分子大小不同、构型或形状的差异,以及所带电荷的不同,可以通过电泳将其混合物中的不同成分彼此分开。,2 核酸电泳,凝胶的成分和浓度决定能够分离的DNA大小琼脂糖凝胶:相对大的孔道,分离大一些的分子;聚丙烯酰胺凝胶:很小的孔道,分离小的DNA分子,能够分离仅仅相差一个核苷酸的DNA分子。,用途,琼脂糖凝胶:用于DNA和RNA的常规分析聚丙烯酰胺凝胶:常用于小分子核酸和蛋白质分析凝胶电泳的一般程序 制胶,点样,电泳,染色,观察,取决于核酸分子本身的大小和构型分子量较小的DNA分子,比分子量较大的DNA分子迁移率要快;同等分子量的不同构型的核酸分子,构型紧密的比松散型的开环DNA分子或线性DNA分子迁移率要快。,电泳的迁移率,与凝胶的类型和密度相关 琼脂糖凝胶的分辨力在0.250Kb之间;聚丙烯酰胺的分辨力在11000bp之间;,凝胶电泳的分辨力,Separation Range of Agarose,PolyAcrylamide Gels(PAGE),琼脂糖:一种从红色海藻中提取出的线性多糖聚合物。分为 常熔点的琼脂糖 低熔点(LMP)琼脂糖,2 琼脂糖凝胶电泳,Agarose gel electrophoresis,LMP琼脂糖 熔点:6265 熔解后,在37 可保持液态数小时;在25 可保持液态约10min,回收DNA分子 在65 下将LMP琼脂糖凝胶熔化;加入过量的酚抽提DNA;离心获得含DNA分子的上清液;,琼脂糖凝胶电泳的参数:缓冲液:1 TAE(TBE,TPE)凝胶的含量:根据检测的DNA大小 加DNA样品:1g,指示剂 电泳条件:大片断低电压长时间,小片段高电压短时间,使凝胶中的DNA分子可视化,染色是最简单的方法。溴乙锭(EtBr)能够用来对琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶中的DNA进行染色。只要在足够的DNA存在条件下,经过EtBr染色后,在紫外照射下能以不同的条带显示出来。注意:溴乙锭是非常强的致癌物;紫外光也会灼伤。因此,用于把DNA染成蓝色或绿色,又不需要紫外照射就能看见DNA的非致癌染料,越来越多地被用于实验室研究中。,染色和观察:溴化乙锭(EB)染色,在300nm波长的紫外下观察(凝胶成像仪)能看到0.05 g的微量DNA DNA的片断大小与荧光强度成正比,DNA分子大小的估计,如何确定凝胶电泳中片段的大小?最准确的方法:利用迁移速度和分子重量间的数学关系。相关公式是:D=a-b(logM)D是迁移的距离,M是相对分子质量,a和b是依赖于电泳条件的常数。通常使用:一种简单,但相对不太精确的估计DNA片段大小的方法。,方法:利用已知大小的DNA片段作标准(marker/ladder),目的DNA片段与之比对、估计。例如:Hind将DNA切成8个片段,这些片段的大小都已经知道,范围从125bp到23kb。实验中的片段大小可以通过对比两条泳道中条带的位置而加以估计。尽管不十分精确,这种方法进行起来只有5的错误率,Sample Well 25 ng 1 kb ladder0.8%Agarose,1,2,4,6,8,10,12,kb,Agarose Gel ElectrophoresisEtBr Detection Limit:5-10 ng DNA,根据标准DNA相对迁移距离推测待测定的DNA片段的大小,Agarose gel electrophoresis,对放射性标记的DNA进行放射性自显影,染色的一个缺陷是其灵敏性的限制,如果每条带中DNA的含量少于10ng,则很有可能在染色后仍然看不到条带。对于微量的DNA就需要更加灵敏的检测手段。放射自显影是一个很好的方法。电泳前将DNA结合上放射性标记,利用X射线敏感摄影对凝胶进行拍摄就能够肉眼观察到DNA分子。放射性DNA使胶片曝光,显示出DNA条带。,聚丙烯酰胺凝胶:丙稀酰胺/亚甲双丙稀酰胺(29:1)TEMED 过硫酸铵(10)缓冲液:TBE,3 聚丙烯酰胺凝胶电泳,链分离凝胶-SSCP,用于单链分离,可以进行SNP的检测。PAGE原理:SNP:DNA长度相同,仅一个碱基不同;加热后解链后电泳,迁移速度不同。,可以分离1bp的差异用途:测序、AFLP、为避免局部区域产生二级结构,可采用各种变性措施,如煮沸样品,提高电泳温度,凝胶中加入变性剂(尿素、甲醛、甲胺等),核酸测序凝胶,传统凝胶电泳中,电场是沿着凝胶长度走向定位的,DNA分子是沿着直线向正极迁移。不同大小的DNA分子在凝胶网状孔道中迁移的时候,迁移速率不同,从而被分离开。只有一定大小范围内的分子能够通过这种方法分离,因为对于大分子来说,分子越大,迁移速率的差异越小。实际操作中,普通的凝胶电泳不能有效地分离大于50kb的DNA分子。,4 通过凝胶电泳分离染色体,1984年,发明的,分离超大分子量的DNA分子。在脉冲电泳中,电场方向是周期变化的,头一个脉冲电场方向与核酸的移动方向成45 角,下一个脉冲的电场方向与核酸移动方向在另一侧成45 角,由于加在琼脂糖凝胶电泳上的电场方向、电流大小、以及作用时间都在交替地变换着,这就使得DNA分子必须随时调整其泳动的方向,来适应凝胶孔隙的无规则变化。,脉冲电场凝胶电泳(PFGE),脉冲场凝胶电泳原理图,北,南,脉冲场电泳 常规电泳 两组电极,排列不均匀;一组电极,电场方向不变,电极排列均匀,定时改变电场方向,DNA分子的净 DNA移动方向与电场方向相同。整个电泳 移动方向与两电场呈45o,在电泳过 过程保持电压稳定。常规方法制备DNA 程中,电压有时可随时间的增加而样品增加,制备DNA样品与常规方法不同,脉冲场凝胶电泳PFGE工作假说1)DNA松弛时间:大分子DNA改变形状和重新定向所需的时间。这个时间与DNA分子量呈正相关(Tr)2)DNA移动时间:DNA分子向前移动的时间(Tm)3)电场脉冲时间:其电场方向所持续的时间(Tp),与分子量小的DNA分子相比,分子量大的DNA分子需要较多的次数来更换其构型和方位,使之能够按新的方向游动,所以迁移率就慢,从而达到了分离大分子量DNA分子的目的。,可以分离几千kb的DNA分子。这个长度范围包含许多真核生物染色体分子,包括酵母、许多重要的丝状真菌和原生动物,如疟疾新生虫。因此,能够得到这些生物体染色体的凝胶图谱。,PFGE can resolve large DNA fragments,染色体DNA电泳的用途 1.测定染色体数目:特别适合于低等真核生物 2.测定基因连锁关系:结合DNA杂交技术,可适合各种生物 3.染色体DNA重排分析 1)酵母细胞经X-射线照射,染色体发生断裂,可得弥散型。但让其修复后,又可形成带,但有的发生了重排,导致 带型变化 2)非洲锥虫:变异表面糖蛋白基因的表达 4.疾病的诊断 引起某种皮肤病的原生动物Leishmania,具有其特征性的染色体。PFG便可用于诊断。,方法:不同的RNA电泳方法是依据使RNA分子变性所采取的方法。这些方法不仅要使RNA分子在点样时是一级结构,而且在整个电泳过程中也保持一级结构。1.乙二醛/二甲基亚砜法 原理:乙二醛可以与核酸、核苷酸及碱基发生反应,特别是鸟苷形成一个稳定的附加环,从而阻止GC碱基的互补作用发生。步骤:RNA+10mM羟甲基醛和50%DMSO混合 50、1 h变性 点样 电泳 染色 观察,5 RNA凝胶电泳,2.羟甲基汞法原理:羟甲基汞可与RNA分子的嘌呤或嘧啶碱基发生反应,反应部位是在可形成氢键的亚氨基处。步骤:RNA+10mM羟甲基醛,点样在含4mM羟甲基醛的琼脂糖凝胶上,电泳,染色观察,3.甲醛法步骤:RNA+2.2M甲醛+50%甲胺,点样在含2.2M甲醛琼脂糖凝胶上,MOPS缓冲液电泳,染色观察其它变性剂,如尿素、甲胺等也可用于RNA电泳.4.三种方法的比较 第一种方法安全,但由于反应是不可逆的,由此回收的RNA样品用于体外翻译效果不好。第二、三种方法的反应可逆,回收RNA样品可用于体外翻译反应,但操作必须小心,因两种变性剂有毒。,6 蛋白质电泳,方法:变性与非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,前者常称之为SDS-PAGE。差别:有无变性剂用途:非变性凝胶可用于蛋白质的分离纯化过程中,可直接用于酶促反应(颜色变化)SDS-PAGE可用于蛋白质分子量、亚基组成的测定。mRNA翻译产物,基因表达产物测定等。,用于DNA、RNA以及蛋白质的回收方法 1)电洗脱法:利用电泳方法将凝胶中的特定核酸分子洗脱到其它介质中;2)滤纸法 核酸凝胶染色,长波紫外光确定位置,在分离带前方切一口子并插入滤纸条(其背面覆盖透析袋膜),电泳至DNA带全部进入滤纸条,洗脱DNA,纯化、沉淀,7 电泳片段的分离与回收,3)透析袋法切下含DNA带琼脂块,放入透析袋,封口,放入电泳槽,电泳2-3小时至全部DNA离开凝胶块,反向电泳1分钟,取出DNA液,纯化、沉淀。4)冻融法,回收DNA方法,影响回收率的因素 1)DNA分子大小回收率与分子量大小呈负相关;2)乙醇沉淀其中温度、时间和DNA浓度(回收时体积)均与回收率有关;3)离心时间时间越长,效果越好,对低浓度DNA尤其明显。,

    注意事项

    本文(基因操作的主要技术原.ppt)为本站会员(小飞机)主动上传,三一办公仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对上载内容本身不做任何修改或编辑。 若此文所含内容侵犯了您的版权或隐私,请立即通知三一办公(点击联系客服),我们立即给予删除!

    温馨提示:如果因为网速或其他原因下载失败请重新下载,重复下载不扣分。




    备案号:宁ICP备20000045号-2

    经营许可证:宁B2-20210002

    宁公网安备 64010402000987号

    三一办公
    收起
    展开