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    地鼠肾细胞培养的狂犬病疫苗生产流程.docx

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    地鼠肾细胞培养的狂犬病疫苗生产流程.docx

    地鼠肾细胞培养的狂犬病疫苗生产流程地鼠肾细胞培养狂犬病疫苗生产流程 姓名:任菲菲 学号:10910010120 专业:生物工程 狂犬病作为危害人类健康的最古老的疾病之一流行于世界大多数的国家和地区。据统计,每年都有不少于4000 人死于狂犬病发作。狂犬病疫苗作为对抗狂犬病的唯一有效方法也随之经历了漫长的发展过程。目前世界上存在很多狂犬病疫苗的生产技术,本文讲述的是应用细胞毒株制备狂犬病地鼠肾细胞纯化疫苗。将狂犬病CaG株在原代地鼠肾细胞传代适应,用病毒培养液上清作为产生用毒种,结果通过在地鼠肾细胞传10代左右,适应后病毒液度较高。 1 生产流程 种子批建立种子检测病毒接种和培养病毒收获病毒灭活合并、浓缩、纯化原液检定分装及冻干 细胞制备2 主要流程简单说明 2.1 细胞制备 生产用细胞为原代地鼠肾细胞或连续传代不超过5代的地鼠肾细胞。 选用1214日龄地鼠,无菌取肾,剪碎,经胰蛋白酶消化,分散细胞,接种培养瓶,用适宜的培养液进行培养。来源于同一批地鼠、同一容器消化制备的地鼠肾细胞为一个细胞消化批。源自同一批地鼠、于同一天制备的多个细胞消化批为一个细胞批。 培养液为含适量灭活小牛血清和乳蛋白水解物的MEM,199或其他培养液。 2.2 种子批的建立 生产用毒种为狂犬病病毒固定毒aG株或其他经地鼠细胞适应的狂犬病病毒固定毒株。原始种子批为2aG1,主种子批应不超过4aG。毒种在地鼠肾原代细胞和豚鼠脑内交替传代制备工作种子批,在地鼠肾原代细胞的传代应不超过第6代,即不超过10aG;在豚鼠脑内传代应不超过第5代,即10aG5。 2.3 种子检测 用小鼠脑内中和试验鉴定毒种的特异性。将毒种作10倍系列稀释, 取适宜稀释度病毒液与等量狂犬病病毒特异性免疫血清混合, 同时设立正常血清对照组, 试验组与对照组的每个稀释度分别接种11-13g小鼠6只, 每只脑内接种0.03ml, 观察14天,中和指数应不低于500。 取毒种作10倍系列稀释,每个稀释度脑内接种体重为11-13g小鼠至少6只,每只脑内接种0.03ml, 观察14天,病毒滴度应不低于8.0 LgLD50/ml。 用主种子批毒种制备灭活疫苗,腹腔注射体重为12-14g小鼠,每只0.5ml。7天后重复接种1次作为试验组,未经免疫小鼠做对照组。第一次免疫后的第14天,试验组和对照组分别用10倍系列稀释的CVS病毒脑腔攻击, 每只0.03ml,每个稀释度10只小鼠。保护指数应不低于100。 2.4 病毒接种和培养 当细胞培养成致密单层后,毒种按0.010.1 MOI接种,置适宜温度下培养一定时间后,弃去培养液,用无菌PBS或其他适宜洗液冲洗去除牛血清,加入适量维持液,置33-35继续适当时培养间。 2.5 病毒收获 经培养适宜时间收获病毒液,即为病毒单次收获液。根据细胞生长情况,可换以维持液进行多次病毒收获。同一细胞批的同一次病毒收获液经检定合格后可合并为单次病毒收获液。 2.6 病毒灭活 病毒收获液中按1:4000的比例加入甲醛溶液,置适宜温度、在一定时间内灭活病毒。病毒灭活到期后, 每个灭活容器应立即取样, 分别进行病毒灭活验证试验。 2.7 合并、浓缩、纯化 同一细胞批制备的多个单次病毒收获液检定合格后可合并为一批,经超滤或其他适宜方法浓缩至规定的蛋白质浓度范围。经浓缩后的病毒液采用柱色谱法或其他适宜的方法纯化。 纯化后可加入适量人血白蛋白作为稳定剂, 即为原液。 3 总结 通过对狂犬病毒aG 株在金黄地鼠肾细胞上传代培养, 获得一种新型狂犬病毒毒株, 即地鼠肾细胞适应株( CaG 株)。由于该毒种具有生产方法简单, 成本低廉, 且外源因子污染机率小等优点, 因此试用该毒种生产精制狂犬病疫苗。在相同条件下, 分别用豚鼠脑毒种和细胞毒种各生产3 批病毒原液, 经相同纯化工艺制备成精制狂犬病疫苗。经初步检定用细胞毒种制备的疫苗安全性良好, 疫苗免疫效价与豚鼠脑毒种疫苗无明显差异。

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