底栖动物在生物监测上的应用ppt课件.pptx

底栖动物在水质评价中的应用,一、底栖动物的基本概念,1、基本概念底栖动物(zoobenthos或benthic animal）生活史的全部或大部分时间生活于水体底部水生动物。,2、分类,2.1 起源： 原生底牺动物(primary,zoobenthos) 次生底牺动物(secondary zoobenthos）2.2 筛网孔径的大小 大型底牺动物(macrofauna） 小型底牺动物(meiofauna） 微型底栖动物(nanofauna）,原生底栖动物：直接利用水中溶解氧。 如蠕虫，底栖甲壳类，双壳类软体动物等。次生底牺动物：由陆地生活的祖先在系统发育过程中重新适应水中生活的动物。 如各类水生昆虫 软体动物-肺螺类-椎实螺(Lymnea）。,大型底牺动物(macrofauna)： 500 m孔径筛网（40目）小型底牺动物(meiofauna)：42 m 500 m微型底栖动物(nanofauna）：42 m孔径筛网 Higgins Palmer & Strayer, 1996 仅为研究方便，与生态习性和分类地位无关 国内：大型,二、底栖动物的习见类群,淡水底栖动物的种类繁多。 在无脊椎动物方面包括除棘皮动物外所有较大的门类。 在脊椎动物方面，严格地说，一些底栖性鱼类以及有尾两栖类等也应纳入底栖动物的范畴但现在一般研究工作中都不把它们放在其中。,三、底栖动物的生活类型：生态分布格局,固着动物、穴居动物、攀爬动物、钻蚀动物1、固着动物（sessile benthos）-污损水底表面或突出物上，终生固着或临时固着终生固着：淡水-壳菜 海产-藤壶临时固着：蛭类、摇蚊与石蛾幼虫,2、穴居动物（burrowing benthos）身体的全部或大部分埋藏于疏松的底质中淡水中：线虫、颤蚓科、双壳类、摇蚊幼虫与穴居相适应： 体形细长。 缺氧：颤蚓、尾鳃蚓、淡水蛏（长的进出水管）,3、攀爬动物climbing benthos,爬行于底质表面和攀缘于水底突出物上的动物组成复杂，体型差异大、运动能力和方式不同在底质表面爬行-较厚的贝壳或被甲 如环棱螺、圆田螺、蟹类、螯虾、蜻蜓幼虫、田鳖、红娘华在突出物和植物上攀援的种类体型小、贝壳简单 如线虫、仙女虫、觽螺科,4、钻蚀动物boring benthos,用机械或化学方法在叫坚硬的物体上钻蚀洞穴 如船蛆,四、底栖动物在水生态系统中的作用,物质分解，陆生生态系统，微生物， 水生态系统，大型底栖无脊椎动物物种多样性高，对于维持水生态系统功能的完整性有着至关重要的作用。消费者亚系统，物质循环、能量流动中积极的消费和转移者，并通过摄食、掘穴和建管等扰动活动直接或间接地影响着水生态系统。,4.1 大型底栖动物的功能群与功能摄食类群,底栖动物功能摄食类群（Funtional feeding group）：根据摄食对象和方法的差异对水生动物进行的一项生态分类，它包括撕食者、收集者、刮食者、捕食者、滤食者。Cummins（1973，1974）水生昆虫，经Barbour及Bod补充。底栖动物功能群： （Funtional group）具有相同生态功能的底栖动物的组合。(1) 食性类型; (2) 运动能力; (3) 摄食方法。浮游生物食者、植食者、肉食者、杂食者、碎屑食者,4.1.1 底栖动物功能摄食类群,刮食者（牧食者）(Scrapers or Grazers)：主要以各种营固着生活的生物类群为食，如着生藻类等；螺类、仙女虫类。撕食者(Shredders)主要以各种凋落物和粗有机颗粒（粒径lmm)为食；如蟹类收集者(Gather or collectors)主要取食河底的各种有机颗粒物；如颤蚓和双胃线虫滤食者(Filtercollectors)以水流中的细有机颗粒物（0.45mm粒径1mm)为食；如双壳类捕食者(Predators)直接吞食或刺食猎物的一类生物。如蜻蜓目和广翅目。,4.1.2底栖动物功能群： （Funtional group）,浮游生物食者phanktophagous group, Pl。依靠各种过滤器官滤取水体中的微小的浮游生物，如许多双壳类，甲壳类等；植食者phanktophagous group ,Ph主要以维管束植物和海藻为饵料，如某些腹足纲、双壳纲和蟹类等；肉食者carnivorius group, Ca捕食小型动物和动物幼体，如某些环节动物、十足类等；杂食者omnivorous group, Om依靠皮肤或鳃的表皮，直接吸收溶解在水中的有机物，也可取食植物腐叶和小型双壳类、甲壳类，如某些腹足纲、双壳纲和蟹类等；碎屑食者detritivorous group, De摄食底表的有机碎屑，吞食沉积物，在消化道内摄取其中的有机物质，如某些线虫、双壳类等。,4.2 大型底栖动物在水生态系统中的作用,1）对藻类数量的调节作用牧食者 着生藻类2）对凋落叶的降解作用撕食者 森林覆盖率较高的溪流中Wallace（1990，1991）等研究结果表明，大型底栖动物在每年凋落物降解过程中的贡献率为，25-28%，对细颗粒有机物的输出贡献率为56%。,3）其他作用集食者，个体数量是最多，捕食性鱼类、捕食性水生昆虫等的最佳食物。当滤食者大量发生时，可以阻止FPOM向下游的运输。捕食者对其它大型底栖无脊椎动物群落的作用主要是下行效应(top-down efects)。大型底栖动物次级生产力的大小对鱼业生产也有比较重要的影响。,五、大型底栖动物在水质生物监测中的优越性与局限性,5.1 优越性1）分布广，易受到各种干扰如水质栖境改变等的影响。2）种类多样性高，对感染的反应范围广，耐污值多样性高。3）许多种类的活动能力差，生活场所固定，因此可以对干扰后的影响进行空间分析。4）有较长的生活周期，能综合反应较长时间段内的水体质量状况。5）已具有完善的半定量野外采样法。数据分析和评价指数。6）易采集，工具简单；许多类群易鉴定，鉴定资料相对完备。,5.2 局限性,1）若用“定量采，样法”评价水质，则需要大量的样本，工作量大，花费大。2）除水质外，大型底栖动物的分布还受其他多种因素如动物地理区、水中小栖境、海拔等的影响。3）群落组成的季节性变化会增加对评价结果的比较和说明的复杂性。4）有些大型底栖动物具有漂流的习性，会对生物指数产生干扰。5）有些类群的鉴定相当困难，从业人员需要一定的专业知识和经验积累。6）对某些干扰，如人类的致病病原体不敏感，不能测出具体的污染物质和污染量。,六、底栖动物研究工作程序,6、1 、1采样（泥）工具定量采样工具：1）彼得生采泥器Peterson grab，1/16m2。1/20m2,寡毛类、昆虫幼虫、小型软体动物。,6.1 底栖动物的野外采集与保存,2）埃克曼采泥器Ekman grab,标准150 x150 x150mm中间型150 x150 x225mm大型225x225x225mm,寡毛类和昆虫幼虫,3）波纳采泥器Ponar grab,标准230 mm x 230 mm,重20 kg;小型 150 mm x 150 mm,重6.8kg，它是目前美国最流行的野外采泥器，国内目前还未见使用,4）弹簧采泥器,靠弹簧作用将左右颚瓣插入沉积物内取样。操作时,把采泥器放在框架上(规格65*55*30cm),将负载板插入导管中,在负载板的下孔中插入一铁销,上孔中插入一长铁杆,另在铁杆下方基架台上放一块三角铁.然后,用铁杆将负载板撬起,左右挂钩分别钩住两颚瓣限动臂上的眼环,使弹簧被压缩受力.这时再把左右颚瓣臂向上推,使之与释放杆上的制动栓卡在一起,两颚瓣即成开放状态.当采泥器平稳降至海底时,由两个启动板的触底带动释放杆将导管周围的环拖起,挂钩即脱落,在弹簧的作用下颚瓣插入沉积物内.此时,制动栓也互相分离.当钢丝绳上提时,两颚瓣闭合将沉积物取入。,5）带网夹泥器,采样面积为1/6m2,主要用于采集大型的软体动物。,6）人工基质采样器,为高20cm、直径18cm的圆柱形铁笼用8号和14号铁丝编织而成，网孔面积4-6cm2。使用时笼底先铺一层40目（孔径0.635nm）尼龙筛绢，再放上长约8cm的卵石。,7）索伯网Surber n et，0 .093m2,半定量和定性采集工具,1）踢网或称手网(Kick-net, handle sceren or handle kick net),踢网是将网的两侧边固定在细木棍上，大小为lm x lm;,2）抄网(Sweep net),是一个带有长柄的采集网，根据网的形状不同，可分为D形抄网(D- frame net, 350mmx230mmx400mm)和三角形抄网(Triangulars weep net);,3）枯叶采样桶(Leave-pack sieve bucket).,4） 三角拖网,5）阿氏拖网Agassiz trawl,6）桁拖网,采样所用其它工具,水体地形图 深水温度计 一般温度计脸盆 解剖镜 水桶 显微镜标签 培养皿 铅笔 指管瓶记录本 广口瓶1000ml 纱布 量筒 胶布 解剖针 分样筛40目 放大镜塑料带 甲醛 解剖盘 酒精小镊子 吸管 绳索 毛笔滤纸,6.1.2试剂,甲醛溶液（7%淡水） 乙醇（75%）甘油 加拿大树胶霍氏液 Hoyers medium: (Puri胶）配方：阿拉伯树胶 30克 水合氯醛（水合三氯乙醛） 200克甘油（丙三醇） 20毫升蒸馏水 50毫升配制方法：取阿拉伯树胶30g溶解于50ml蒸馏水中，加入甘油20ml后，再加入水合三氯乙醛200g，充分搅拌均匀，使之完全溶解，置60温箱中24h，取出用玻璃棉过滤，转入有色玻瓶中密封备用。,淡水,甲醛（8%） 乙醇（75%）中性甲醛：5%甲醛+水硼酸钠或六次甲基四胺丙三醇乙醇：75%乙醇+5%丙三醇Bouinn固定液：苦味酸7ml+甲醛（40%）75ml+冰乙酸5ml,海洋,6、1、3采样方法,湖泊富营养化调查规范金相灿,屠清瑛1990，中国环境科学出版社水生生物监测手册，国家环保局，1993，东南大学出版社水库渔业资源调查规范，1996，水利部湖泊生态系统观测方法陈伟民、黄祥飞等，2005，中国环境科学出版社水域生态系统观测规范蔡庆华主编，2007，中国环境科学出版社海岸带调查技术规范于洪军等，2005，海洋出版社海洋调查规范-第6部分：海洋生物调查，2007，中华人民共和国国家标准GB/T12763.6-2007,(1) 溪流采样法,急流踢网样：2个，流速不同，1m2左右，毛翅目、蜉蝣目、ji翅目和广翅目等昆虫。抄网样：堤岸边、根垫和植物基部，长度约为10m，面积为3m2左右.摇蚊、寡毛类、蜻蜓、毛翅目、甲壳类和某些蜉蝣。周丛生物样：洗刷10-15块石块和圆木(logs)，主要采集摇蚊等个体较小的底栖动物。,枯枝落叶堆样：急流中的，3-4个样，最好是分解(腐烂)的。在底质沙地的大河中，有很好的水生昆虫多样性，包括大蚊、ji翅目和毛翅目等。目测采样：一般10分钟/1人次，主要采集附着在大石块和大圆木上的毛翅目(蝶石蛾、多距石蛾、舌石石蛾和瘤石蛾等)、鳞翅目(水螟)、摇蚊、软体动物等,(2) 大河采样法(Boat sampling),小型波纳采泥器样：一般在河两边的河岸区和河中间共设3个采样点，每个点采3个平行样。样点应设定在深度超过2m区域，至少保证一个样点的深度在2-3m之间。抄网样：在河岸区用抄网进行采集，具体采集方法同溪流采样。枯枝落叶堆样，1个。目测采样：主要采集大型水生植物和沉水圆木上的底栖动物。,（3）水库、湖泊采样法,1）定量样品的采集用采泥器在沿岸带、敞水带及不同的大型水生植物分布区设置采样点或断面，每个采样点采集2个样品。如采样点底质为卵石、砾石，上述采样器无法采样，则可用人工基质采样器采集定量样品。采样时各采样点底部应放置两个采样器，放置时间一般为14d。,2）定性样品的采集将三角拖网系在船尾，在每个定量样品采集点拖曳一定距离进行采集。,（4）河口底栖动物的采集,1）潮间带定量：用25x25x20cm样方，每个点采3个样定性：抄网或直接手捡2）潮下带定量：采泥器，0.1m2的箱式采泥器。3个样定性：阿氏拖网，15min，绳长为水深的3倍。,（5）海洋底栖生物采集,1）大型底栖生物的采集定量：抓斗式采泥器港湾用0.05m2采泥器，5个平行样 水深小于200m海区使用面积为0.1m2采泥器，2-4个平行样 水深大于200m海区使用面积为0.25m2采泥器，1-2个平行样 弹簧采泥器：采泥样面积为0.1m2 箱式采泥器：深海或分层 500 x500 x500（面积0.25m2) 250 x250 x250（面积0.063m2）,定性样品采集：阿氏拖网：港湾用网口宽度为0.7m-1m， 水深小于200m海区用网口为1.5-2.0m 深海调查用网口为2.5-3.om三角拖网：网口大小及网衣结构同阿氏拖网。 适合于 沿岸水域和底质较为复杂的海区采样。双刃拖网：适合于底质为岩礁、碎石和砂砾的海区。船速在2kn左右，航向稳定后投网。拖网绳长一般为水深的3倍，近岸浅水区为水深的3倍，拖网时间为15min；水深1000m以上的深海，拖网绳长为水深的1.5-2倍，拖网时间30min-1h。,2）小型底栖动物的采集定量：箱式采泥器、弹簧采泥器、有机玻璃管 内径2.2cm，2.6cm-泥质和砂泥质 3.6cm，4.4cm-泥砂质和砂质定性：撬式小型生物拖网-网衣孔径为0.35mm-0.45mm。采样：采芯样（分层）、潜水取样、小型生物拖网采样,6.1.4 样品的处理与保存,6.1.4.1 样品的洗涤1、用带网夹泥器采得泥样后应将网口闭紧放在水中涤荡清除网中泥沙然后提出水面捡出其中全部螺蚌等底栖动物。2、用改良彼得生采泥器采得泥样后应将泥样全部倒入塑料桶或盆内经40目分样筛(筛卷网）筛洗后捡出筛上肉眼能看得见的全部动物，如采样时来不及分捡则可将筛洗后所余杂物连同动物全部装入塑料袋中缚紧袋口（或1L广口塑料瓶）后带回室内分捡，如从采样到分捡超过2h，则应在袋中加入适量固定液，塑料袋中的泥样可逐次地倒入白色解剖盘内，加适量清水用细吸管尖嘴镊解剖针等分捡。冰箱（0），标签（采集时间、地点、站点）3、用人工基质采样器采得样品后可直接捡出卵石及筛绢上的全部底栖动物样。,1）对于水蚯蚓，可利用其对温度的敏感性，在装有样品的解剖盘上，放一纱布，覆盖样品，然后倒入40左右的热水，水蚯蚓及钻到纱布上面来，这样就一网打尽，效果较好。2）标本需用小镊子、解剖针或吸管检选，柔软较小的动物也可用毛笔分检。此时，要避免损伤虫体。显微镜。3）每一塑料袋的样品检完后，需将袋内的标签放进指管瓶内，并在每瓶外面贴上一个同样的标签。,6.1.4.2 样品的分捡,海水：分样筛淘洗装置,6.1.4.3 样品的固定和保存,1）水蚯蚓应先麻醉，使其舒展再固定，一般把水蚯蚓放在培养皿中，加少量水，然后每隔10分钟滴加95酒精，直至虫体全部伸直。然后用410甲醛液固定，或固定12日后，移入75酒精中封存。2）软体动物的螺、蚌，可保存于7080的酒精中，45天再换一次酒精即可。也可用甲醛液固定，但务必加入少量苏打或硼砂中和酸性甲醛，不然，软体动物的钙质壳，会被酸性甲醛腐蚀。此外，软体动物亦可去内脏后，将壳干燥保存。,3）昆虫及甲壳动物，可放入样本瓶中用75酒精固定。昆虫成虫亦可制成干标本保存。 上述固定和保存液的体积应为所固定动物体积的10倍以上否则应在2-3d后更换一次。种,小型底栖动物整体或部分封片,加拿大树胶封片法 （永久）标本（75%酒精）-脱水（80%-90%-95%-100%I-100%II）-透明（二甲苯）-载玻片整姿-封片酒精甘油封片（永久）2份酒精+1份甘油+少许福尔马林标本放置在载玻片+酒精甘油+四周树胶技术要求高，采用少，寡毛类,洪氏封片法（永久）,原用于线形动物，但透明度差的标本亦可使用。I2透明24小时后封片。,4.Puris胶和阿拉伯胶封片法,摇蚊科幼虫,6.2 种类鉴定,6.2.1 一般要求 软体动物-种， 水生昆虫（摇蚊科幼虫）至少-科， 水栖寡毛类和摇蚊科幼虫-属6.2.2 分类水平底栖动物涉及多个门，尤其是水生昆虫，种类多，幼期，鉴定困难。何级分类水平（门、纲、目、科、属、种)?有争议。同一科或同一属内的不同种对污染的敏感性很可能是完全不一样的，因此，鉴定至种是最理想的结果。实际过程中，与研究水域底栖动物多样性有很大关系，如果被研究水域底栖动物科级分类单元数与属/种级分类单元数非常接近，则无论采用科级水平还是属/种级水平，研究结果无明显差别。,6.3 计数,每个采样点所采得的底栖动物应按不同种类准确地统计个体数，在标本已有损坏的情况下一般只统计头部不统计零散的腹部附肢等。,6.4 称重,每个采样点所采得的底栖动物应按不同种类准确地称重。软体动物可用普通药物天平称重。水生昆虫和水栖寡毛类应用电子分析天平称重。先称得各采集点的总重，然后分类称量。,6.5 结果整理,应分析软体动物、水生昆虫和水栖寡毛类的种类组成并按分类系统列出名录。计数和称量的结果应该应根据采样器的开口面积推算出1m2的结果。,6.6 底栖动物监测过程中质量保证,目前，海洋底栖动物研究有统一国家标准，淡水中无。无科学完善的质量监控方法，如何提高质量，保证结果的准确性和可靠性，已成为底栖动物研究中亟待解决的问题。,1.采样过程中的质量保证,样品要有代表性、完整性、可比性（1）采样时间和频率一般规律：季度采样。同一季节时间，相差不超过半个月。工作量、物力、财力所限：两次，多样性和生物量相对较大的春季（45月）和秋季（9-10月）。逐月、隔月,（2）采样点的布设,技术规范采样点（断面）相对固定，便于与历史数据比较与水质理化分析采样同步同断面，保证水质分析结果的相关性底质的情况（河流）底质的形态：沿岸带、敞水区、水草区等底质的性质：砂、沙、砾石、淤泥等同一河流各断面要尽量在相同生境（激流石质、缓流泥质）。同一断面（水深、水速、底质）要保证在同一位置,（3）采样量,依底栖动物的密度和物种多样性定采泥器船稳下来、向上扽、拉时快速泥样量过大时，分样操作减少取样量 据底栖动物的密度预估取样量 分样时必须将该点所采集到的全部样品充分混匀 二分法逐级减少取样量（如1/2、1/4、1/8样.) 底栖动物样品个数100个,（4）样品现场固定,底栖动物易断体、缩水、收缩规范的操作：淘洗、过筛、现场固定、分选 河流底质，现场1%甲醛或30%酒精固定 湖库底质，现场7%甲醛或75%酒精固定淘洗+7%甲醛，温度低可不加,2、预处理过程中的质量保证,（1）样品再清洗反复淘洗、过筛、直至澄清，废液回收,（2）样品分选解剖镜，玻璃皿、清水放大倍数，分选后加固定液小个体或罕见种类，单独盛装待分选样品分选周期长要冷藏或重新加固定液,3、样品鉴定和计数的质量保证,（1）样品鉴定难度大；关键环节；关键物种建立和完善底栖动物分类的资料库和标本库、拍照（2）样品计数不完整个体，头部数量某物种总数=完整个体数+断体总重/完整个体均重,4、监测结果的检验,（1）参照历史监测数据（2）参照水质理化指标水质良好：物种丰富、生物量稳定有机污染：物种单一、生物量大有毒污染：物种和生物量均明显减少,七、底栖动物水质评价过程中常用的生物参数,生物参数：Metrics生物参数是一种数量指标，可用于反应环境变化对目标生物(个体、种群、群落)数量、结构和功能的影响，从而有效地评价和监测环境质量。生物参数的类别：(1)与群落结构和功能有关的指数：如多样性指数、分类单元丰富度等;(2)与生物耐污能力有关的指数：(3)栖境参数(Habitat metrics)：指与生物的行为和习性有关的生物参数。(4)多度量指数和完整性指数(Multimetrics and Index of Biotic Integrity）：,1、与群落结构与功能有关的生物参数（32）,（1）总分类单元数Total number of taxa根据分类水平要求，鉴定出的样点底栖动物群落所有分类单元数（2）EPT分类单元数EPT taxa richnessE: Ephemeroptera 蜉蝣目，P: Plecoptera襀翅目，T: Trichoptera毛翅目，三目昆虫分类单元数,（3）毛翅目分类单元数Trichiptera taxa richness底栖动物类群中毛翅目昆虫的种类数（4）蜉蝣目分类单元数Ephemeropter taxa richness底栖动物类群中蜉蝣目昆虫的种类数（5）襀翅目分类单元数Plecoptera taxa richness底栖动物类群中襀翅目昆虫的种类数,（6）敏感类群分类单元数Number of intolerant taxa分类单元(属、种)耐污值3的都为敏感类群（7）耐污类群分类单元数Number of tolerant taxa分类单元(属、种)耐污值7的都为耐污类群,（8）摇蚊分类单元数Chironomidae taxa richness底栖动物类群中摇蚊昆虫的种类数（9）双翅目分类单元数Diptera taxa richness底牺动物类群中双翅目昆虫的种类数,（10）水生昆虫分类单元数Aquatic insect taxa richness底栖动物类群中水生昆虫的种类数（11）软体动物和甲壳动物分类单元数Crustacean and Mollusca taxa richness底栖动物类群中软体动物和甲壳动物的种类数,（12）EPT% EPT individuals%(蜉蝣目十襀翅目+毛翅目)个体数/样点底栖动物群落总个体数（13）双翅目% Diptera% 双翅目个体数/样点底栖动物群落总个体数（14）摇蚊% Chironomidae% 摇蚊个体数/样点底栖动物群落总个体数（15）长足摇蚊% Tribe Tanytarsini individuals%长足摇蚊个体数/样点底栖动物群落总个体数,（16）耐污类群%Tolerant taxa% 耐污类群个体数/样点底栖动物群落总个体数（17）敏感类群%Intolerant taxa%敏感类群个体数/样点底栖动物群落总个体数,（18）毛翅目%Trichoptera% 毛翅目个体数/样点底栖动物群落总个体数（19）蜉蝣目%Epheroptera% 蜉蝣目个体数/样点底栖动物群落总个体数（20）襀翅目%Plecoptera%襀翅目个体数/样点底栖动物群落总个体数,（21）优势分类单元%Dominant taxon%个体数最多的一个分类单元的个体数/样点底栖动物群落总个体数（22）前三位优势分类单元%Three dominant taxa%个体数盆最多的前3位分类单元的所有个体数/样点底栖动物群落总个体数（23）寡毛类/蛭类%(Oligochaetes/leeches)%寡毛类个体数/蛭类个体数,（24）Goodnight指数颤蚓类个体数/样点底栖动物群落总个体数（25）Goodnight-Whitley指数寡毛类个体数/样点底栖动物群落总个体数（26）香农指数Shannon-Wiener index H=（ni/N）ln（ni/N） N为样品中所有物种的总个体数, S为样品中物种种类总数, ni为第i种物种的个体数。（27）(软体动物和甲壳动物)%crustacrean and Mollusca%(软体动物和甲壳动物)个体数/样点底栖动物群落总个体数,(28)撕食者%Shredders% 撕食者个体数/样点底栖动物群落总个体数(29)刮食者%Scrapers% 刮食者个体数/样点底栖动物群落总个体数(30)滤食者%Filterers% 滤食者个体数/样点底栖动物群落总个体数(31)集食者%Collector and Gatherers%集食者个体数/样点底栖动物群落总个体数（32）捕食者%Predators% 捕食者个体数/样点底栖动物群落总个体数,2、与耐污能力有关的指数,（1）Saprobic指数Saprobic index,（2）Trent生物指数Trent biotic index(TBI)根据采样点出现的指示生物种类数的多少，确定Trent生物指数值。,（3）Chandler 记分制Chandler s score system根据采样点出现的指示生物及其个体数的多少，确定各指示生物应得分值，通过累加后的总分值评价水质（4）BMWP记分系统BMWP score system累加采样点出现各指示生物的分值 ，根据总分值 (TS, Total score)或平均分值(ASPT, average score per taxon)的大小评价水质。ASPT=TS/n, n,参加记分的指示生物分类单元数.,（5）法国生物指数FBI Indice Biotque France根据采样点出现的指示生物种类数的多少，确定FBI生物指数值（6)比利时生物指数BBI Belgian Biotic Index根据采样点出现的指示生物种类数的多少，确定BBI生物指数值(7)佛罗里达指数Florida Index佛罗里达指数=2A+B, A:消洁水体指示生物分类单元数，B:轻污染水体指标生物分类单元数.(指示生物根据耐污能力，从清洁至重污分为5个类别),(8)Beek指数Beck-Tsuda s indexBeck指数=2A+B, A:清洁水体指示生物分类单元数，B:耐污指示生物分类单元数(9)耐污生物指数Biotic index,(10)科级生物指数Family Biotic Index,3 、栖境参数,（1）粘附者%Clingers% 粘附者个体数/样点底栖动物群落总个体数（2）攀附者%Climbers%攀附者个体数/样点底栖动物群落总个体数,4、多度量指数和完整性指数multimerics and Index of Biotical Integrity,（1）SCI指数Stream Condition Index由总分类单元数、EPT分类单元数、摇蚊分类单元数、优势分类单元%、集食者%、滤食者%，6个生物学指数组成。（2）CPMI指数Costal Plain Macroinvertebrate Index由总分类单元数、EPT分类单元数、蜉蝣%、HBI指数和粘附者%，5个生物学指数组成。,（3）LMII 指数Lake Macroinvertebrate Integrity Index由HBI指数、摇蚊%、集食者%、(寡毛类/蛭类)%和双翅目分类单元数，5个生物学指数组成。（4）B一IBI指数由总分类单元数、蜉蝣目分类单元数、襀翅目分类单元数、毛翅目分类单数、长期生活分类单元数(long-lived taxa richness)、敏感类群分类单元数、耐污类群单元数%、依附者分类单元数%、捕食者%和前三个优势分类单元%，10个底栖生物学指数组成。,