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    组织病理学制片技术ppt课件.ppt

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    组织病理学制片技术ppt课件.ppt

    组织病理学制片技术,德江县人民医院病理科,1,病理技术的应用,帮助临床查明死因(尸检);手术后病变标本,明确诊断(临床活检);为教学、科研提供资料;,取材(Sample collection)固定(Fixation)脱水(Dehydration)透明(Transparentizing) 浸蜡(Paraffin soaking)包埋(Embedding),第一节 组织处理,1. 人为因素 2. 标本大小 3. 取材时间 4. 包埋方向 5. 边缘标记,一、取材(Samples collection),6. 小标本的处理方法 7. 特殊情况取材 8. 取材数量 9. 清除多余成分 10. 重复取材 11. 核对取材12. 剩余组织存放,二、固定(Fixation),固定就是用物理或化学方法,阻止组织细胞离体或培养细胞脱离生存环境后发生形态学变化。(一)固定的目的1. 迅速阻断组织细胞离体后的自溶性变化,防止腐败,尽量保持组织细胞生活状态下的形态结构。2. 使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变成不溶性物质,并保持原有的空间位置。3. 固定剂有硬化作用,增加组织的硬度,便于制片。4. 组织中的各种物质经固定后产生对染料的亲和力,利于染色和观察。,(二)常用的固定方法,1. 浸泡固定法 2. 灌注固定法 3. 细胞涂片的固定方法4. 微波固定法5. 蒸气固定法,(三)常用的固定液,1. 单纯固定液(1) 甲醛(formaldehyde)(2) 酒精(alcohol)(3) 苦味酸(picric acid) (4) 丙酮(acetone)(5) 醋酸(acetic acid),2. 混合固定液(1) Bouin液 :用于结缔组织及脂肪染色;(2) Zenker液:常用于三色染色; (3) 4%多聚甲醛-磷酸二氢钠-氢氧化钠液;,(四)固定时的注意事项1. 标本 应新鲜并及时取材,快速放入固定液中。特殊标本应单独固定和存放。2. 固定液的用量 一般固定液用量为组织块体积的1020倍,贵重的固定液不少于35倍。,3. 防止组织变形 柔软或较薄的组织先平铺在吸水纸上,再投入固定剂中;含气或脂肪多的组织易浮于液面,可在组织表面覆盖棉花以达到充分固定。4. 固定液的穿透性 一般固定液在24h内不能穿透厚度大于23mm的实体组织或5mm的多孔疏松组织,故取材组织块的厚度原则上不应超过34mm。5. 固定时间 固定的时间与固定液的种类、组织类型、块大小、温度等有关。一般1.5cm1.5cm0.2 0.3cm大小的组织块, 固定时间为1224h。6. 固定温度 大多数可在室温(25)固定,在低温(如4)固定时,固定时间要相应延长。,三、脱水(Dehydration)组织经固定和水洗后含大量水分,水与石蜡不能混溶。因此在浸蜡和包埋前,必须进行脱水。 常见的脱水剂有乙醇、正丁醇、丙酮等。为防止水份丢失过快,造成组织变形,一般采用梯度脱水法。也就是使脱水剂的浓度逐渐升高,脱水过程尽量缓和,减少组织变形。,四、透明(Transparentizing),常用的透明剂有二甲苯、苯、甲苯、氯仿、环己酮、苯甲酸甲酯、香柏油、冬青油和苯胺油等。目前也有用环己酮作为透明剂,环己酮为无色无毒液体,可与苯、二甲苯和酒精等相混合,也可溶解石蜡。而且脱水时组织不收缩变硬,用于快速石蜡切片效果较好。,五、浸蜡(Paraffin wax soaking),用熔化的切片石蜡逐渐替换组织中二甲苯的过程。,六、组织的包埋和包埋方法(Embedding)(一)常规石蜡包埋 (二)脱落细胞标本的包埋 (三)微小标本的包埋,第二节 组织切片法(Tissue sectioning),组织切片法包括石蜡切片法、冰冻切片法、火棉胶切片法、树脂包埋薄切片法和大组织石蜡切片法等。常用的切片工具包括组织切片机、切片刀和自动磨刀机等。,一、组织切片机和切片刀1. 石蜡切片机 2. 火棉胶切片机 3. 恒冷箱切片机 4. 震动切片机,石蜡切片机,震动切片机,恒冷箱切片机,切片刀切片刀是切片机的重要部件,常见的有两种: 一种为可重复使用的钢刀,一般有4cm、8cm、14cm、18cm、2024cm等,根据切片刀的形态,有平凹型、深平凹型、平楔型、双凹型。 另一种为一次性钢刀片,是一种薄型切片刀片,用于普通石蜡切片。使用时固定在特制的刀架上。,石蜡切片机用一次性钢刀片,二、组织切片(Tissue sectioning),石蜡切片仍是目前各种切片制作方法中最常用、最普遍的一种方法。,(一)切片前的准备1. 备齐常用器具, 如玻片、毛笔和铅笔或刻字笔。2. 检查切片机的工作状态, 将固件都拧紧,检查切片刀是否锋利, 切片刀质量是保证切片的关键。如果使用一次性刀片, 应根据切片情况及时调整刀刃位置。,(二)切片制作过程1. 蜡块在冰箱中预冷,然后固定在切片机上。将切片刀装在刀架上。调整蜡块与刀的位置,使蜡块切面与刀刃接近。2.切片机多为轮转式,使用时左手执毛笔,右手旋转切片机转轮。先修出标本,直到组织全部暴露于切面为止,标本过小时修块应多加注意,大标本要切全。切出蜡带后,用毛笔轻轻挑起一端,用镊子夹起另一端,正面向上放入展片水槽中(水温一般低于蜡熔点1012),待切片展平后,即可进行捞片。,3. 切片时刀是由下向上运动,为得到完整的切片,防止组织出现刀纹裂缝,应将组织硬脆难切的部分放在上端(如皮肤组织的表皮部分,胃肠等组织的浆膜面等)。4. 捞片时注意组织片的摆放位置,尽量整齐美观。要留出贴标签的空间,5. 捞片时注意在切片和玻片之间不要留有气泡。捞好的切片应在60左右烤箱内烤至少30min。以防染色时脱片。,(三)石蜡切片制作时的注意事项1. 组织的取材和固定 ;2. 组织脱水、透明和浸蜡 ;3. 切片组织块固定不牢时; 4. 切片刀和切片机 ;5. 特殊要求切片的制作 。,第三节 冰冻切片法,冰冻切片可用于新鲜组织、甲醛固定的组织和低温冰箱冷藏的组织块等。已固定的组织块经流水冲洗后再进行切片。,冰冻切片法恒冷箱切片机提前开机预冷,一般工作温度设定在-22左右。待刀台、样品台和箱内达到设置温度后即可切片。顺序如下:将组织用OCT粘在样品托后放置在速冻台上;组织冻结后,将样品托固定到样品台上;调整组织切面与刀刃位置,初步修出组织切面后,放下防卷板,关闭观察窗,开始切片。切出的切片粘贴到载玻片上,直接冻存或吹干固定。,取材负责诊断的医师应亲自检查大体标本,做多切面详细检查,必要时可在解剖镜下观察。选取最具代表性的组织制片,必要时应多点取材。如切面有特殊要求,应向技术人员说明。取材和切片的剩余组织须进一步做石蜡切片进行对照,有利于病理医师对照阅片,不断提高观察冰冻切片的水平。,第四节 脱落细胞制片技术,脱落细胞标本包括:胸水、腹水、尿液、脑脊液穿刺液和一些涂片、刷片及印片的细胞,在临床上具有非常重要的诊断价值。,一、细胞标本的取材细胞标本取材和制片方法一般有印片法、穿刺法、沉淀法和活细胞标本的制备等。(一)印片法常用于活检和手术标本,新鲜标本沿病灶中心剖开,将载片轻压于切面上,吹干后立即浸入固定液内5l0min,取出自然干燥,低温储存。优点是操作简单,细胞抗原保存好。,(二)穿刺液沉淀法常用于淋巴结、软组织、肝、肾和肺等,穿剌液少,可直接涂片,细胞尽量涂均匀。穿刺液多,细胞丰富,可置离心管内,以500rpm低速离心5l0min,弃上清,将沉淀制成细胞悬液(2105细胞/ml)。,涂片镜检, 以细胞较密不重叠为好。干燥后固定。胸水、腹水、尿液和脑脊液等如细胞较少时,也可用此方法制片。此法细胞保存好,操作简单。注意涂片时,尽量涂均匀。,2022/11/14,42,宫颈脱落细胞涂片见分化不良细胞体积大、核深染;正常上皮细胞核小、胞浆丰富。,谢谢大家!,

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